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Red de Revistas Científicas de América Latina y el Caribe, España y Portugal
Rev. Int. Contam. Ambie. 28 Sup. (1) 67-75, 2012
LOS MICROORGANISMOS EN LOS ABONOS ORGÁNICOS A PARTIR DE PODAS EN LA
UNIVERSIDAD DEL NORTE, COLOMBIA
Amelia ESCUDERO DE FONSECA* y Carmen Alicia ARIAS VILLAMIZAR
Universidad del Norte, Km. 5 Antigua Vía Puerto Colombia, Barranquilla, Colombia.
*Autora responsable: afonseca@uninorte.edu.co
(Recibido agosto 2011, aceptado febrero 2012)
Palabras clave: actividad microbiana, aireación pasiva, biotransformación, residuos vegetales, fertilizante
RESUMEN
El compostaje es un proceso biológico aerobio exotérmico en el que los microorga-
nismos descomponen biológicamente y mineralizan un sustrato orgánico logrando un
producto fnal estable, libre de patógenos y de semillas que puede ser aplicado al suelo
de Forma benefciosa. Desde 2009, en la Universidad del Norte ubicada en Barranqui
-
lla, Colombia, se ensaya el método Indore de compostaje pero modifcado –sólo se
usan residuos vegetales y la aireación es pasiva– buscando reducir olores y controles
operativos y hacerlo atractivo en la producción artesanal de abono. En las experiencias
se han variado las condiciones de entrada de la composta obteniendo abono tipo A
según la norma control chilena 2880 de 2004. La investigación aquí reseñada corres-
ponde a niveles alto y bajo en la relación carbono/nitrógeno (C/N) y a inocular o no
microorganismos nativos (
Aspergillus niger
y
Streptomyces
sp
.
), buscando acelerar el
proceso. Las respuestas de los microorganismos termóflos y mesóflos participantes,
concordaron con los materiales de la composta, la relación C/N, la evolución de las
variables fsicoquímicas por cuenta de los microorganismos y la aireación involucrada.
La calidad del abono indica que los microorganismos cuentan con los nutrientes reque-
ridos (presentes en los residuos vegetales utilizados) y que el sistema desarrolla una
cinética bioxidativa sufciente y similar a la obtenida en otros procesos que adicionan
residuos animales y aireación forzada.
Key words: microbial activity, passive ventilation, biotransformation, vegetable decays, fertilizer
ABSTRACT
Composting is an aerobic and exothermic biological process in which microorganisms
biologically decompose and mineralize an organic substrate obtaining a fnal product
stable, pathogene–Free, seed–Free which can be applied to soil in a benefcial way.
Since 2009, the composting method Indore has been tested in Universidad del Norte,
Barranquilla, Colombia. The method has been modifed–only vegetable decays are
used and ventilation is passive– For reducing odor and operative controls and making
it attractive in scale manufacture of fertilizer. In these composting experiences from
pruning, the input conditions of compost have been changed obtaining fertilizer type
A according to Chilean control standard 2880, from 2004. This article refers to a re-
search which corresponds to high and low levels in the carbon/nitrogen (C/N) rate and
A. Escudero de Fonseca y C.A. Arias Villamizar
68
to inoculate (or not) native microorganisms (
Aspergillus Niger
and
Streptomyces
sp
.
),
in search of accelerating the process. The responses of thermophilic and mesophilic
microorganisms agree with compost materials, C/N rate, physicochemical variable
evolution due to microorganisms and the quality of ventilation involved. Fertilizer
quality shows microorganisms have the nutrients required for their performance and
that the system develops sufFcient bioxidative kinetics similar to the one obtained in
other processes which add animal decays and forced ventilation.
INTRODUCCIÓN
Las enmiendas mediante abonos restauran los
niveles de materia orgánica en los suelos. Ello
ha incrementado considerablemente su práctica
(Rogers 2002, Arrigo 2005) y las investigaciones
para optimizar el compostaje. El compostaje es un
proceso bioxidativo aerobio en un entorno con-
trolado que produce composta, CO
2
, agua, calor
e higienización del abono. Lo ejecutan microor-
ganismos, bacterias y hongos principalmente, que
se suceden en las labores de mineralización de la
materia orgánica según la temperatura y otras con-
diciones de la composta. Durante el compostaje, la
temperatura pasa de la ambiente a la adecuada para
microorganismos mesóFlos (hasta 40 ºC), luego a la
de los termóFlos, entre 40 ºC y 75 ºC (INN 2004),
luego a una nueva etapa mesóFla y se enfría hasta
la temperatura ambiente, en la maduración. Simul-
táneamente el pH baja a condiciones ácidas, sube
a un máximo alcalino (alrededor de 8.5) y baja a
valores cercanos a la neutralidad donde se mantiene
en el abono conformado.
