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Red de Revistas Científicas de América Latina y el Caribe, España y Portugal
© 2012 Boletín Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas 11 (2): 111 - 126
ISSN 0717 7917
www.blacpma.usach.cl
Revisión | Review
111
Actividad antioxidante en guanábana (A
nnona muricata
l.):
una revisión bibliográfica
[Soursop (
Annona muricata
L.) antioxidant activity: A literature review]
Justine CORREA GORDILLO
1
, Darwin ORTIZ
2
, Jesús E. LARRAHONDO
1
, Myriam SÁNCHEZ MEJÍA
1
& Helena PACHÓN
2
1
Corporación para el desarrollo de la Biotecnología (Corporación Biotec), Palmira-Valle del Cauca, Colombia.
2
Centro Internacional de
Agricultura Tropical (CIAT), Palmira-Valle del Cauca, Colombia
Contactos | Contacts: Justine CORREA - E-mail address:
usi1-biotec@cgiar.org
Abstract
An antioxidant is a compound capable of inhibiting molecular oxidation and therefore of protecting biological molecules from reactive oxygen species or free
radicals. Antioxidants can be synthesized by the body or obtained from a diet containing fruit, such as soursop. The aim of this project was to review the
literature on antioxidant activity of the soursop and compounds that might be responsible for this activity. From the analysis of fourteen studies, we found that
in most cases soursop did not contain high activity or concentration of antioxidants in fresh or frozen pulp, in comparison with highly consumed fruits in
Colombia. The leaves, as well as the juice and wine from the plant, do not contain high activity or concentration of antioxidants. In-depth characterization of
antioxidant activity and compounds in soursop is lacking; additional studies are required to identify the mechanisms of action of the compounds present in
the
whole fruit (peel and seed) for different varieties of this tropical fruit.
Keywords:
DPPH, ABTS, ORAC, total phenolics, ascorbic acid.
Resumen
Los compuestos antioxidantes están en la capacidad de inhibir la oxidación de moléculas y por lo tanto actuar como protectores de moléculas biológicas
contra especies reactivas de oxígeno o radicales libres. Muchos antioxidantes pueden ser sintetizados en el cuerpo u obtenidos a partir de una dieta basada en
frutas, como la guanábana. El propósito del presente trabajo fue revisar las principales investigaciones relacionadas con el estudio de la capacidad
antioxidante de la guanábana y los compuestos presentes que le otorgan dicha propiedad. A partir del análisis de catorce investigaciones halladas sobre el
tema, se encontró que en la mayoría de los casos la guanábana no contiene concentraciones elevadas de actividad o compuestos antioxidantes en su pulpa
fresca o congelada comparada con frutos de mayor consumo en Colombia. Sus hojas, al igual que sus jugos y vinos, no contienen concentraciones elevadas de
actividad o compuestos antioxidantes. Sin embargo, el tema de investigación de compuestos antioxidantes en guanábana se ha realizado con poca
profundidad, hace falta estudios adicionales con métodos que logren la identificación de los mecanismos de acción de los compuestos presentes en el fruto
completo (cáscara y semilla) de las diferentes variedades que se conocen de este fruto tropical.
Palabras Clave
:
DPPH, ABTS, ORAC, fenoles totales, ácido ascórbico.
Recibido
| Received:
22 de Septiembre de 2011.
Aceptado en versión corregida | Accepted in revised form:
3 de Enero de 2012.
Publicado en línea | Published online:
30 de Marzo de 2012.
Este artículo puede ser citado como / This article must be cited as:
Justine Correa Gordillo, Darwin Ortiz, Jesús E. Larrahondo, Myriam Sánchez Mejía, Helena Pachón. 2012.
Actividad antioxidante en guanábana (A
nnona muricata
l.): una revisión bibliográfica.
Bol Latinoam Caribe Plant Med Aromat
11(2): 111 – 126.
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/112
INTRODUCCIÓN
En el mundo existe una tendencia hacia un mayor
consumo de frutas y hortalizas, motivado por una
creciente
preocupación
hacia
una
dieta
más
equilibrada y una mayor conciencia de la importancia
de
los
hábitos
nutricionales
humanos
en
los
problemas de salud y longevidad de las comunidades
(FAO, 2003; Herrera
et al.
, 2009). Un informe de la
Organización Mundial de la Salud (OMS) y la
Organización para la Agricultura y la Alimentación
de las Naciones Unidas (FAO, por sus siglas en
inglés), recomienda como objetivo poblacional la
ingesta de un mínimo de 400 g diarios de frutas y
verduras para prevenir enfermedades crónicas como
las cardiopatías, el cáncer, la diabetes o la obesidad,
así como para prevenir y mitigar varias carencias de
micronutrientes, sobre todo en los países menos
desarrollados (OMS, 2004). El consumo estimado de
frutas y verduras es muy variable en todo el mundo,
oscilando
entre
100
g/día
en
los
países
menos
desarrollados
y
aproximadamente
450
g/día
en
Europa Occidental (OMS, 2004). En Colombia, una
de cada tres personas no consume frutas y una de
cada
siete
no
consume
hortalizas
o
verduras
diariamente (ICBF, 2011). Según la OMS, uno de los
principales
factores
de
riesgo
de
cáncer
y
enfermedades cardiovasculares es la dieta malsana
(OMS, 2011).
En el mundo, el riesgo de padecer cualquier
tipo de cáncer antes de los 75 años es del 18.7%, los
más frecuentes son de pulmón, mama, colorrectal,
estómago y próstata (OMS, 2008a). Para Colombia,
las principales localizaciones de cáncer en hombres
son el cáncer de próstata,
estómago, pulmón y
colorrectal, mientras en mujeres son el cáncer de
mama, cuello uterino, estómago y colorrectal (OMS,
2008b). A partir de esta situación se elaboraron la
estrategia
mundial
sobre
régimen
alimentario,
actividad física y salud (OMS, 2004) y el plan
nacional para el control del cáncer en Colombia
(INC, 2010), los cuales tienen dentro de sus metas el
incremento del consumo de frutas y verduras. Está
demostrado que el consumo de frutas y verduras está
asociado con una baja incidencia de ciertos tipos de
enfermedades
debido
al
efecto
protector
de
compuestos presentes en estos alimentos de origen
natural (Herrera
et al.
, 2009). Lo anterior crea la
necesidad
de
obtener
información
sobre
los
contenidos fitoquímicos y antioxidantes de las frutas
y verduras de mayor consumo en las comunidades
(Lako
et al.
, 2007).
El
cuerpo
humano
mediante
su
funcionamiento metabólico normal genera Especies
Reactivas de Oxígeno (ROS, por sus siglas en inglés),
las cuales al encontrarse en exceso pueden causar
daños
a
macromoléculas
biológicas como
ADN,
lípidos, carbohidratos y proteínas (Gomes
et al.
,
2010). Estos daños se han asociado al desarrollo de
padecimientos
como
cáncer,
enfermedades
cardiovasculares, visuales y desordenes inmune y
neurodegenerativos
(Quiles
et
al.
,
2006).
Los
antioxidantes presentes en frutas y verduras protegen
la salud del cuerpo disminuyendo los efectos de ROS
(Isabelle
et al.
, 2010), mediante la prevención del
ataque de los radicales libres a las macromoléculas ya
que tienen capacidad preferencial de oxidación. Estos
compuestos antioxidantes pueden inhibir o retardar la
oxidación de dos formas: captando radicales libres
(primarios)
o
por
mecanismos
que
no
estén
relacionados con la captación de radicales libres
(secundarios) (Floegel
et al.
, 2011).
Entre
los
compuestos
que
pueden
actuar
como antioxidantes se encuentran vitaminas C y E,
carotenoides,
antocianinas,
flavonoides
y
otros
compuestos fenólicos (Lako
et al.
, 2007; Baskar
et
al.
, 2007; Contreras
et al.
, 2010). Muchos de estos
antioxidantes
son
lipofílicos
y
particularmente
importantes en la oxidación de lípidos en todos los
sistemas, así como otros radicales que son muy
activos fisiológicamente (Karadag
et al.
, 2009). A
través de efectos aditivos y de sinergia entre los
compuestos con actividad antioxidante presentes en
frutas
y
verduras
pueden
proporcionar
mejor
protección
contra
ROS
que
un
solo
compuesto
(Isabelle
et al.
, 2010).
La guanábana (
Annona muricata
L.) no hace
parte de los nueve frutos de mayor consumo en
Colombia (ICBF, 2006), pero se encuentra entre las
pulpas y jugos de preferencia en los consumidores
colombianos (Corporación Biotec y CIAT, 2002).
Además, es considerada una planta medicinal que
constituye una alternativa común para el tratamiento
del cáncer gástrico y gastrointestinal en muchos
países del mundo (Alonso
et al.
, 2010). Esto motivó
la realización de la presente revisión bibliográfica
con el fin de conocer los estudios sobre actividad
antioxidante y los compuestos que le otorgan dicha
actividad a las diferentes partes del fruto y planta en
general.
Si
bien
se
ha
presentado
evidencia
en
muchas
regiones
del
mundo
que
el
consumo
constante de guanábana o la infusión de sus hojas
produce un parkinsonismo atípico (Badrie y Schauss,
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/113
2010), es mayor la información que se encuentra
sobre
sus
propiedades
benéficas
contra
diversas
enfermedades.
Los principales propósitos de la presente
investigación fueron conocer las generalidades de la
guanábana, como su origen, uso, consumo, entre
otros, pasando a un enfoque en Colombia sobre los
mismos
temas.
