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			<journal-id journal-id-type="publisher-id">rhcm</journal-id>
			<journal-title-group>
				<journal-title>Revista Habanera de Ciencias Médicas</journal-title>
				<abbrev-journal-title abbrev-type="publisher">Rev haban cienc méd</abbrev-journal-title>
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			<issn pub-type="epub">1729-519X</issn>
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				<publisher-name>Universidad de Ciencias Médicas de la Habana</publisher-name>
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			<article-id pub-id-type="publisher-id">00005</article-id>
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				<subj-group subj-group-type="heading">
					<subject>CIENCIAS BÁSICAS BIOMÉDICAS</subject>
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			<title-group>
				<article-title>Actividad fagocítica y toxicidad del extracto acuoso de <italic>Schinus molle</italic> L. sobre <italic>Mus musculus</italic> BALB/c</article-title>
				<trans-title-group xml:lang="en">
					<trans-title>Phagocytic activity and toxicity of the aqueous extract of <italic>Schinus molle</italic> L. on <italic>Mus musculus</italic> BALB/c</trans-title>
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				<contrib contrib-type="author">
					<contrib-id contrib-id-type="orcid">0000-0002-9526-7116</contrib-id>
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						<surname>Carrasco-Solano</surname>
						<given-names>Fransk</given-names>
					</name>
					<xref ref-type="aff" rid="aff1"><sup>1</sup></xref>
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				<contrib contrib-type="author">
					<contrib-id contrib-id-type="orcid">0000-0002-7352-058X</contrib-id>
					<name>
						<surname>Cruz-López</surname>
						<given-names>Cinthya Santa</given-names>
					</name>
					<xref ref-type="aff" rid="aff2"><sup>2</sup></xref>
					<xref ref-type="corresp" rid="c1">*</xref>
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				<contrib contrib-type="author">
					<contrib-id contrib-id-type="orcid">0000-0002-3373-4671</contrib-id>
					<name>
						<surname>Ruiz-Barrueto</surname>
						<given-names>Miguel Ángel</given-names>
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					<xref ref-type="aff" rid="aff3"><sup>3</sup></xref>
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			<aff id="aff1">
				<label>1</label>
				<institution content-type="original">Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo. Lambayeque, Perú.</institution>
				<institution content-type="normalized">Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo</institution>
				<addr-line>
					<named-content content-type="city">Lambayeque</named-content>
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				<country country="PE">Perú</country>
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			<aff id="aff2">
				<label>2</label>
				<institution content-type="original">Universidad Nacional de Jaén. Cajamarca, Perú.</institution>
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				<institution content-type="orgname">Universidad Nacional de Jaén</institution>
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					<named-content content-type="city">Cajamarca</named-content>
				</addr-line>
				<country country="PE">Peru</country>
				<email>cisantacruzl@gmail.com</email>
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			<aff id="aff3">
				<label>3</label>
				<institution content-type="original">Universidad César Vallejo. Lima, Perú.</institution>
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				<institution content-type="orgname">Universidad César Vallejo</institution>
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					<named-content content-type="city">Lima</named-content>
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				<country country="PE">Peru</country>
			</aff>
			<author-notes>
				<corresp id="c1">
					<label>*</label><bold>Autor para la correspondencia:</bold><email>cisantacruzl@gmail.com</email>
				</corresp>
				<fn fn-type="conflict" id="fn1">
					<p>Los autores declaran que no existe conflicto de intereses y el trabajo es original.</p>
				</fn>
				<fn fn-type="con" id="fn2">
					<p>Fransk Carrasco-Solano. Concepción y diseño del estudio, búsqueda bibliográfica, recolección de los datos, elaboración y revisión del manuscrito.</p>
				</fn>
				<fn fn-type="con" id="fn3">
					<p>Cinthya Santa Cruz-López. Búsqueda bibliográfica, análisis estadístico de los datos, elaboración y revisión del borrador y versión final del manuscrito.</p>
				</fn>
				<fn fn-type="con" id="fn4">
					<p>Miguel Ángel Ruiz-Barrueto. Búsqueda bibliográfica, elaboración del borrador y versión final del manuscrito.</p>
				</fn>
				<fn fn-type="equal" id="fn5">
					<p>Todos los autores participamos en la discusión de los resultados y hemos leído, revisado y aprobado el texto final.</p>
				</fn>
				<fn fn-type="presented-by" id="fn6">
					<p>La investigación fue financiada con recursos propios.</p>