Cuando los materiales de la composta son
residuos vegetales pueden no cumplir todos los
requerimientos de un buen abono (López 2004),
la maduración puede tardar hasta un año (López
et
al.
2005) y aplicar un abono inmaduro puede ser
tóxico (Zucconi 1985, Varnero 2007). De ahí el
incremento en la búsqueda de métodos que aceleren
el proceso y obtengan abono de la mejor calidad
dados la revalorización de residuos y el beneFcio
ambiental involucrados. En la Universidad del Nor-
te, en Barranquilla, Colombia, desde 2009 se trabaja
en la biotransformación aeróbica de las podas de
árboles frutales y jardines por el método Indore.
Las variables de control del compostaje Indore se
indican en la
fgura 1
.
El método Indore modiFcado sólo requiere: a.
Controlar la entrada de los materiales, lo que implica
vigilar las proporciones C/N, el tamaño de las par-
tículas y evitar elementos nocivos, metales pesados
principalmente; b. Garantizar la aireación pasiva
desde la conformación de las pilas y c. Mantener
la humedad. Este compostaje no produce olores ni
exporta plagas, lo que facilita y hace atractiva su
producción artesanal. Con este método, en 2009-
2010, se logró abono tipo A, con una fertilización
del 100% en los cultivos de prueba. La experiencia
involucró seis celdas (o pilas) independientes ha-
biendo abandonado el proceso en tres de ellas por
invasión de plagas de procesos vecinos. El proceso y
los resultados en la pila uno, una de las que culminó
en abono, forman parte de las memorias del Sim-
posio 2010 de la Red de Ingeniería en Saneamiento
Ambiental (Escudero y Arias 2010).
En el presente trabajo se introdujeron tres va-
riables en el material de composta con el Fn de
evaluar su incidencia en el proceso y en el abono
resultante. Aquí se presenta el resultado en dos de
las cuatro celdas bajo estudio. Se escogió variar las
condiciones de entrada porque según la literatura
cientíFca consultada, ellas inciden en los resultados
(López 2004). Las variaciones correspondieron a la
relación C/N, a la inoculación de microorganismos
autóctonos y a uniformar el tamaño de las podas en
25 mm, cumpliendo el rango recomendado entre 3
mm y 50 mm (Chiu-Chung 2005).
La diferente relación C/N inicial buscó conocer
su in±uencia en la duración del proceso. La adición
de microorganismos se hizo como una aproxi-
mación al proceso austriaco (desarrollado por la
familia Lübke) denominado (CMC) compostaje
Microbiológicamente controlado que reporta mayor
productividad del abono (Diver 2004). Se habla de
aproximación porque el método CMC implica la
inoculación de determinados microorganismos de
arranque, el control permanente de la vida micro-
biana y la garantía de la aireación mediante volteos,
lo que no estaba previsto en el método utilizado
en la investigación de la Universidad del Norte.
Este documento corresponde a las dos condiciones
extremas: nivel alto en C/N y en microorganismos
inoculados (
Aspergillus niger
y
Streptomyces
sp.),
pila 2 y nivel bajo para C/N y sin inoculación de
microorganismos, pila 3.
LOS MICROORGANISMOS EN LOS ABONOS ORGÁNICOS
69
METODOLOGÍA
Diseño experimental.
El diseño de experimentos uti-
lizado fue el factorial 2
2
que corresponde a 2 factores,
sin réplica, con un total de 4 corridas. Se escogió para
reducir el número de análisis al mínimo necesario y
adaptado a los recursos económicos disponibles para
el trabajo (
Cuadro I
)
.
Método de compostaje y materiales de entrada
.
Se usó una modifcación del Indore tradicional
(Heckman 2006) porque la aireación que gobierna
el proceso es la pasiva y no se utilizan residuos
animales. Las podas provinieron de la Fora identi
-
fcada con su nombre científco y vulgar siguientes:
Mangifera indica
(mango),
Erythrina crista-galli
L
(coral),
Codiaeum variegatum
(croto),
Mes-
pilus germanica L
(níspero),
Archontophoenix
cunninghamiana
(palmera),
Swinglia glutinosa
(swingla),
Musa paradisiacal
(plátano) y
Cynodon
dactylon
(gramilla). Las podas de mango y níspero
son comunes con el proceso anterior. Se variaron
las cantidades de las diferentes podas participantes
en cada pila para proveer la relación C/N buscada,
en dos pilas valores altos y en las otras dos, bajos.