Finalmente,
la
búsqueda
estuvo
orientada en las propiedades nutricionales y en la
actividad antioxidante determinada en guanábana, en
estudios internacionales y nacionales, con el fin de
conocer cuáles análisis se han realizado en las partes
del árbol que puedan ser útiles para darle un valor
nutricional, farmacológico o cosmético a esta planta.
METODOLOGÍA
La presente revisión fue realizada sistemáticamente
en las principales bases de datos de bibliografía
bioquímica,
agrícola,
biológica
y
biomédica:
AGRICOLA,
Science
Direct,
EBSCO,
Pubmed,
Pubmed
Central,
Agris-Caris,
ACS
American
Chemical
Society,
BioMed
Central,
Chemistry
Central, Chicago Journals, Directory of Open Access
Journals
DOAJ,
E-Journal,
JSTOR,
Informe
Académico,
OVID,
REDALYC,
Scientific
Electronic Library Online (SCIELO), Springer Link,
Science Magazine. Con el propósito de encontrar la
información más adecuada sobre guanábana y su
actividad antioxidante, se utilizaron como palabras
clave
Annona
muricata,
guanábana,
graviola,
soursop,
actividad
antioxidante,
polifenoles,
flavonoides, vitamina C, ácido ascórbico, DPPH,
ABTS,
ORAC.
Se
limitó
la
búsqueda
a
investigaciones
en
inglés,
español
y
portugués,
publicadas hasta el 10 de marzo de 2011.
La selección de los artículos se realizó de
acuerdo con los objetivos planteados desde el inicio,
es decir, primero obtener información acerca de las
características y propiedades generales de la planta y
su fruto, como su origen y clasificación taxonómica,
entre otros; para lo cual se prefirieron artículos o
libros sobre el cultivo de la guanábana y su familia en
general: Annonacea. Al cambiar por temas como los
usos, aspectos tradicionales, consumo, producción y
composición nutricional, tanto en el mundo como en
Colombia, se requirió realizar una orientación en las
fuentes
más
probables:
FAO,
Ministerio
de
Agricultura
y
Desarrollo
Rural
de
Colombia
(MADR),
Departamento
de
Agricultura
de
los
Estados Unidos (USDA, siglas en inglés), e Instituto
Colombiano de Bienestar Familiar (ICBF), entre
otros.
Por último, abarcando el tercer punto de la
investigación bibliográfica y principal objetivo de la
misma,
se
enfocó
la
búsqueda
en
la
actividad
antioxidante determinada en estudios anteriores que
permitieran establecer si el contenido de compuestos
que otorgan dicha capacidad es considerable para
darle continuidad a una investigación más profunda
sobre el tema, por lo cual los resultados estuvieron
basados
en
artículos
científicos
con
información
relevante y comprobada, que se comparó con datos
encontrados
en
frutos
de
mayor
consumo
en
Colombia
y
que
son
considerados
ricos
en
antioxidantes.
En las diferentes bases de datos consultadas
se obtuvieron 78 artículos y libros con información
sobre origen, usos, composición nutricional y otros
temas de la guanábana y su familia. De éstos, catorce
reportaban investigación relacionada con actividad
antioxidante; cinco estudios determinaban actividad
antioxidante total o compuestos que la proporcionan
en pulpa fresca, tres en pulpa congelada, cuatro en
hojas y dos en jugos y/o vinos.
RESULTADOS
Características generales de la guanábana
La
guanábana
(soursop
en
inglés,
graviola
en
portugués), perteneciente a la familia Annonacea,
género
Annona
y
de
nombre
científico
Annona
muricata
Linn, es originaria de América y África
tropical, y debido a la llegada de los españoles a
América fue distribuida en los trópicos y hoy en día
es posible encontrarla en el oeste de la India, en
Norte y Suramérica, Islas del Pacífico y en el Sureste
de Asia (Badrie y Schauss, 2010; Bicas
et al.
, 2011,
Márquez, 2009).
No se ha encontrado descripción
referente a las variedades de guanábana; sin embargo,
existen clasificaciones botánicas diferentes en cada
país, como se verá más adelante en el caso de
Colombia. Además se presentan diferentes tipos de
guanábana clasificados según el sabor, la forma y la
consistencia de la pulpa.
Los árboles de guanábana varían mucho en
cuanto al crecimiento, follaje y copas, lo cual se debe
en
algunos
casos
a
la
luminosidad,
al
manejo,
procedencia y a otros factores (Morales, 1991). Bajo
condiciones
agroecológicas
adecuadas,
su
fase
reproductiva
es
continua
y
sus
frutos
poseen
características
sensoriales
(color,
textura,
olor
y
sabor)
(Tabla
1)
que
la
hacen
apetecida
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/114
internacionalmente; dichos frutos se pueden utilizar
como producto fresco o transformado (Márquez,
2009). Además, un factor importante a la hora del
desarrollo
y
producción
de
guanábana
es
la
resistencia a pestes, enfermedades y al clima, lo cual
permite garantizar la calidad del fruto (Corporación
Biotec, 2008).
Aunque
la
información
sobre
su
composición, valor nutricional, usos medicinales y
toxicología es limitada, la guanábana es una de las
frutas exóticas más apreciadas por su agradable,
aromática,
sub-ácida
y
jugosa
pulpa;
lo
que
la
convierte en una fuente potencial para producir puré,
jugo, mermelada, jalea, barras dulces y postres (Abbo
et al.
, 2006). Además, uno de los intereses en esta
fruta es la creciente demanda en el mundo por
sabores exóticos, por lo cual es probable que sus usos
se extiendan (Pinto
et al.
, 2005).
Tabla 1
Características principales de la planta y las frutas de la guanábana (Pinto
et al.
, 2005).
Característica
Descripción
Vida de almacenamiento (15-30ºC)
Alta (> 5 días)
Planta
Tasa de reproducción
Alta (> 60 kg/árbol/año)
Resistencia
Clima (temperatura)
Bajas temperaturas < 18ºC
Pestes y enfermedades
Alta
Época de cosecha
Todo el año
Fruta
Tamaño
Industria
Grande
Consumo fresco
Pequeño
Peso
Industria
> 2.5 kg
Consumo fresco
0.8-2.5 kg
Cáscara
Pequeñas protuberancias
Pulpa
Sub-ácida, baja fibra
Sabor
Sabor sub-ácido
Semillas (número/100 g de pulpa)
Bajo (10 -30 semillas)
La
utilización
y
mejora
de
la
comercialización de la guanábana se debe, desde el
punto
de
vista
alimentario,
a
los
componentes
nutricionales que se han determinado en este fruto
(Ojeda
et
al.
,
2007).
Por
otra
parte,
en
la
farmacología ha empezado a cobrar fuerza el hecho
que su tallo, sus hojas y semillas han sido usadas
históricamente
en
medicina
tradicional
por
los
pueblos
indígenas
dadas
sus
capacidades
antitumorales, parasiticidas y anti-diarreicas (Solís-
Fuentes
et al.
, 2010)
Las
hojas
de
guanábana
son
utilizadas
tradicionalmente en Brasil para problemas del hígado
(Solís-Fuentes
et al.
, 2010), también son usadas como
supurativo (contra mucosidades, secreciones o flujos)
y antipirético (Badrie y Schauss, 2010) y contra la
inflamación (Gomez
et al
., 2009). Vieira de Sousa
et
al
. (2010), por ejemplo, realizaron un análisis de la
capacidad antiinflamatoria del extracto etanólico de
las hojas de guanábana obteniendo la confirmación
de su posible uso terapéutico, pero recomendando la
realización de estudios sobre los efectos secundarios
que se pueden presentar.
Respecto a las semillas de la guanábana, se
encuentra que su aceite puede contener características
fisicoquímicas que incrementan su utilización en la
industria
alimenticia,
farmacéutica
y
cosmética
(Solís-Fuentes
et al.
, 2010). Tradicionalmente estas
semillas se usan como insecticida, astringente y
carnada de pesca (Badrie y Schauss, 2010).
Los frutos de guanábana se usan en América
del Sur para tratar gusanos y parásitos, para bajar la
fiebre, incrementar la leche de las madres después del
parto y como un astringente para diarrea y disentería
(Baskar
et al.
, 2007; Álvarez, 2007). Además de los
usos mencionados anteriormente en la industria de
alimentos.
Guanábana en Colombia
En
el
país
existen
variedades
de
guanábana
correspondientes a clones propagados, entre los que
se encuentran Joya y Elita (Corporación Biotec,
2008), de los cuales sólo es comercializado el último
en
el
Valle
del
Cauca,
principal
departamento
productor de guanábana en el 2009 (MADR, 2009)
según el MADR (Tabla 2). Además, existen otros
clones (Cristina, Rojas y San Francisco) que se han
propagado
en
diferentes
regiones
también
productoras del fruto: Tolima, Santander, Huila y el
Caribe colombiano. Igualmente, se encuentra un clon
introducido a Colombia desde Costa Rica, el cual
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/115
lleva el mismo nombre de ese país (Corporación
Biotec, 2008).
Al igual que en el resto de países donde se
cultiva la guanábana, en Colombia se le da uso
principalmente como fruto fresco y la producción de
jugos tanto en el hogar como industrialmente. Es
usada para tratamientos de los problemas de salud
como la malaria, en la medicina popular por sus
propiedades
anti-diarreicas,
anti-diabéticas
y
abortivas,
igualmente
se
usa
como
antiviral,
insecticida
y
antiparásito
(Osorio
et
al.
,
2007),
además sus hojas son utilizadas contra la inflamación
(Reyes, 2009). Debido a todos los usos mencionados,
la Corporación para el desarrollo de la Biotecnología
(Corporación Biotec), ubicada en el Valle del Cauca
ha trabajado en el mejoramiento de los cultivos del
fruto
para
optimizar
su
producción
y
calidad
(Corporación Biotec, 2008; Corporación Biotec
et al.