				</fn>
			</author-notes>
			<!--<pub-date date-type="pub" publication-format="electronic">
				<day>01</day>
				<month>04</month>
				<year>2024</year>
			</pub-date>
			<pub-date date-type="collection" publication-format="electronic">
				<season>Mar-Apr</season>
				<year>2023</year>
			</pub-date>-->
			<pub-date pub-type="epub-ppub">
				<season>Mar-Apr</season>
				<year>2023</year>
			</pub-date>
			<volume>22</volume>
			<issue>2</issue>
			<elocation-id>e4815</elocation-id>
			<history>
				<date date-type="received">
					<day>31</day>
					<month>03</month>
					<year>2022</year>
				</date>
				<date date-type="accepted">
					<day>13</day>
					<month>12</month>
					<year>2022</year>
				</date>
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				<license license-type="open-access" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/" xml:lang="es">
					<license-p>Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia Creative Commons</license-p>
				</license>
			</permissions>
			<abstract>
				<title>RESUMEN</title>
				<sec>
					<title>Introducción:</title>
					<p> La medicina tradicional podría ser una alternativa segura para potenciar la inmunidad de pacientes inmunocomprometidos propensos a infecciones recurrentes. </p>
				</sec>
				<sec>
					<title>Objetivo:</title>
					<p> Evaluar la actividad fagocítica y toxicidad <italic>in vivo</italic> del extracto acuoso de <italic>Schinus molle</italic> L. en <italic>Mus musculus</italic> BALB/c.</p>
				</sec>
				<sec>
					<title>Material y Métodos:</title>
					<p>Estudio experimental que utilizó una dosis única de extracto acuoso de hojas de <italic>Schinus molle</italic> de 2000 mg/kg. La fagocitosis <italic>in vivo</italic> se determinó en 10 ejemplares de <italic>M. musculus</italic> BALB/c que cumplieron criterios de inclusión y exclusión, distribuidos aleatoria y equitativamente en los grupos control y experimental. Los especímenes del grupo experimental fueron inoculados vía intraperitoneal con 0,5 ml de suspensión de <italic>Staphylococcus aureus</italic> y 0,5 ml del extracto acuoso. Los del grupo control con 0,5 ml del mismo inóculo bacteriano y 0,5 ml de solución salina estéril. La toxicidad del extracto se evaluó por el método de las clases de toxicidad aguda en 12 ejemplares de ratones con las mismas características y cumpliendo los mismos criterios aplicados en la evaluación de la fagocitosis <italic>in vivo</italic>.</p>
				</sec>
				<sec>
					<title>Resultados:</title>
					<p>El 57,1 % de los macrófagos expuestos al extracto acuoso de <italic>S. molle</italic> presentaron importante actividad fagocítica, encontrándose una media de 21 bacterias fagocitadas por macrófago. No se evidenciaron significativamente signos ni síntomas de toxicidad en los especímenes durante los 14 días de experimentación.</p>
				</sec>
				<sec>
					<title>Conclusiones:</title>
					<p>El extracto acuoso de <italic>S. molle</italic> incrementó significativamente la fagocitosis <italic>in vivo</italic> de los macrófagos peritoneales de <italic>M. musculus</italic> BALB/c, sin evidencia de clínica de toxicidad y en ausencia de mortalidad. </p>
				</sec>
			</abstract>
			<trans-abstract xml:lang="en">
				<title>ABSTRACT</title>
				<sec>
					<title>Introduction:</title>
					<p>Traditional medicine could be a safe alternative to enhance the immunity of immunocompromised patients prone to recurrent infections.</p>
				</sec>
				<sec>
					<title>Objective:</title>
					<p> To evaluate the phagocytic activity and in vivo toxicity of the aqueous extract of <italic>Schinus molle</italic> L. on Mus musculus BALB/c.</p>
				</sec>
				<sec>
					<title>Material and Methods:</title>
					<p>Experimental study that used a single dose of aqueous extract of <italic>Schinus molle</italic> leaves of 2000 mg/kg. <italic>In vivo</italic> phagocytosis was determined in 10 specimens of <italic>M. musculus</italic> BALB/c that met the inclusion and exclusion criteria, which were randomly and equally distributed in the control and experimental groups. The specimens of the experimental group were inoculated intraperitoneally with 0.5 ml of <italic>Staphylococcus aureus</italic> suspension and 0.5 ml of the aqueous extract. Those of the control group were inoculated with 0.5 ml of the same bacterial inoculum and 0.5 ml of sterile saline solution. The toxicity of the extract was evaluated by the method of the acute toxicity classes in 12 specimens of mice with the same characteristics that fulfilled the same criteria applied in the evaluation of phagocytosis <italic>in vivo</italic>.</p>
				</sec>
				<sec>
					<title>Results:</title>
					<p>The results demonstrate that 57.1% of the macrophages exposed to the aqueous extract of <italic>S. molle</italic> showed significant phagocytic activity, finding an average of 21 phagocytosed bacteria per macrophage. No significant signs or symptoms of toxicity were evidenced in the specimens during the 14 days of experimentation.</p>
				</sec>
				<sec>
					<title>Conclusions:</title>