La variación se hizo proporcional a los valores de
C y N del material base (Cardona 2008).
Conformación de las pilas
. Para la construcción
de las cuatro pilas de un m
3
de capacidad cada una
(un m en cada lado), se utilizaron palos gruesos
entrabados en altura procedentes de las podas, se
instaló otro palo vertical en el centro de cada una
y un fondo entramado separado del suelo, todo ello
para asegurar la aireación pasiva y se protegieron del
sol con polisombra, producto sintético que cumple
ese propósito. La
Fgura 2
muestra este detalle así
como todo el ciclo de las podas y el resultado de la
enmienda obtenida del abono.
Muestreos y análisis de laboratorio
Durante todo
el experimento se midieron las variables de control
del proceso. La temperatura se midió en 15 puntos
de cada pila, primero 2 veces al día, luego diario y al
fnal, semanal, con una Sonda De Temperatura. Para
los otros análisis se tomaron muestras compuestas
procedentes de diferentes puntos de cada pila y
se sometieron a los procedimientos y mediciones
consagrados en los métodos normalizados D2216-
10, D4972–01 (ASTM 2010) o los sugeridos por la
±ig. 1.
Variables de control del método de compostaje Indore
A. Escudero de Fonseca y C.A. Arias Villamizar
70
norma chilena 2880, 2004 para compostaje (INN
2004). Los ensayos de nitrógeno y los análisis del
abono fueron realizados por laboratorios externos a la
universidad. Sus resultados cumplieron los siguientes
protocolos: N según Kjeldahl (NTC 1556), P y B por
colorimetría; S por turbidimetría; K, Ca, Mg, Na, Fe,
Mn, Cu, Zn por absorción atómica. C-orgánico por
calcinación, N mineral en KCl (1N), pH y C.E, en
extracto de saturación, % de elementos mayores y
menores, en peso a peso
En relación con los microorganismos, a nivel
macro, se identifcaron las diFerentes colonias por su
aspecto, confrmando esta aproximación mediante
pruebas bioquímicas. Para el conteo de colonias se hi-
cieron diluciones hasta 10
10
y se sembraron en medios
de cultivo apropiados: agar nutritivo, para bacterias
totales; Sabouraud, para hongos; caseína enriquecida
con varios nutrientes, para microorganismos totales;
caseína con extracto de papa, para
Streptomyces
sp.;
y EMB para enterobacterias. Los hongos se dejaron
crecer durante más de cinco días, se identifcaron
mediante su observación al microscopio y se diferen-
ciaron unas colonias de otras mediante tinción en azul
de lactofenol. Se buscaron patógenos mediante las
pruebas bioquímicas del caso. Para microorganismos
Gram negativos se acudió a confrmaciones mediante
el método de BBL Crystal (NTC 5167).
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
ANOVA
.
Se buscó la incidencia de los factores C/N
e inoculación o no de microbiota en el abono para
muchos factores de la experiencia. Como ejemplo se
CUADRO I
. CONFORMACIÓN DE PILAS DE COMPOSTAJE SEGÚN DISEÑO FACTORIAL 2
2
, SIN RÉPLICA
C/N bajo
C/N alto
Microrganismos alto
Pila 4
Pila 2 C/N = 150.78. Inóculo:
Streptomyces
sp. más
Aspergillus niger
Microrganismos bajo
Pila 3 C/N = 56.47 sin inóculo
Pila 1
Podas en
pedazos de
25 mm
Sin abono
Pilas cúbicas
de 1 m de lado
Vegetación
con abono
Abono
resultante
Con o sin adición inicial
de microorganismos
Fig. 2.
Conformación pilas y ciclo de podas hasta enmienda de suelos.
LOS MICROORGANISMOS EN LOS ABONOS ORGÁNICOS
71
presentan materia orgánica (MO) en el abono y dura-
ción de las grandes poblaciones de microorganismos
en la composta. El análisis confrma que el Factor
C/N explica el 89% y el 99.99% de la variación de la
respuesta en ambos casos e indica baja probabilidad
de que se rechace la hipótesis nula (
Fig. 3
).