,
2006, Sánchez
et al.
, 2006).
Tabla 2
Principales departamentos productores de guanábana en 2009 en Colombia (MADR, 2009).
Departamento
Área (Has)
Participación (%)
Valle del Cauca
609.0
27.5
Tolima
498.0
22.5
Antioquia
288.0
13.0
Santander
258.0
11.6
Risaralda
141.0
6.4
Huila
120.0
5.4
Vichada
114.0
5.1
Cundinamarca
59.0
2.7
Nariño
42.0
1.9
Otros
86.0
3.9
Total
2215.0
100
Por otro lado, el Instituto Colombiano de
Bienestar
Familiar (ICBF)
se
encarga
de
dar
a
conocer la composición nutricional de los alimentos
que se consumen en el país (ICBF, 2005). El de la
guanábana se encuentra en la Tabla 3, donde se
observa que es una buena fuente de vitamina C, con
10.07 mg/100 g en pulpa, teniendo en cuenta que la
ingesta diaria recomendada en Colombia es de 20-38
mg (niños) y 45-60 mg (mujeres y hombres) (ICBF,
1988). La vitamina C es considerada un nutriente que
ayuda a mantener la piel y la mucosa en estado
saludable, que posee efecto antioxidante (Yamada
et
al.
, 2008), y es un factor importante en el desarrollo y
mantenimiento
de
huesos,
cartílagos
y
dientes
(L’Abbé
et al.
, 2008).
Los datos de composición nutricional de la
guanábana (Tabla 3) elaborados por el ICBF (2005) y
el USDA (2010) evidencian que las semillas del fruto
son
una
fuente
importante
de
los
nutrientes,
empezando por la energía, donde las semillas aportan
un valor significativo a las kilocalorías totales del
fruto, igual aporte es notorio para vitamina C y
carbohidratos totales.
Tabla 3
Composición de la guanábana en pulpa solamente (ICBF, 2005) y en pulpa y semillas (USDA, 2010)
Nutrientes
Unidad
Valor por 100 g
Pulpa
Pulpa y semillas
Humedad
g
95.60
81.16
Energía
kcal
14.00
66.00
Proteína
g
0.20
1.00
Lípidos
g
0.20
0.30
Carbohidratos totales
g
3.00
16.84
Fibra total
g
0.80
3.30
Vitamina C
mg
10.07
20.60
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/116
Actividad antioxidante en guanábana
Fueron encontraron diversos estudios que determinan
Capacidad Antioxidante Total (TAC, por sus siglas
en inglés) y los compuestos que la proporcionan
presentes en guanábana, los cuales se mencionan a
continuación y se encuentran resumidos en la Tabla
4.
Tabla 4
Actividad y compuestos antioxidantes encontrados en diferentes partes de la guanábana (
Annona Muricata
L.).
Autor
Parte/País
Ensayo
Resultado
Comparación
Gunawardena y
Silva, 2006
Pulpa/Sri Lanka
FRAP
*
503±11 μmol/L/g
Naranja 1141 ± 2.7 μmol/L/g
Mango 5386 ± 13 μmol/L/g
AA
63±2.5 mg AA/100 g
Naranja 67 ± 9 mg AA /100 g
(Lim
et al.
, 2007)
Isabelle
et al.
,
2010.
Pulpa/Singapur-
Malasia
ORAC
-Hidrofílico
14.51 μmol de Trolox/g
Naranja 26.19 μmol de Trolox/g
Fenoles totales
2.36 mg AGE
§
/100 g
Mora 330 ± 4 mg AGE/100 g
(Proteggente
et al.
, 2002)
Naranja 126 ± 6 mg AGE/100 g
(Proteggente
et al.
, 2002)
AA
15.98 mg AA/100 g
Naranja 67 ± 9 mg AA/ 100 g
(Lim
et al.
, 2007)
Antioxidantes lipofílicos
Luteína 0.06 μg/g
β-cryptoxantina 0.05 μg/g
Licopeno 0.08 μg/g
α-caroteno 0.02 μg/g
β-caroteno 0.05 μg/g
α-tocoferol 0.12 μg/g
γ-tocotrienol 0.05 μg/g
α-tocotrienol 0.11 μg/g
Carotenoides totales 0.27 μg/g
zeaxantina nd
δ-tocoferol nd
γ-tocoferol nd
δ-tocotrienol nd
Banano
Luteína 0.07 μg/g
β-cryptoxantina 0.03 μg/g
Licopeno nd
**
α-caroteno 0.18 μg/g
β-caroteno 0.27 μg/g
α-tocoferol nd
γ-tocotrienol nd
α-tocotrienol nd
Carotenoides totales 0.62 μg/g
zeaxantina nd
δ-tocoferol 0.10 μg/g
γ-tocoferol nd
δ-tocotrienol nd
Lako
et al.
, 2007
Pulpa/Fiji
ABTS
††
287.67 μmol Trolox/100 g
Plátano maduro
< 4.00 μmol Trolox/100 g
Fenoles totales
42 mg AGE/100 g
Mora 330 ± 4 mg AGE/100 g
(Proteggente
et al.
, 2002)
Naranja 126 ± 6 mg AGE/100 g
(Proteggente
et al.
, 2002)
Antocianinos totales
nd
Papaya
0.06 mg mg cianidina-3-glucósido/100
g
Antioxidantes lipofílicos
Licopeno nd
α-caroteno nd
β-caroteno nd
Papaya
Licopeno 1.7 mg/100 g
α-caroteno nd
β-caroteno 0.5 mg/100 g
Flavonoles
Myricetin <1 μg/mL
Fisetin trazas
Morin trazas
Quercetin nd
Kaempferol nd
Isorhamnetin < 1 μg/mL
Papaya
Myricetin 3 μg/mL
Fisetin <1 μg/mL trazas
Morin 2 μg/mL
Quercetin 2 μg/mL
Kaempferol 2 μg/mL
Isorhamnetin <1 μg/mL
Márquez, 2009
Pulpa (variedad
Elita)/Colombia
ABTS
1200 μmol Trolox/100 g
Naranja 849 ± 25 μmol Trolox/100 g
(Proteggente
et al.
, 2002)
Banano 181 ± 39 μmol Trolox/100 g
(Proteggente
et al.
, 2002)
FRAP
400 μmol AA/100 g
No se encontraron datos comparables
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/117
Autor
Parte/País
Ensayo
Resultado
Comparación
Fenoles totales
55 mg AGE/100 g
Mora 330 ± 4 mg AGE/100 g
(Proteggente
et al.
, 2002)
Naranja 126 ± 6 mg AGE/100 g
(Proteggente
et al.
, 2002)
AA
29 mg AA/100 g
Naranja 67 ± 9 mg AA/ 100 g
(Lim
et al.
, 2007)
Ogunlesi
et al
,
2010
Pulpa/Nigeria
AA por titulación con N-
bromosuccinamida
13.63 mg AA/100 g
Naranja 67 ± 9 mg AA/ 100 g
(Lim
et al.
, 2007)
AA por voltametría
cíclica
10.51 mg AA/100 g
Hassimotto
et
al.
, 2005
Pulpa
congelada/
Brasil
Decoloración β-caroteno
Extracción metanólica
24.7 ± 3.6%
(adición 10
μ
M AGE)
50.3 ± 3.8%
(adición de 50
μ
M AGE)
Extracción metanólica
Guayaba
30.4 ± 4.3% (adición 10 μM AGE)
38.3 ± 3.8% (adición de 50 μM AGE)
Extracción en fase sólida
36.7 ± 2.9 %
(adición 10
μ
M AGE)
55.2 ± 4.5%
(adición 50
μ
M AGE)
Extracción en fase sólida
Guayaba
48.4 ± 4.7% (adición 10 μM AGE)
63.9 ± 5.7% (adición 50 μM AGE)
Peroxidación lipídica
3.5 ± 0.8%
(adición 10
μ
M AGE)
16.3 ± 2.3%
(adición 50
μ
M AGE)
Guayaba
24 ± 2% (adición 10
μ
M AGE)
57.5 ± 2.9% (adición 50
μ
M AGE)
Fenoles totales
120±8 mg AGE/100 g
Guayaba 119 ± 4 mg AGE/100 g
AA
nd
Guayaba 49.9 ± 0.3 mg AA/100 g
Hassimotto
et
al.
, 2009
Pulpa
congelada/Brasil
Decoloración β-caroteno
0.5 ± 0.0 μmol BHT
‡‡
equivalente/g
Guayaba 3.2 ± 0.3 μmol BHT
equivalente/g
Kuskoski
et al.
,
2005
Pulpa
congelada/Brasil
ABTS
76.8 ± 4.0 mg AA/100 g
(1 min)
Mango 224.7 ± 4.6 mg AA/100 g
(1 min)
4.3 ± 0.4 μmol Trolox/g
(1 min)
Mango 11.8 ± 0.9 μmol Trolox/g
(1 min)
4.8 ± 0.3 μmol Trolox/g
(7 min)
Mango 13.2 ± 0.3 μmol Trolox/g
(7 min)
DPPH
§§
46.66 ± 1.6 mg AA/100 g
(30 min)
Mora 125.8 ± 3.2 mg AA/100 g
(30 min)
2.88 ± 0.32 μmol Trolox/g
(30 min)
Mora 4.3 ± 0.2 μmol Trolox/g
(30 min)
4.5 ± 0.9 μmol Trolox/g
(60 min)
Mora 5.9 ± 0.3 μmol Trolox/g
(60 min)
DMPD
***
79.6 ± 4.0 mg AA/100 g
(30 min)
Mango 174.3 ± 0.5 mg AA/100 g
Guayaba 100.7 ± 2.2 mg AA/100 g
4.8 ± 0.3 μmol Trolox/g
(10 min)
Mango 24.3 ± 0.3 μmol Trolox/g
Guayaba 4.2 ± 0.1 μmol Trolox/g
Fenoles totales
84.3 ± 5.8 mg AGE/100 g
Guayaba 83.0 ± 1.3 mg AGE/100 g
Antocianinos totales
nd
Mora 41.8 ± 1.8 mg cianidina-3-
glucósido/100g
Barkar
et
al.