La
fgura 3
muestra que en la pila 2 con C/N
inicial alto, la MO fnal Fue alta a pesar de la inocu
-
lación de microorganismos. Y que en la pila 3 con
relación C/N inicial baja y sin inóculo, la MO fnal
resultó signifcativamente menor. Ello confrma la
in±uencia de una relación C/N inicial cercana a la
teórica (35:1) en la efciencia de la biodescomposi
-
ción de la composta. El ANOVA también se aplicó
a la diFerencia entre MO inicial y fnal en cada
pila y reafrmó lo anterior con una probabilidad de
rechazo de la hipótesis nula de 0.072. En efecto, el
consumo de MO fue sólo del 15.83% en la pila 2 con
C/N inicial alto a pesar del inóculo de microbiota,
mientras que llegó a 40.07% de consumo de MO en
la pila 3, con C/N inicial bajo y sin inóculo. Además
dado que el ANOVA muestra todos los resultados,
fue fácil apreciar que de las pilas con C/N inicial
bajo el mayor consumo de MO correspondió a la
que recibió el inóculo. Ello implica que a C/N bajo
la adición de microorganismos acelera el proceso
de producción de abono.
Volviendo a la
fgura 3
se resalta que en las pilas
con C/N inicial alto estuvieron presentes durante
mayor tiempo las grandes poblaciones de microbio-
ta. Lo que se traduce en mayor tiempo para que la
composta se convierta en abono.
En resumen, de la ANOVA se deduce que la re-
lación C/N inicial incide en el tiempo de producción
del abono y que los microorganismos aceleran aun
más el proceso principalmente cuando esa relación
es cercana a la teórica.
Temperatura y pH
. Su evolución fue la esperada en
ambas pilas siendo la temperatura siempre mayor en
la pila 3 que en la 2 y el pH menor. Ambas condi-
ciones presuponen un mejor comportamiento de la
microbiota. El ascenso de temperatura y pH hacia el
día 50 respondió al único volteo que se les hizo a las
pilas, volteo que evitó que la alta humedad ambiental
reinante ocasionara condiciones anaerobias en las
pilas (
Fig. 4
).
Los máximos valores de microorganismos y las
condiciones fsicoquímicas
. A los valores máximos
alcanzados por los microorganismos en ambas pilas
se les asociaron los datos de las variables de control
del compostaje Indore modifcado. Puede apreciar
-
se que, en general, los valores de la temperatura y
Fig. 3.
Ejemplos del ANOVA en la investigación de abono a partir de podas en la Universidad del Norte
A. Escudero de Fonseca y C.A. Arias Villamizar
72
de la MO fueron más altos en la pila 3 que en la 2
y más bajos para las otras variables. El día en que
ocurrió el valor máximo del microorganismo de
ordinario fue más alto en la pila 3 que en la 2 con
excepción de los patógenos (
Cuadro II
).
En relación con la microbiota el
cuadro II
mues-
tra que en ambas pilas las poblaciones máximas de
los microorganismos fueron similares con excepción
de lo siguiente:
Salmonella
se presentó sólo un día y única-
mente en la pila 2. Ello sugiere contaminación
externa y su inmediata eliminación dadas las
altas temperaturas de la pila (
Fig. 4
).
Pseudomonas
fue 9500 veces más abundante
en la pila 3 que en la 2. Ello pudo deberse a
que
Streptomyces
sp. le impidió un mayor
desarrollo en la pila 2.
Los valores máximos de microorganismos to-
tales fueron 83 veces más altos en la pila 3 que
en la 2. Se explica por el mejor hábitat de la pila
3: mayor cantidad de MO (88.9/84.9), menor
relación C/N, menor % de humedad (67.8/82.6)
y mayor temperatura (63.3 ºC/53.5 ºC).
Streptomyces
sp. sólo se desarrolló en la pila
2 donde había sido inoculada.
Se resalta que las grandes poblaciones de mi-
croorganismos se mantuvieron hasta el día 18 en la
pila 3 y hasta el día 81 en la pila 2, respondiendo a
la relación C/N inicial. (Zmora-Nahuma
et al.
2005).
Ver ANOVA de la
fgura 3
anteriormente presentada.
Los microorganismos y el pH
. El pH es uno de los
mayores diferenciadores de la microbiota presente
en un hábitat (Martínez 2006) pero lo afectan otros
Fig. 4.
Evolución Temperatura y pH, pilas 2 y 3
5
5.5
6
6.5
7
7.5
8
8.5
9
9.5
10
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
70
20
40
60
80
100
120
140
160
180
pH
Temperatura, ºC
Tiempo, día
Evolución temperatura y pH, pilas 2 y 3
Pila 2 TºC
Pila 2 pH
Pila 3 pH
Pila 3 TºC
CUADRO II
.