,
2007
Hojas/India
DPPH
70 μg/mL IC
50
Anona blanca 65 μg/mL IC
50
Annona colorada 80 μg/mL IC
50
ABTS
305 μg/mL IC
50
Anona blanca 300 μg/mL IC
50
Annona colorada 260 μg/mL IC
50
Peroxidación lipídica
455 μg/mL IC
50
Anona blanca 480 μg/mL IC
50
Annona colorada 315 μg/mL IC
50
Seguimiento al radical
óxido nítrico
350 μg/mL IC
50
Anona blanca 370 μg/mL IC
50
Annona colorada 225 μg/mL IC
50
Seguimiento al radical
hidroxilo
155 μg/mL IC
50
Anona blanca 300 μg/mL IC
50
Annona colorada 215 μg/mL IC
50
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/118
Autor
Parte/País
Ensayo
Resultado
Comparación
Seguimiento al radical
superóxido
300 μg/mL IC
50
Anona blanca 300 μg/mL IC
50
Annona colorada 285 μg/mL IC
50
Gomes
et al.
,
2010
Hojas/Brasil
DPPH
221.52 ± 16.12 μg/mL IC
50
Catingueira (
Poincianella pyramidalis
)
42.95 ± 1.77 μg/mL IC
50
Marques y
Farah, 2009
Hojas/Brasil
Ácido gálico
48.6 ± 1.5 mg/100 g
Ginkgo (
Ginkgo biloba
) nd
Ácidos clorogénicos
Ácidos cafealquínico (CQA)
3-CQA 3.6 ± 0.1 mg/100 g
4-CQA 0.5 ± 0.1 mg/100 g
5-CQA 3.3 ± 0.2 mg/100 g
Ácidos feruloilquinico (FQA)
3-FQA trazas
4-FQA nd
5-FQA nd
Ácidos dicafeoilquinico
(diCQA)
3,4-diCQA trazas
3,5-diCQA nd
4,5-diCQA nd
Ginkgo (
Ginkgo biloba
)
Ácidos cafealquínico (CQA)
3-CQA nd
4-CQA nd
5-CQA 4.0 ± 0.2 mg/100 g
Ácidos feruloilquinico (FQA)
3-FQA nd
4-FQA nd
5-FQA nd
Ácidos dicafeoilquinico (diCQA)
3,4-diCQA trazas
3,5-diCQA trazas
4,5-diCQA trazas
Okigbo y Obire,
2009
Jugo/Nigeria
AA
46.2 mg AA/100 mL
No se encontraron datos comparables
Vino/Nigeria
13.89 mg AA/100 mL
No se encontraron datos comparables
Rodríguez
et al.
,
2007
Vino/Cuba
ABTS
2.57 mmoles Trolox/L
Naranja 5.06 mmoles Trolox/L
Guayaba 3.52 mmoles Trolox/L
FRAP
1.34 mmoles Fe
2+
/L
Naranja
2.37 mmoles Fe
2+
/L
Guayaba 4.32 mmoles Fe
2+
/L
*
FRAP: Poder por reducción de hierro.
AA: Ácido Ascórbico-vitamina C.
ORAC: Capacidad de absorbancia del radical oxígeno.
§
AGE: Ácido Gálico Equivalente.
**
nd: no detectado.
††
ABTS: Captura del radical catiónico 2’-azino-bis (3– etilbenzotiazolin)-6-sulfonato de amonio (ABTS
•+
).
‡‡
BHT: Butil Hidroxi Tolueno.
§§
DPPH: Actividad del radical 1,1-difenil, 2-picrylhidrazyl.
***
DMPD: Actividad de diclorhidrato de N,N-dimetil-p-fenilendiamina.
Capacidad antioxidante total
Los métodos más aplicados para medir TAC en frutas
son el ABTS
y el DPPH (Márquez, 2009). El primero
se realiza por la medida de la capacidad de capturar el
radical catiónico 2’-azino-bis (3–etilbenzotiazolin)-6-
sulfonato
de
amonio
(ABTS
•+
).
Para
realizar
la
determinación
se
utilizan
métodos
espectrofoto-
métricos, donde se calcula el porcentaje de inhibición
de dicho radical (Karadag
et al.
, 2009). El método
DPPH se realiza por seguimiento de la actividad del
radical 1,1-difenil, 2-picrylhidrazyl (de allí su nombre:
DPPH), la cual se mide por espectroscopía y sólo se
utiliza en medio orgánico (Karadag
et al.
, 2009).
Además,
existen
otros
métodos
para
determinar la actividad antioxidante. Determinación de
la
capacidad
de
absorbancia
del
radical
oxígeno
(ORAC, siglas en inglés), utiliza la fluorescencia para
realizar
la
cuantificación
(Karadag
et
al.
,
2009).
Cuantificación del
poder por reducción de hierro,
FRAP
(siglas en inglés), se basa en la habilidad de los
compuestos
para
reducir
los
complejos
amarillos
férricos a complejos azules ferrosos por la acción
electrón-donadora de los antioxidantes (Benzie
et al.
,
1999);
la
medida
del
complejo
azul
espectroscópicamente indica la capacidad reductora
total (Karadag
et al.
, 2009). Un método sencillo para
determinar TAC es la decoloración de β-caroteno, que
consiste en medir la capacidad de un compuesto para
reducir al mínimo la pérdida de β-caroteno durante la
oxidación del ácido linoléico unido a él en un sistema
acuoso
emulsificado
utilizando
espectrofotometría
para cuantificar y así poder calcular el porcentaje de
inhibición (Hassimotto
et al.
, 2005, 2009). Existe otro
compuesto
cromógeno
utilizado
para
determinar
mediante métodos espectrofotométricos la capacidad
antioxidante de los frutos: DMPD (diclorhidrato de
N,N-dimetil-p-fenilendiamina) (Kuskoski
et al.
, 2005).
Por otro lado, existen métodos que realizan
seguimiento a radicales específicos que causan daños a
los componentes celulares de los organismos vivos;
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/119
entre éstos radicales se encuentran el óxido nítrico,
hidroxilo
y
superóxido
(Baskar
et
al.
,
2007).
Asimismo, se realiza la cuantificación de capacidad
antioxidante mediante el seguimiento de la oxidación
de
lípidos,
método
relevante
para
los
sistemas
fisiológicos (Baskar
et al.
, 2007; Karadag
et al.
, 2009).
La mayoría de los métodos anteriormente
mencionados expresan sus resultados como capacidad
antioxidante equivalente a Trolox (ácido 6-hidroxi-
2,5,7,8-tetrametilcromo-2-ácido carboxílico), que es
un antioxidante sintético de referencia, hidrosoluble
análogo a la vitamina E y se usa como estándar
comparativo de su actividad antioxidante respecto a la
de los compuestos presentes en las muestras (Lako
et
al.
,
2007; Floegel
et
al.
,
2011;
Márquez,
2009;
Kuskoski
et al.
, 2005; Proteggente
et al.
, 2002).
También
se
pueden
expresar
como
la
cantidad
requerida para reducir los radicales libres en un 50%
(Inhibitory Concentration - IC
50
), en tal caso, valores
bajos
de
IC
50
representan
mayor
capacidad
antioxidante (Baskar
et al.
, 2007; Lim
et al.
, 2007). Es
común encontrar valores de TAC expresados como
vitamina C (Kuskoski
et al.
, 2005). Además, todos
estos métodos no tienen un tiempo establecido para
finalizar
reacción,
lo
cual
conlleva
a
que
cada
investigación determine el TAC en diferentes etapas
(Karadag
et al.
, 2009).
Mediante los métodos ABTS y FRAP se han
realizado éstas determinaciones en pulpa fresca (PF)
de
guanábana
colombiana
durante
tiempo
de
poscosecha, obteniendo el valor más alto, con ambos
métodos, para el día noveno: 1200 μmol Trolox/100 g
(ABTS) y 400 μmol AA/100 g (FRAP) (Márquez,
2009) (Tabla 4). El resultado obtenido por el ensayo
ABTS se puede comparar con los de Proteggente
et al.
(2002) en frutas de elevado consumo en Colombia
(ICBF, 2006): naranja (849 ± 25 μmol Trolox/100 g) y
banano (181 ± 39 μmol Trolox/100 g) (Proteggente
et
al.
, 2002). Resulta que después de nueve días de
cosecha, la actividad antioxidante de guanábana es
más alta que la del banano y la naranja, número 14 en
el ranking de frutas ricas en antioxidantes consumidas
en EEUU (Floegel
et al.
, 2011). Los datos de FRAP
no son comparables con otras frutas debido a la forma
de expresar el resultado. En otro estudio, de diferentes
pulpas de frutos analizadas por ABTS en Fiji, la
guanábana
presentó
una
de
las
capacidades
antioxidante más altas: 287.67 μmol Trolox/100 g
(Lako
et al.
, 2007), que es mucho mayor a la del
plátano maduro (< 4.00 μmol Trolox/100 g), de mayor
consumo en Colombia y analizado en el mismo
estudio.
La capacidad antioxidante total en términos
del poder reductor de hierro fue determinada en frutas
subutilizadas
en
Sri
Lanka,
entre
las
cuales
se
encuentra la guanábana; Gunawardena y Silva (2006)
obtuvieron un valor promedio de 503 ± 11 μmol/L/g,
segundo valor más bajo de los frutos analizados en
este estudio, que al compararlo con frutos de mayor
consumo como naranja (1141 ± 2.7 μmol/L/g) y
mango (5386 ± 13 μmol/L/g), se evidencia que la
guanábana
no
sobresale
entre
estos
últimos,
presentando
valores
por
debajo
del
50
y
10%,
respectivamente. La determinación por ORAC en
pulpa de guanábana proveniente de Malasia se ha
realizado
en
Singapur,
obteniendo
14.51
μmol
Trolox/g (Isabelle
et al.
, 2010), valor que se encuentra
entre los más bajos de las frutas estudiadas en esa
investigación y por debajo de uno de los frutos de
mayor consumo en Colombia: naranja (26.19 μmol
Trolox/g) (Isabelle
et al.
, 2010).
Los
resultados
encontrados
de
actividad
antioxidante
total
en
pulpa
fresca
de
guanábana
muestran
resultados
relativamente
altos
para
los
estudios realizados por ABTS y bajos para los que
utilizan FRAP y ORAC. Esto sugiere que la presencia
de antioxidantes hidrofílicos (medidos por ORAC) es
baja, al igual que la concentración de los que utilizan
la transferencia de electrones como mecanismo de
acción (determinados por FRAP). Por lo tanto, los
antioxidantes presentes en la pulpa de guanábana son
primordialmente lipofílicos y actúan por donación de
hidrógeno.
La
capacidad
antioxidante
total
se
ha
determinado
también
para
pulpa
de
guanábana
congelada. En un estudio realizado por Kuskoski
et al.
(2005) se utilizó el método ABTS, expresado como
Ácido Ascórbico (AA), obteniendo 76.8 ± 4.0 mg
AA/100 g, valor menor al 10% del más alto (acerola:
1198.9 ± 8.1 mg AA/100 g) y bajo comparado con un
fruto de mayor consumo en Colombia como el mango
(224.7
±
4.6
mg
AA/100
g).
Estos
mismos
investigadores determinaron por ABTS en diferentes
tiempos
para
pulpa
congelada
de
guanábana,
expresado a equivalentes Trolox, valores de 4.3 ± 0.4
μmol
Trolox/g
y
4.8
±
0.3
μmol
Trolox/g,
transcurridos 1 y 7 min, respectivamente. Comparando
éstos valores con los de mango: 11.8 ± 0.9 μmol
Trolox/g (1 min) y 13.2 ± 0.3 μmol Trolox/g
(7 min),
resultó menor la actividad antioxidante de guanábana
en todos los casos.
El método DPPH fue utilizado en el mismo
estudio
para
la
pulpa
de
guanábana
congelada,
obteniendo 2.88 ± 0.32 y 4.5 ± 0.9 μmol Trolox/g,
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/120
después de 30 y 60 min, respectivamente (Kuskoski
et
al.
, 2005). En este mismo estudio los resultados de
actividad
antioxidante
también
fueron
expresados
como actividad equivalente a vitamina C; para la pulpa
de guanábana obtuvieron 46.66 ± 1.6 mg AA/100 g
(30 min) (Kuskoski
et al.
, 2005). En este caso, los
valores
de
actividad
antioxidante,
reportados
equivalentes al Trolox y a la vitamina C fueron bajos
comparados con los demás frutos analizados en el
estudio, y en cuanto a un fruto de mayor consumo en
Colombia como la mora: 125.8 ± 3.2 mg AA/100 g
(30 min), 4.3 ± 0.2 μmol Trolox/g (30 min) y 5.9 ±
0.3μmol Trolox/g (60 min). Se evidencia que la pulpa
congelada de guanábana no sobresale por su actividad
antioxidante según este método.
Existen
dos
estudios
realizados
por
Hassimotto
et al.
(2005, 2009), en el cual utilizan el
método de decoloración de β-caroteno para determinar
la
actividad
antioxidante
en
pulpa
congelada
de
guanábana originaria de Brasil. En el primer estudio
(Hassimotto
et al.
, 2005) las muestras se extrajeron en
metanol (EM) y en fase sólida (EFS) por evaporación
de una alícuota metanólica, analizando la actividad
antioxidante para los extractos con concentraciones de
10 y 50 μM de ácido gálico equivalente (AGE) y
expresando
los
resultados
como
porcentaje
de
inhibición, para obtener finalmente resultados de 24.7
± 3.6% (EM) y 36.7 ± 2.9% (EFS) con nivel de
adición de 10 μM AGE, y 50.3 ± 3.8% (EM) y 55.2 ±
4.5% (EFS) con niveles de adición de 50 μM AGE;
todos los valores obtenidos estuvieron por debajo del
50% de las más altas concentraciones de antioxidantes
evaluados en el estudio, y comparables con los de la
guayaba, que presentó valores para EM de 30.4 ±
4.3% (adición 10 μM AGE) y 38.3 ± 3.8% (adición 50
μM AGE) y para EFS 48.4 ± 4.7% (adición 10 μM
AGE) y 63.9 ± 5.7% (adición 50 μM AGE). En el
segundo
estudio
(Hassimotto
et
al.
,
2009),
la
capacidad antioxidante fue expresada como μmol de
Butil Hidroxi Tolueno (BHT) equivalente/g de peso
fresco,
obteniendo
para
la
pulpa
congelada
de
guanábana (EM) 0.5 ± 0.0 μmol BHT equivalente/g,
valor más bajo de todas las frutas analizadas, siendo
menor al 5% del más alto y por debajo de uno de los
frutos más consumidos en Colombia, la guayaba con
3.2 ± 0.3 μmol BHT equivalente/g.
Mediante métodos menos mencionados fue
determinada para guanábana congelada su actividad
antioxidante
total
por
medio
del
ensayo
DMPD
(Kuskoski
et al.
, 2005) y seguimiento de oxidación de
lípidos (Hassimotto
et al.
, 2005). Utilizando DMPD,
los valores obtenidos fueron 79.6 ± 4.0 mg AA/100 g
(30 min) y 4.8 ± 0.3 μmol Trolox/g (10 min),
resultando bajos en comparación con otras frutas
analizadas por el mismo método y de mayor consumo
en Colombia como la guayaba (100.7 ± 2.2 mg
AA/100 g, 30 min y 4.2 ± 0.1 μmol Trolox/g, 10 min)
y el mango (174.3 ± 0.5 mg AA/100 g, 30 min y 24.3
± 0.3 μmol Trolox/g, 10 min) (Kuskoski
et al.
, 2005).
Mediante el seguimiento de oxidación de lípidos, en
pulpa congelada de guanábana extraída en metanol en
fase sólida se obtuvo en Brasil valores de 3.5 ± 0.8%
de inhibición con adición 10
μ
M AGE y 16.3 ± 2.3%
de inhibición con adición de 50
μ
M AGE, bajos
comparados
con
frutos
de
mayor
consumo
en
Colombia, como la guayaba (24 ± 2% de inhibición
con adición 10
μ
M AGE y 57.5 ± 2.9% de inhibición
con adición de 50 μM AGE) (Hassimotto
et al.
, 2005).
La pulpa congelada de guanábana mostró
bajos
resultados
en
los
métodos
utilizados
para
determinar
actividad
antioxidante
total
DPPH,
decoloración de β-caroteno, DMPD y seguimiento a la
oxidación de lípidos. Estos resultados muestran que en
pulpa
congelada
la
presencia
de
compuestos
antioxidantes lipofílicos es baja ya que todos estos
métodos utilizan medios orgánicos para llevar a cabo
sus
mecanismos
de
acción.
La
presencia
de
antioxidantes hidrofílicos en pulpa congelada no es
posible
analizarla
ya
que
en
ningún
estudio
se
realizaron ensayos que incluyeran medios acuosos en
sus metodologías.
En Brasil, utilizando las hojas de guanábana
deshidratadas, trituradas y maceradas con metanol
para determinar su capacidad antioxidante por DPPH
se obtuvo 221.52 ± 16.12 μg/mL IC
50
(Gomes
et al.
,
2010), concentración por lo menos cinco veces mayor
que
las
hojas
que
mostraron
mejor
actividad
(
Poincianella pyramidalis
: 42.95 ± 1.77 μg/mL IC
50
),
lo
cual
indica
menor
poder
antioxidante.
La
investigación realizada en la India utilizando éste
mismo método para diferentes concentraciones (100-
500
μg/mL)
del
extracto
etanólico
de
hojas
de
guanábana pulverizadas proporciona como resultado
70 μg/mL IC
50
, valor intermedio en el estudio de
especies de Annonáceas (Barkar
et al.
, 2007). Al
comparar éstos valores de ambos estudios con el IC
50
de frutas como el banano (13400 ± 2500 μg/mL IC
50
)
y naranja (5400 ± 1300 μg/mL IC
50
) (Lim
et al.
,
2007), se observa que para lograr una reducción del
50% del radical DPPH, las hojas de guanábana en
extracto metanólico o etanólico requieren estar en
menor concentración que estos dos frutos, es decir su
actividad antioxidante es mayor. En el estudio de la
India, utilizando los mismos extractos etanólicos que
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/121
para el método DPPH, se realizó el seguimiento de
oxidación de lípidos para determinar la actividad
antioxidante total en hojas de diferentes especies
Annonáceas con resultados IC
50
de 455 μg/mL para la
guanábana,
480 μg/mL
para
anona
blanca
(
A.
squamosa
) y 315 μg/mL para anona colorada (
A.
reticulata
) (Barkar
et al.