MÁXIMOS VALORES DE MICROORGANISMOS Y VARIABLES DE CONTROL ASOCIADAS. PILAS 2 Y 3
Microorganismo y su valor máximo
en cada pila (UFC)
Día de
ocurrencia
Valores físico químicos para el valor máximo de microorganismos
T ºC
pH
CE µS/cm
Humedad %
C/N
MO %
Shiguella
44*10
6
/30*10
6
3 / 2
58.2 / 62.8
7.7/6.9
1025/823
80.6/65.6
85.5/88.3
klebsiella
24*10
2
/16*10
6
0/0
53.5/63.5
5.8/5.3
783/1310
77.8/63.9
151/56
86.3/86.7
E. Coli
4*10
6
/16*10
6
3/2
58.2/62.8
7.7/6.9
1025/823
80.6/65.6
85.5/88.3
Salmonella
1*10
6
/0
9/ NA
45.1/ NA
7.9/ NA
819/ NA
85.3/ NA
NA
86.8/ NA
Pseudomona
2*10
3
/19*10
6
0/0
53.5/63.5
5.8/5.3
783/1310
77.8/63.9
151/56
86.3/86.7
Microorganismos totales
64*10
6
/53*10
8
1/3
53.5/63.3
6.7/7.2
800/1135
82.6/67.8
78/
84.9/88.9
Levaduras
29*10
4
/31*10
4
2/4
58.8/63.2
7.3/6.9
797/1162
77.0/66.8
87.6/88.1
Aspergillus Niger
19*10
2
/19*10
2
17/17
40.9/45.1
76.3/69.0
Aspergillus fumigatus
13*10
2
/14*10
2
11/39
43.8/29.2
8.0/
76.3/62.0
108
85.4
Aspergillus Favus
72*10
2
/11*10
2
9/46
45.1/35.9
7.9
819
85.3
86.8
Mucor
12*10
2
/7*10
2
14/17
41.7/45.1
/69.0
Streptomyces
34*10
6
/ NA
16/ NA
40.5/ NA
8.2/ NA
985/ NA
78.0/ NA
98/ NA
85.1/ NA
CONVENCIONES: Valores en pila 2 / valores en pila 3
NA: No aplica
LOS MICROORGANISMOS EN LOS ABONOS ORGÁNICOS
73
factores, según la experiencia, a saber: en los pri-
meros días del proceso, el pH se situó entre 7 y 8,
valores adecuados para el desarrollo de
Aspergillus
niger
,
favus
y
fumigatus
). Sin embargo, su presencia
fue nula en ambas pilas, resultado sorprendente en
la pila 2 donde fue inoculado
Aspergillus niger
. Se
explica por el amensalismo derivado de la presencia
de
Streptomyces
sp., en la pila 2 y de
Pseudomonas
de la pila 3. El actinomiceto
Streptomyces
sp., se
caracteriza por producir antibióticos que inhiben el
crecimiento de otra microbiota con la que comparta
hábitat (Michael 2004) y la protobacteria gama
Pseudomonas
es antifúngica. Más aún, es un control
biológico aceptado para uso en frutas en Estados
Unidos (Palou 2007). Cuando estos inhibidores del
crecimiento desaparecieron, los valores de pH se
mantuvieron en 8, adverso a los hongos (Roussos y
Perraud-Gaime 1996). De ahí los valores bajos de
Aspergillus
y otros hongos.
Los microorganismos y la humedad.
Streptomyces
se inhibe cuando la humedad se sitúa continua-
damente entre 85 y 100% y crece en condiciones
más secas (Sánchez 2007). Pero fue otro su com-
portamiento en la pila 2 que fue la única en la que
actuó y donde había sido inoculada. Allí, cuando
la humedad estuvo más alta (72%), hubo un buen
desarrollo de
Streptomyces
. Cuando la humedad
bajó a 63%, el microorganismo desapareció. Se ha
supuesto que las colonias de
Streptomyces
debieron
ocupar, preferencialmente, la superFcie de la pila o
se situaron a poca profundidad dentro de ella donde
la humedad debió ser menor al estar matizada por
la temperatura interior y exterior y el aire exterior.
Durante los 18 días de la gran presencia de este
microorganismo la temperatura ambiente se mantuvo
entre 24.5 ºC y 31.5 ºC (promedio: 28.7 ºC). La ubi
-
cación en la superFcie indicada le permitió un buen
desarrollo ya que son aerobios estrictos (Droffnewr
et al
. 1995, Michael 2004).