, 2007). Además, utilizó el
seguimiento a los radicales ABTS, óxido nítrico,
hidroxilo y superóxido, obteniendo los valores para
guanábana de IC
50
: 305, 350, 155 y 300 μg/mL,
respectivamente (Barkar
et al.
, 2007). El único método
para el cual mostraron mejor actividad antioxidante
total las hojas de guanábana, en comparación con las
otras plantas analizadas, fue en el seguimiento del
radical hidroxilo, lo que sugiere que los antioxidantes
presentes en sus hojas actúan principalmente mediante
la donación de hidrógeno atrapando este tipo de
radicales de manera preferente.
En un estudio realizado en Cuba, la actividad
antioxidante de vino de guanábana por el ensayo
ABTS fue 2.57 mmoles Trolox/L, valor más bajo de
los vinos de las otras frutas analizadas: guayaba (3.52
mmoles Trolox/L), papaya (4.04 mmoles Trolox/L),
piña (3.23 mmoles Trolox/L) y naranja (5.06 mmoles
Trolox/L), pero similar al de los vinos blancos de uva
a los que se le atribuyen propiedades contra los efectos
negativos del consumo de grasas saturadas y de
reducción de la incidencia de la mortalidad debida a
las enfermedades cardiovasculares (Rodríguez
et al.
,
2007). En este estudio se determinó también el poder
reductor del vino de guanábana (1.34 mmoles Fe
2+
/L),
siendo
éste
el segundo
más
bajo
de
los
vinos
analizados: naranja (2.37 mmoles Fe
2+
/L), guayaba
(4.32 mmoles Fe
2+
/L), piña (2.31 mmoles Fe
2+
/L) y
papaya (1.29 mmoles Fe
2+
/L). A partir de este estudio
se evidencia la menor actividad antioxidante en vinos
de guanábana que en vinos provenientes de frutos de
mayor consumo en Colombia.
Fenoles
Los compuestos fenólicos presentes en alimentos se
determinan
principalmente
por
el
método
Folin-
Ciocalteu, que se basa en principios de espectroscopía
y es expresado como mg AGE por gramo de muestra
(Isabelle
et al.
, 2010; Karadag
et al.
, 2009). Kuskoski
y
colaboradores
(2005)
realizaron
en
Brasil
la
cuantificación de fenoles totales en pulpa congelada de
guanábana, obteniendo 84.3 ± 5.8 mg AGE/100 g,
valor medio-bajo en comparación con todas las pulpas
congeladas de frutas analizadas. En éste mismo país, la
pulpa congelada de guanábana presentó contenidos de
fenoles totales de 120 ± 8 mg AGE/100 g, contenido
bajo en comparación con las demás frutas analizadas,
especialmente con la acerola (861 ± 62 mg AGE/100
g) (Hassimotto
et al.
, 2005). En ambos estudios el
contenido de fenoles fue similar al de guayaba, con
valores de 83.0 ± 1.3 mg AGE/100 g (Kuskoski
et al.
,
2005) y 119 ± 4 mg AGE/100 g (Hassimotto
et al.
,
2005).
En Colombia, el contenido de fenoles totales
en pulpa fresca de guanábana en un estudio realizado
en período de poscosecha presentó su valor más alto al
cuarto día: 55 mg AGE/100 g (Márquez, 2009). Para
guanábana originaria de Fiji, el contenido encontrado
de fenoles totales fue 42 mg AGE/100 g, valor por
debajo del 50% del fruto más alto (
Citrus sinensis
)
(Lako
et
al.
,
2007).
En
Singapur,
la
pulpa
de
guanábana, originaria de Malasia, obtuvo resultado de
fenoles totales (2.36 mg AGE/100 g) similar a la
mayoría
de
las
pulpas
analizadas,
pero
bajo
en
comparación con el fruto más alto (
Manilkara zapota
)
(Isabelle
et
al.
,
2010).
Los
diferentes
valores
encontrados en diversos países del mundo en pulpa
fresca de guanábana no superan los 55 mg AGE/100 g;
comparando con datos hallados en estudios apartes
para otras frutas consideradas ricas en antioxidantes y
de mayor consumo en Colombia como la mora (330 ±
4 mg AGE/100 g) y naranja (126 ± 6 mg AGE/100 g)
(Proteggente
et
al.
,
2002),
se
observa
que
la
guanábana se encuentra por debajo de éstos frutales.
Por otro lado, en Brasil, Marques y Farah
(2009) identificaron y cuantificaron por cromatografía
líquida de alta resolución (HPLC) ácido gálico (AG),
un
tipo
de
fenol,
en
plantas
medicinales
tradicionalmente usadas en Sur América obteniendo
para la hoja de guanábana 48.6 ± 1.5 mg AG/100 g de
muestra seca, concentración más alta entre todas las
plantas analizadas en éste estudio. Además, existen
otros
compuestos
fenólicos:
ácidos
clorogénicos
(CGA, siglas en inglés) conocidos por sus propiedades
benéficas
para
los
humanos,
como
antioxidantes,
antivirales y hepatoprotectores (Marques y Farah,
2009).
Los
principales
CGA
encontrados
en
la
naturaleza
son
los
ácidos
cafealquínico
(CQA),
dicafeoilquinico (diCQA) y feruloilquinico (FQA);
cada grupo tiene por lo menos tres isómeros (Marques
y Farah, 2009). En extractos metanólicos de hojas
secas de guanábana proveniente de Brasil, Marques y
Farah (2009) determinaron por HPLC el contenido de
estos ácidos, obteniendo resultados cuantificables sólo
para tres isómeros de CQA: 3-CQA (3.6 ± 0.1 mg/100
g), 4-CQA (0.5 ± 0.1 mg/100 g) y 5-CQA (3.3 ± 0.2
mg/100 g). De los demás ácidos sólo obtuvieron trazas
(concentraciones por debajo de 5.0 μg/mL) o no
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/122
fueron detectados (por debajo de 1.70 μg/mL). En
comparación con el ginkgo (
Ginkgo biloba
), al cual
sólo fue posible cuantificar 5-CQA: 4.0 ± 0.2 mg/100
g (Marques y Farah, 2009), el extracto metanólico de
hojas
de
guanábana
secas
contienen
mayores
concentraciones de ácidos clorogénicos
Los flavonoles son uno de los grupos de
compuestos bioactivos más ampliamente estudiados
(Kris-Etherton
et al.
, 2004). Se han determinado en
guanábana utilizando cromatografía HPLC por Lako
et
al.
(2007) obteniendo resultados muy bajos o nulos
para myricetin (< 1 μg/mL), fisetin (trazas), morin
(trazas), quercetin (no detectado), kaempferol (no
detectado)
e
isorhamnetin
(<
1
μg/mL);
estas
cuantificaciones fueron realizadas entre un intervalo
de concentración de 5-20 μg/mL Comparando los
valores obtenidos en pulpa de guanábana con los de
otro fruto como la papaya (myricetin 3 μg/ml, fisetin <
1 μg/ml trazas, morin 2 μg/ml, quercetin 2 μg/ml,
kaempferol 2 μg/ml e isorhamnetin < 1 μg/mL) (Lako
et
al.
,
2007),
se
observa
que
los
flavonoles
cuantificados en éste estudio están en mayor cantidad
en la papaya, exceptuando el isorhamnetin que en
ambos frutos se encuentra por debajo de 1 μg/mL. No
se
encontraron
investigaciones
que
determinaran
contenido de flavonoles totales en ninguna parte de la
guanábana.
Los antocianinos son un tipo de fenoles que
muestran una gran capacidad para captar radicales
libres causantes del estrés oxidativo, atribuyéndoseles
a su vez un efecto beneficioso en la prevención de
enfermedades
tales
como:
cardiovasculares,
circulatorias,
cancerígenas
y
neurológicas.
La
concentración de antocianinos se expresa en cianidina-
3-glucósido (Lako
et al.
, 2007; Kuskoski
et al.
, 2005).
En pulpa de guanábana originaria de Fiji, utilizando
métodos
espectroscópicos
el
contenido
de
antocianinos totales no fue detectado (Lako
et al.
,
2007). Igualmente sucedió para pulpa de guanábana
congelada
proveniente de Brasil utilizando el mismo
método, para éste caso la pulpa congelada de mora
obtuvo el mayor contenido de antocianinos con 41.8 ±
1.8 mg/100 g (Kuskoski
et al.
, 2005).
Ácido ascórbico (vitamina C)
Existen
diversos
métodos
para
determinar
la
concentración
de
ácido ascórbico.
En
un
estudio
realizado en Colombia fue utilizada la técnica de
HPLC,
utilizando
como
solución
eluyente
ácido
sulfúrico 4 mM, para obtener un valor máximo de 29
mg AA/100 g al cabo del noveno día de poscosecha
(Márquez,
2009).
Mediante
este
mismo
método
cromatográfico, en Singapur se determinó el contenido
de vitamina C en la parte comestible de diferentes
frutas típicas, como la guanábana que tiene una
cantidad de 15.98 mg AA/100 g (Isabelle
et al.
, 2010).
En Nigeria la cuantificación de vitamina C en pulpa de
guanábana fue realizada por Ogunlesi
et al
. (2010),
mediante
dos
métodos:
titulación
con
N-
bromosuccinamida y voltametría cíclica, resultando
concentraciones de 13.63 y 10.51 mg AA/100 g,
respectivamente. En un estudio realizado en Sri Lanka
(Gunawardena
y
Silva,
2006),
en
la
pulpa
de
guanábana, el contenido de vitamina C fue de 63 ± 2.5
mg AA/100 g que comparado con los frutos más
consumidos en ese país, es un valor elevado. Sin
embargo, no se encontró correlación significativa entre
TAC y el contenido de vitamina C para los frutos
analizados. Comparando éstos valores con los de pulpa
en naranja (67 ± 9 mg AA/ 100 g) (Lim
et al.
, 2007),
se evidencia una concentración similar de AA.
Para
pulpa
congelada
de
guanábana
el
contenido
de
AA
total,
extraído
con
ácido
metafosfórico (0.3%) y analizado en fase reversa por
HPLC no fue detectado por el equipo, mientras para la
pulpa congelada de guayaba en el mismo estudio la
concentración fue 49.9 ± 0.3 mg/100 g (Hassimotto
et
al.
, 2005). Una investigación realizada en Nigeria con
vinos provenientes de la guanábana mostró que al
aumentar el tiempo de fermentación de los jugos de
ésta fruta se reducen las concentraciones de vitamina
C (jugo: 46.2 mg AA/100 mL y vino: 13.89 mg
AA/100 mL), lo cual demuestra, según el estudio, que
la actividad microbiana y el proceso de elaboración
afecta la composición química del jugo (Okigbo y
Obire, 2009).
Antioxidantes lipofílicos
Entre los antioxidantes lipofílicos se encuentran los
tocoferoles,
tocotrienoles
y
carotenos,
que fueron
cuantificados en diferentes frutos por un grupo de
investigadores en Singapur (Isabelle
et al.
, 2010)
utilizando cromatografía HPLC, identificaron para la
pulpa fresca de guanábana luteína (0.06 μg/g), β-
cryptoxantina (0.05 μg/g), licopeno (0.08 μg/g), α-
caroteno
(0.02
μg/g),
β-caroteno
(0.05
μg/g),
α-
tocoferol (0.12 μg/g), γ-tocotrienol (0.05 μg/g) y α-
tocotrienol (0.11 μg/g). No se detectaron contenidos de
zeaxantina, δ-tocoferol, γ-tocoferol o δ-tocotrienol; el
contenido total de carotenoides fue 0.27 μg/g, valor
muy bajo comparado con otras frutas analizadas, pero
es un resultado esperado ya que el contenido de
carotenoides comúnmente es asociado con el color
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/123
amarillo-naranja de las muestras a analizar, y la pulpa
de guanábana es muy blanca (Isabelle
et al.
, 2010).
En el caso del análisis de carotenoides en
frutos de guanábana provenientes de Fiji, Lako
et al.
(2007)
realizaron
cuantificaciones
(mg/100
g)
de
licopeno, α- y β-caroteno en pulpa fresca, en la cual no
detectaron ninguno de estos compuestos, indicando
que su concentración estuvo por debajo de 5 μg/mL o
definitivamente no están presentes estos compuestos.
Igual que el caso de Singapur, es de esperar bajos
contenidos de carotenoides en pulpa de guanábana por
su baja o nula coloración.
DISCUSIÓN
Las investigaciones realizadas en pulpa de guanábana
que
determinan
actividad
antioxidante
total
y
compuestos con propiedades antioxidantes presentan
concentraciones por debajo de las encontradas en
frutos de mayor consumo en Colombia como la
naranja y la mora, excepto en el caso del estudio
poscosecha,
que
al
noveno
día
presentó
mayor
actividad antioxidante que el banano y la naranja. De
igual forma sucedió para pulpa congelada, hojas, jugos
y vinos de guanábana, donde no se supera o iguala
valores de capacidad antioxidante de frutos como
mango, mora, naranja, guayaba y banano. En algunos
casos no se pudo realizar comparación con frutas de
mayor
consumo
en
Colombia
debido
a
que
las
unidades o forma de expresar los resultados eran
diferentes.
En los estudios encontrados se evidenciaron
algunos limitantes que complican el análisis de los
resultados, como es la existencia de diversos referentes
(Trolox, AA, BHT, entre otros) y métodos analíticos
(solventes, pH, tiempos, etc.) para realizar un mismo
ensayo; el hecho que un sólo análisis no refleje la
capacidad antioxidante total de un sistema demuestra
que un estudio no es prueba suficiente para concluir si
la guanábana es fuente alta o baja de actividad
antioxidante. Por otro lado, falta de investigación
sobre biodisponibilidad de nutrientes proveniente de la
guanábana antes y después de algún procesamiento
(pulpas, jugos, postres, yogurts, etc.) y se requiere
investigación en otras partes de la planta (cáscara,
semillas
y
raíces)
que
puedan
contener
mayor
actividad y concentración de antioxidantes útiles en
diferentes
industrias.
Se
conoce
que
diferentes
variedades
del
mismo
alimento
pueden
tener
concentraciones nutricionales variadas. Po ejemplo,
una evaluación de 1150 accesiones del fríjol común
(
Phaseulus
vulgaris
)
encontró
concentraciones
de
hierro entre 34 y 89 mg/kg (Beebe
et al.
, 2000). Por
eso, es importante obtener información sobre actividad
antioxidante (caracterización y estudio poscosecha) en
diferentes “variedades” o clones propagados que se
encuentran en el mundo.
Los
estudios
encontrados
sobre
actividad
antioxidante
y
compuestos
que
la
otorgan
en
la
guanábana, no presentan información suficiente para
concluir el tipo de antioxidantes presentes, ya que en
algunos casos sólo se determinaban los compuestos
que actuaban mediante un mecanismo específico, un
sistema lipofílico, o sólo un compuesto específico. Por
éste motivo es necesario realizar una investigación que
involucre
sistemas
hidrofílicos
y
lipofílicos,
mecanismos que actúen por transferencia de electrones
y
donación
de
hidrógeno,
además
de
analizar
diferentes
compuestos
para
realizar
correlaciones
confiables entre la presencia de éstos y la actividad
antioxidante total en la guanábana.
En cuanto a la investigación de guanábana en
Colombia,
se
requiere
información
de
actividad
antioxidante total y respecto a todos los compuestos
que
la
presentan,
ya
que
sólo
se
encontró
un
documento
que
provee
información
sobre
ésta
actividad, pero de manera muy general y con carencias
de
información,
como
relación
entre
TAC
y
concentración de polifenoles, vitamina C, flavonoides
y otros en pulpa, semilla, hojas y cáscara de la
guanábana, para conocer su potencial en diferentes
industrias:
alimentaria,
nutricional,
farmacéutica
y
cosmética.
REFERENCIAS
Abbo ES, Olurin T, Odeyemi G. 2006. Studies on the
storage stability of soursop (
Annona muricata
L.) juice.
Afr J Biotechnol
5: 108 - 112.
Alonso AJ, Villarreal ML, Salazar LA, Gomez M,
Dominguez
F,
Garcia
A. 2010. Mexican
medicinal plants used for cancer treatment:
pharmacological,
phytochemical
and
ethnobotanical
studies.
J
Ethnopharmacol
133: 945 - 972.
Álvarez P. 2007. Decisiones en reacciones adversas a
medicamentos,
intoxicaciones
y
respuestas
inesperadas
de
productos
naturales
como
problemas de salud pública.
Rev Peru Med
Exp Salud Publica
24: 405 - 426.
Badrie
N,
Schauss
A.
2010.
Soursop
(
Annona
muricata
L.):
composition,
nutritional
value, medicinal uses, and toxicology.
pp
621 - 643. En Bioactive foods in promoting
health: fruits and vegetables. Watson RR,
Preedy VR [Eds]. Elsevier Inc. Oxford, UK.
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/124
Baskar R, Rajeswari V, Sathish-Kumar T. 2007.
In
vitro
antioxidant studies in leaves of
Annona
species
. Indian J Exp Biol
45: 480 - 485.
Beebe S, Gonzáles AV, Rengifo J. 2000. Research on
trace minerals in the common bean.
Food
Nutr Bull
21: 387 - 391.
Benzie If, Chung WY, Strain JJ. 1999. “Antioxidant”
(reducing) efficiency of ascorbate in plasma is
not
affected
by
concentration.
J
Nutr
Biochem
10: 146 - 150.
Bicas JL, Molina G, Dionisio AP, Cavalcante FF,
Wagner R, Marostica MR, Pastore, G. 2011.
Volatile constituents of exotic fruits from
Brazil.
Food
Res
Int
doi:10.1016/j
foodres.2011.01.012.
Contreras J, Calderon L, Guerra E, García B. 2010.
Antioxidant capacity, phenolic content and
vitamin C in pulp, peel and seed from 24
exotic fruits from Colombia.
Food Res Int
doi:10.1016/j.foodres.2010.11.00.
Corporación
Biotec,
Centro
Internacional
de
Agricultura Tropical (CIAT). 2002.
Memorias
taller
guanábana
para
Colombia
y
el
mundo:
optimización
de
la
cadena
productiva.
Merlín I.D, Palmira, Colombia.
Corporación
Biotec,
Profutales
Ltda.,
Centro
Internacional de Agricultura Tropical (CIAT),
Colciencias. 2006.
Modelo
comercial
de
producción
clonal
de
materiales
seleccionados
de
guanábano
(
Annona
muricata
L.).
Corporación Biotec. Colombia
CD.
Corporación Biotec. 2008.
Proyecto selección de
guanábanos
(
Annona
muricata
L.)
en
diversas
condiciones
ambientales,
caracterización
de
sitios
de
selección
y
fomento para el establecimiento de cultivos
en
sitios
específicos.
Corporación
Biotec.
Colombia CD.
Floegel A, Kimb D, Chung S, Koo SI, Chun OK.
2011. Comparison of ABTS/DPPH assays to
measure
antioxidant
capacity
in
popular
antioxidant-rich US foods.
J Food Compos
Anal
doi:10.1016/j.jfca.2011.01.008.