Los microorganismos y la temperatura.
En relación
con la temperatura, al parecer especies de
Streptomyces
participantes en la experiencia no son de las mesóFlas
en las que el rango más alto tolerado es el situado entre
35 ºC y 47 ºC (Michael 2004) sino que pertenecen a
los pocos actoninomicetos (1/3) que son termóFlos o
termóFlos facultativos (Sánchez 2007). Este supuesto
se fundamenta en que estuvieron presentes en un rango
de temperatura entre 40.5 ºC y 58.8 ºC con poblaciones
que llegaron hasta 34×10
6
UFC y se inhibieron cuando
la temperatura descendió a 30 ºC, evento coincidente
con una reducción del nitrógeno.
Evolución de la microbiota
. En resumen,
Pseudo-
monas
(pila 3) y
Streptomyces
(pila 2) primero y el
pH después, inhibieron el desarrollo de los hongos
y la temperatura inhibió a
Pseudomonas
y
Strep-
tomyces
. La inhibición de la
Pseudomonas
ocurrió
el día 10 y fue ocasionada por el mantenimiento de
altas temperaturas desde el inicio del experimento
(Erickson
et al.
2009). La de
Streptomyces
ocurrió
entre los días 19 y 26 y se debió al descenso de la
temperatura a 30 ºC.
Infuencia de la relación C/N inicial en el compos
-
taje
. La experiencia comprobó la in±uencia de la
relación C/N inicial sobre el proceso. Ello se eviden-
ció en la tardanza en lograr la etapa termóFla en los
primeros días del compostaje, la menor temperatura
alcanzada y la menor duración del mantenimiento de
la temperatura más alta lograda, en la pila 2 con C/N
más altos (
Fig. 3
). La relación C/N inicial in±uyó
también en la duración del proceso. En la pila 3 con
C/N más bajo, se obtuvo abono a los 100 días y en la
pila 3, después de los 160 días (Kautsky
et al.
2004,
Raj y Antil 2011).
Higienización de la Composta
. Requiere, entre
otros pares temperatura – duración de temperatura,
la de 55 ºC por períodos superiores a 1 hora (Bernal
et al
. 1998, Laor
et al
. 2004, Elias 2005, Geisseler
et al
. 2010). Los valores obtenidos en la experiencia
fueron superiores tanto en el valor como en la dura-
ción (
Fig. 4
).
De ahí que los siguientes organismos
patógenos:
Salmonella
,
Shiguella
,
Klebsiella, Pseu-
domonas
y
Escheritchia coli,
presentes en la entrada
y en la etapa termóFla fueron erradicados en ambas
pilas desde el día 14.
Calidad del abono
. El producto obtenido se utilizó
como enmienda de suelos demostrando su calidad
(
Fig. 2
). Sus características en ambas pilas lo catalo-
gan como tipo A según la norma chilena 2880 (2004)
utilizada como testigo (
Cuadro III
). Además, cumple
con la norma española (Norma NTP 597 2008) sobre
contenido de microorganismos (
Cuadro IV
).
CONCLUSIONES
La investigación objeto del presente documento
conFrmó que con el método Indore modiFcado se ob
-
tiene abono tipo A, se facilitan y reducen los controles
sobre el compostaje y que, si se usan podas, se bene-
Fcia el ambiente al valorizar residuos, aumentando su
atractivo sobre todo para producciones artesanales.
A. Escudero de Fonseca y C.A. Arias Villamizar
74
CUADRO IV.
CUMPLIMIENTO CONTENIDO MICROORGANISMOS, PILAS 2 Y 3
Microorga-nismos
Máximo
tolerado
Pila 2, 60 días
Pila 2,
200 días
Pila 3, 60 días
Pila 3,
163 días
Aerobios Totales
5 × 10
10
46 *10
6
0
3.9 *10
3
0
Anaerobios Totales
5 × 10
8
No se reportaron
E. Coli
(N.M.P.)
1 × 10
3
0
0
0
0
Seudomonas
Ps
1 × 10
3
0
0
0
0
Hongos Filamentosos
1 × 10
7
En diluciones 10
2
:
Aspergillus niger
y
fumigatus
,
c/u, 8; A. Flavus, 11
0
En diluciones 10
2
:
Aspergillus niger
, 19 ;
A. fumigatus
, 7 ;
A.favus
, 8
0
Bacterias fjadoras N
1 × 10
5
0
0
Actinomicetos
1 × 10
4
Streptomyces
: 3 *10
3
0
0
0
CUADRO III.