FAO
(Food
and
Agriculture
Organization).
2003.
Manual para la preparación y venta de frutas y
hortalizas: del campo al mercado.
s00.pdf
[Consultado junio 23, 2011].
Gomes J, de Sousa T, Nobre V, de Vasconcelos D,
Rodrigues M, Carneiro S, Cavalcanti EL, de
Albuquerque
UP.
2010.
Antiproliferative
activity,
antioxidant
capacity
and
tannin
content in plants of semi-arid northeastern
Brazil.
Molecules
15: 8534 - 8542.
Gomez H, Germosen-Robineau L, Nossin E. 2009.
Estudio etnofarmacológico de las plantas
medicinales
usadas
en
el
Caribe
colombiano
. En Reyes G. Diálogo de saberes:
plantas medicinales, salud y cosmovisiones.
Universidad
Nacional
de
Colombia,
Sede
Amazonia. ARFO Editores e Impresos Ltda.
Bogotá, Colombia.
Gunawardena, HP, Silva, KD.
2006. Determination of
total
antioxidant
capacity
and
vitamin
C
content of selected local under-utilized and
commonly consumed fresh fruits.
4
th
Food &
Nutrition Symposium
4: 4.
Hassimotto NMA, Genovese MI, Lajolo FM. 2005.
Antioxidant
activity
of
dietary
fruits,
vegetables, and commercial frozen fruit pulps
.
J Agric Food Chem
53: 2928 - 2935.
Hassimotto NMA, Genovese MI, Lajolo FM.
2009.
Antioxidant
capacity
of
Brazilian
fruit,
vegetables
and
commercially-frozen
fruit
pulps
. J Food Compos Anal
22: 394 - 396.
Herrera
E,
Jiménez
R,
Aruoma
O,
Hercberg
S,
Sánchez
I,
Fraga
C.
2009.
Aspects
of
antioxidant foods and supplements in health
and disease.
Nutr Rev
67: 140 - 144.
ICBF (Instituto Colombiano de Bienestar Familiar).
1988.
Recomendaciones de consumo diario
de calorías y nutrientes para la población
colombiana.
libreria/pdf/taba-recomenda.pdf
[Consultado marzo 05, 2011].
ICBF (Instituto Colombiano de Bienestar Familiar).
2005.
Tabla de Composición de Alimentos.
ntoscolombianos/consulta_alimento.asp
[Consultado febrero 10, 2011].
ICBF (Instituto Colombiano de Bienestar Familiar).
2006.
Encuesta nacional de la situación
nutricional
en
Colombia,
2005
.
ICBF,
Bogotá. Colombia.
ICBF (Instituto Colombiano de Bienestar Familiar).
2011.
Resumen ejecutivo Encuesta Nacional
de la Situación Nutricional en Colombia-
ENSIN, 2010.
libreria/pdf/RESUMENEJECUTIVOcorregido
JUNIO30de2011.pdf
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/125
[Consultado julio 10, 2011].
INC (Instituto Nacional de Cancerología). 2010.
Plan
nacional
para
el
control
del
cáncer
en
Colombia
2010-2019
.
INC,
Bogotá.
Colombia.
Isabelle M, Lee BL, Lim MT, Koh W, Huang D, Ong
CN. 2010. Antioxidant activity and profiles of
common fruits in Singapore.
Food Chem
(123): 77 – 84.
Karadag A, Ozcelik B, Saner S. 2009. Review of
methods to determine antioxidant capacities.
Food Anal Methods
2: 41 - 60.
Kris-Etherton PM, Lefevre M, Beecher GR, Gross
MD, Keen CL, Etherton TD. 2004. Bioactive
compounds in nutrition and health-research
methodologies
for
establishing
biological
function:
the
antioxidant
and
anti-
inflammatory
effects
of
flavonoids
on
atherosclerosis.
Annu Rev Nutr
24: 511 -
538.
Kuskoski EM, Asuero AG, Troncoso AM, Mancini-
Filho J, Fett R.
2005. Aplicación de diversos
métodos químicos para determinar actividad
antioxidante en pulpa de frutos.
Ciênc Tecnol
Aliment
25(4): 726 - 732.
L’Abbé MR, Dumais L, Chao E, Junkins B. 2008.
Health claims on foods in Canada.
J. Nutr
138: 1221S - 1227S.
Lako
J,
Trenerry
VC,
Wahlqvist
M,
Wattanapenpaiboon
N,
Sotheeswaran
S,
Premier R. 2007. Phytochemical flavonols,
carotenoids and the antioxidant properties of a
wide selection of Fijian fruit, vegetables and
other readily available foods.
Food Chem
101: 1727 - 1741.
Lim YY, Lim TT, Tee JJ. 2007. Antioxidant properties
of several tropical fruits: a comparative study.
Food Chem
103: 1003 - 1008.
Marques V, Farah A. 2009. Chlorogenic acids and
related compounds in medicinal plants and
infusions.
Food Chem
113: 1370 - 1376.
Márquez CJ. 2009. Caracterización fisiológica, físico-
química, reológica, nutracéutica, estructural y
sensorial de la guanábana (
Annona muricata
L. cv. Elita). Tesis de maestría, Universidad
Nacional
de
Colombia
sede
Medellín,
Colombia.
MADR
(Ministerio
de
Agricultura
y
Desarrollo
Rural).
2009.
Principales
departamentos
produc-tores de guanábana ordenados por
área.
/AnalisisEstadisticas/tabid/73/Default.aspx
[Consultado enero 21, 2011].
Morales A. 1991.
Aspectos técnicos sobre cuarenta y
cinco cultivos agrícolas de Costa Rica
. San
José, Costa Rica.
Ogunlesi
M,
Okiei
W,
Azeez
L,
Obakachi
V,
Osunsanmi M, Nkenchor G. 2010. Vitamin C
contents
of
tropical
vegetables
and
foods
determined by voltammetric and titrimetric
methods and their relevance to the medicinal
uses of the plants.
Int J Electrochem
Sci
5:
105 - 115.
Ojeda G, Coronado J, Nava R, Sulbarán B, Araujo D,
Cabrera
L.
2007.
Caracterización
fisicoquímica de la pulpa de la guanábana
(
Annona Muricata
) cultivada en el Occidente
de Venezuela.
Bol Centro Invest Biol
41(2):
151 - 160.
Okigbo RN, Obire O. 2009. Mycoflora and production
of
wine
from
fruits
of
soursop
(
Annona
Muricata
L.).
Int J Wine Res
1: 1 - 9.
OMS (Organización Mundial de la Salud). 2004.
Estrategia
mundial
sobre
régimen
alimentario,
actividad
física
y
salud:
Fomento del consumo mundial de frutas y
verduras.
s/
[Consultado febrero 20, 2012]
OMS (Organización Mundial de la Salud (OMS).
2008a.
Globocan: country fast stats-World.
actsheet.asp?uno=900
[Consultado junio 14, 2011].
OMS (Organización Mundial de la Salud). 2008b.
Globocan:
country
fast
stats-Colombia.
actsheet.asp?uno=170
[Consultado junio 14, 2011].
OMS (Organización Mundial de la Salud). 2011.
Centro
de
prensa:
enfermedades
cardiovasculares.
17/es/
[Consultado junio 13, 2011].
Osorio E, Arango GJ, Jimenez N, Alzate F, Ruiz G,
Gutiérez D, et al. 2007. Antiprotozoal and
cytotoxic
activities
in
vitro
of Colombian
Annonaceae.
J Ethnopharmacol
111: 630 -
635.
Pinto AC, Cordeiro MC, De Andrade SR, Ferreira FR,
Filgueiras HA, Alves RE, Kinpara DI.
2005.
Annona
species
. University of Ìnternational
Correa Gordillo et al
Actividad antioxidante en guanabana (Annona muricata L.)
Boletin Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas/126
Southampton, Centre for Underutilised Crops.
Southampton, UK.
Proteggente AR, Sekher A, Paganga G, Van de Put F,
Dacombe
C,
Rice-Evans
CA
.
2002.
The
antioxidant
activity
of
regularly
consumed
fruit and vegetables reflects their phenolic and
vitamin C composition.
Free Radic Res
36:
217 - 233.
Quiles JL, Ramirez MC, Yaqoob P. 2006.
Olive oil
and health.
CABI Head Office International.
Oxfordshire, UK.
Rodríguez J, Valdés O, Queris O. 2007. Actividad
antioxidante de vinos elaborados con frutas
tropicales.
Ciencia
y
Tecnología
de
Alimentos
17: 66 - 68.
Sánchez JD, Tróchez KJ, Castro D. 2006.
El cultivo
del guanábano: tecnología desarrollada en
la finca.
1ª ed. Daza GJ, Ríos D, Sánchez M,
editores. Feriva SA, Cali, Colombia.
Solís-Fuentes JA, Amador C, Hernandez MR, Duran
MC. 2010. Caracterización fisicoquímica y
comportamiento
térmico
del
aceite
de
"almendra" de guanábana (
Annona muricata,
L).
Grasas y Aceites
61: 58 - 66.
USDA (United States Department of Agriculture).
2010. USDA National Nutrient Database for
Standard Reference.
h/
[Consultado febrero 11, 2011].
Vieira de Sousa O, Vieira GDV, Pinho JJ, Yamamoto
CH, Alves MS. 2010. Antinociceptive and
anti-inflammatory
activities
of
the
ethanol
extract
of
Annona
muricata
L.
leaves
in
animal models.
Int J Mol Sci
.11: 2067 - 2078.
Yamada K, Sato-Mito N, Nagata J, Umegaki K. 2008.
Health claim evidence requirements in Japan.
J. Nutr
138: 1192S - 1198S.
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