CALIDAD DE ABONO EN LA UNIVERSI-
DAD DEL NORTE
Factor
Tipo de Composta,
según Norma Chi-
lena 2880, 2004
Resultado investigación
Universidad del Norte
Tipo de
abono
A
B
pila 2
pila 3
pH
5 - 8.5
5 - 8.5
7.9
7.6
A y B
CE
≤ 3 S/m
≤ 8
0.964
0.64
A y B
MO
≥ 20%
≥ 20%
29.52
27.54
A y B
C/N
≤ 25
≤ 30
12.87
18.42
A y B
N total
≥ 0.5
≥ 0.5
1.06
0.69
A y B
También mostró la gran inFuencia que ejer
-
ce la relación C/N inicial sobre el proceso y los
microorganismos (a menor relación pero cercana
al 35/1 teórico, menor duración del compostaje y
microbiota más abundante). El material de partida
y las condiciones del hábitat a su vez, inciden en
la composta y en el tipo de microorganismos que
gobiernan el abono.
El logro de abono tipo A mediante el método
Indore modifcado indicó, además, que los microor
-
ganismos cuentan con los nutrientes requeridos para
su desempeño por estar presentes en los residuos
vegetales utilizados y que el sistema desarrolla una
cinética bioxidativa sufciente y similar a la obtenida
en otros procesos que adicionan residuos animales y
aireación forzada
REFERENCIAS
Arrigo N., Jiménez M.D., Palma R.M. y Tortarolo M.B.
(2005). Residuos de poda compostados y sin compo-
star: uso potencial como enmienda orgánica en suelo.
Ci. Suelo (Argentina) - 23, 87-92.
ASTM (2007). D4972-01 Standard Test Method ±or pH
of Soils. Medición del pH de los suelos para distintos
usos: agrícola, ambiental y natural. Book o± Standards.
1 de septiembre de 2007. ASTM (2010). Norma
D2216-10 Standard Test Methods for Laboratory De-
termination of Water (Moisture) Content of Soil and
Rock by Mass. Determinación en laboratorio de la hu
-
medad contenida en suelo, rocas y materials similares.
Book o± Standards. 1 de agosto de 2010.
Bernal M.P. Paredes C., Sánchez-Monedero M. A y Ce-
garra J. (1998). Maturity and stability parameters o±
composts prepared with a wide range of organic wastes.
Bioresource Technol
.
63, 91-99.
Cardona Castelblanco S., Hernández Ríos L.J. (2008).
Aprovechamiento de residuos de podas mediante
compostaje en la base Marco Fidel Suárez. Pasantía
para optar al título de Administrador Ambiental, Dir.
Miller Gallego J. Universidad Autónoma de Occidente.
Cali. pp. 1-117.
Chiu-Chung Young P.R. (2005). Food & Fertilizer
Technology. Center ±or the Asian and Pacifc Re
-
gion. “What Happens during Composting?”. Annual
Report.
Diver S. (2004) Controlled Microbial Composting and Hu-
mus Management: Luebke Compost [en línea].
http://
www.ibiblio.org/steved/Luebke/Luebke-compost2.
html 13/01/2012
Droffner M. L., Brinton W. F., Evans E. Evidence for the
prominence of well characterized mesophilic bacteria
in Thermophilic (50-70 ºc) composting environments
(1995). Biomass
Bioarg. 8, 191-195.
Elias C. X., García J., López M., Soliva M. S. (2009).
Tecnologías aplicables al tratamiento de residuos.
Valorización y fabricación de materiales a partir de
residuos. En:
Reciclaje de Residuos Industriales
(J.
E. Castells, Ed.). Ediciones Díaz de Santos, España,
2da. ed. 93-171.
Erickson M. Liao J., Ma Li., Jiang X. y Doyle M. P.
(2009). Inactivation o± Salmonella spp. in cow manure
composts formulated to different initial C:N ratios
Bioresour. Technol
.
100, 5898-5903.
LOS MICROORGANISMOS EN LOS ABONOS ORGÁNICOS
75
Escudero A.R. y Arias C. A. (2010). Calidad nutricional de
la biotransformación de podas. Memorias. III Simposio
Iberoamericano de Ingeniería de Residuos de RE-
DISA [en línea]
Outro%20Tema/Calidad%20nutricional%20de%20
la%20biotransformaci%C3%B3n%20de%20podas.
pdf 30/11/11.
Geisseler D., Horwath W.R., Joergensen R.G. y Ludwig
B. (2010). Pathways of nitrogen utilization by soil
microorganisms. A review. Soil Biol. Biochem. 42,
2058-2067.
Hadas A., Kautsky L., Goek M. y Kara E.E. (2004). Rates
of decomposition of plant residues and available ni-
trogen in soil, related to residue composition through
simulation of carbon and nitrogen turnover. Soil Biol.
Biochem
.
36, 255-266.
Heckman, J.(2006).
A history of organic farming: Tran-
sitions from Sir Albert Howard’s war in the soil to
USDA National Organic Program. Renew. Agr. Food
Syst. 2, 143-150.
ICONTEC (2008). Norma Técnica Colombiana NTC
1556: Carne y productos cárnicos. Métodos para
determinar el contenido de nitrógeno. Instituto Co-
lombiano de Normas Técnicas y Certifcación. 23 de
agosto de 2008.
ICONTEC (2003). Norma Técnica Colombiana NTC
5167: Productos para la industria agrícola, productos
orgánicos usados como abonos o fertilizantes y en-
miendas de suelo. Instituto Colombiano de Normas
Técnicas y Certifcación. 28 de mayo del 2003.
INN (2004). Norma Chilena de Calidad de Compost
NCh2880. Diario Oficial la Norma Chilena 2880
“Compost - Clasifcación y requisitos”. 22 de Febrero
de 2005.
INSHT (2001). NTP 597: Plantas de compostaje para el
tratamiento de residuos: riesgos higiénicos. Ministe-
rio de Trabajo y Salud de España. Notas Técnicas de
Publicación.
Laor Y., Raviv M., Borisover M. (2004). Evaluating mi-
crobial activity in composts using microcalorimetry.
Thermochim. Acta 420, 119-125
López M.S. (2004).
C
alidad del compost: In±uencia del
tipo de materiales tratados. Formación de técnicos
para el tratamiento y gestión de lodos de depuradora
.
Valsaín
Ceneam/Mimam
.1-20
.
Martínez O.C. (2006). Efecto del pH sobre el crecimiento
de microorganismos durante la etapa de maduración
en pilas estáticas de compost.
Vol. 1 No. 2. PML, Jul
- Dic 2006. 87-98.
Michael T. y Madigan J.M.( 2004).
Brock, Biología de los
microorganismos.
Madrid: Pearson Education.
Palou L. (2007). Para el trataminiento antifúngico en
poscosecha de cítricos de producción integrada.
Re-
vista Especial de la Comunidad Valenciana para la
investigación agroalimentaria.
82-93.
Raj D. y Antil R.S. (2011). Evaluation of maturity and
stability parameters of composts prepared from agro-
industrial wastes. Bioresour. Technol. 102, 2868-2873.
Rogers B²., Boyles L.S., Bamka W.J. y Heckman J.R.
(2002). Guidelines for land application of non-tradi-
tional organic wastes (Food processing by products and
municipal yard wastes) on farmlands in New Jersey.
N. Jersey Agricultural Experiment Station. pp. 36 en
Bulletin E-281.
Roussos S. y Perraud-Gaime I. (1996). ²isiología y Bio
-
química de Microorganismos Utilizados en Procesos
de Fermentación en Medio Sólido. (E. Galindo, Ed.),
Fronteras en Biotecnología y Bioingeniería, Cuer-
navaca, México, pp. 341 -348.
Sánchez-Yáñez J. M., Villegas Moreno J., Márquez B. L.
(2007) Los actinomicetos en la fertilidad y producción
agrícola. [en línea]. http://www.monografas.com/tra
-
bajos47/actinomice tos /actinomicetos2.shtml. Fecha
de consulta: 21/09/11.
Varnero M.T., Rojas C. y Orellana R. (2007). Índices de
ftotoxicidad en residuos orgánicos durante el Com
-
postaje. R.C.Suelo Nutr. Veg. 7, 28-37.
Zmora-Nahum S., Markovitch O., Tarchitzky J. y Chen
Y.
(
2005). Dissolved organic carbon (DOC) as a pa-
rameter of compost maturity. Soil Biol. Biochem. 37,
2109-2116.
Zucconi ².M. (1985). Phytotoxins during the stabilization
of organic matter. En:
Composting of Agricultural and
Other Wastes
. (Gasser J.K.R. Ed.). Elsevier, Londres,
pp. 73-80.
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