					<p>The aqueous extract of <italic>S. molle</italic> significantly increased <italic>in vivo</italic> phagocytosis of peritoneal macrophages from <italic>M. musculus</italic> BALB/c, without clinical evidence of toxicity and in the absence of mortality.</p>
				</sec>
			</trans-abstract>
			<kwd-group xml:lang="es">
				<title>Palabras Claves:</title>
				<kwd>Schinus molle</kwd>
				<kwd>inmunomodulación</kwd>
				<kwd>toxicidad</kwd>
				<kwd>plantas medicinales</kwd>
				<kwd>macrófagos</kwd>
				<kwd>fagocitosis</kwd>
			</kwd-group>
			<kwd-group xml:lang="en">
				<title>Keywords:</title>
				<kwd>Schinus molle</kwd>
				<kwd>immunomodulation</kwd>
				<kwd>toxicity</kwd>
				<kwd>medicinal plants</kwd>
				<kwd>macrophages</kwd>
				<kwd>phagocytosis</kwd>
			</kwd-group>
			<counts>
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				<table-count count="3"/>
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				<ref-count count="33"/>
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			</counts>
		</article-meta>
	</front>
	<body>
		<sec sec-type="intro">
			<title>INTRODUCCIÓN</title>
			<p>El sistema inmunitario cumple un papel primordial en la protección del organismo frente a los agentes infecciosos.<xref ref-type="bibr" rid="B1"><sup>1</sup></xref> Los pacientes con inmunodeficiencias presentan limitada capacidad para emitir una respuesta inmunitaria adecuada. Esto les impide combatir a los microorganismos patógenos de manera eficiente, por lo que adquieren infecciones microbianas con mayor frecuencia y severidad,<xref ref-type="bibr" rid="B2"><sup>2</sup></xref> de modo que, el uso de sustancias que activen y potencien la respuesta inmunitaria del huésped resultaría una alternativa terapéutica de gran utilidad.</p>
			<p>En Perú, el conocimiento de las propiedades curativas de las plantas ha sido utilizado desde épocas remotas, principalmente por las poblaciones indígenas.<xref ref-type="bibr" rid="B3"><sup>3</sup></xref> Se han identificado plantas con actividad antibacteriana, antiviral, antimicótica, antitumoral<xref ref-type="bibr" rid="B4"><sup>4</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B5"><sup>5</sup></xref><sup>)</sup> e incluso actividad inmunomoduladora; es decir, capaces de modificar la magnitud y calidad de la respuesta inmunitaria, ya sea potenciándola o suprimiéndola.<xref ref-type="bibr" rid="B6"><sup>6</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B7"><sup>7</sup></xref>
			</p>
			<p>Entre las plantas con alto potencial farmacológico se encuentra <italic>Schinus molle</italic> L. (molle). Este árbol de la familia <bold>Anacardiaceae</bold>, presenta rápido crecimiento llegando a medir hasta 15 m de altura. Es originario de la zona altoandina de Sudamérica, y se encuentra distribuido en gran parte del territorio peruano.<xref ref-type="bibr" rid="B8"><sup>8</sup></xref> Estudios sobre la composición fitoquímica de sus estructuras han evidenciado la presencia de compuestos bioactivos como terpenos, taninos, flavonoides, antocianinas, ácidos grasos y esteroles, ácido linoleico, felandreno, limoneno, entre otros.<xref ref-type="bibr" rid="B9"><sup>9</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B10"><sup>10</sup></xref>
			</p>
			<p>Al <italic>S. molle</italic> se le atribuyen propiedades antibacterianas, antivirales, antifúngicas y anticancerígenas,<xref ref-type="bibr" rid="B11"><sup>11</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B12"><sup>12</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B13"><sup>13</sup></xref> por lo que es empleado tradicionalmente por la población para el tratamiento de infecciones gastrointestinales, genitourinarias, reumatismo, sífilis y gonorrea. Diversas investigaciones han demostrado su capacidad inhibitoria sobre <italic>Escherichia coli, Shigella flexneri, Bacillus cereus, Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus, Staphylococcus aureus</italic> resistente a la oxacilina y <italic>Candida albicans</italic>.<xref ref-type="bibr" rid="B14"><sup>14</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B15"><sup>15</sup></xref>
			</p>
			<p>Sin embargo, pese a todas las propiedades que posee, es importante evaluar su toxicidad y asegurar su uso sin riesgo para la salud humana.<xref ref-type="bibr" rid="B16"><sup>16</sup></xref><sup>)</sup> Al respecto, se han publicado ensayos de toxicidad que utilizan una dosis única de la sustancia potencialmente tóxica para minimizar la cantidad de especímenes animales empleados en el experimento.<xref ref-type="bibr" rid="B17"><sup>17</sup></xref> El método de las clases de toxicidad aguda (CTA) determina los posibles efectos adversos de una sustancia administrada a dosis única, así también estima la relación cuantitativa entre la intensidad de la respuesta biológica medible y la concentración de la sustancia a administrar (se establece el rango de la concentración letal 50).<xref ref-type="bibr" rid="B17"><sup>17</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B18"><sup>18</sup></xref>
			</p>
			<p>Por lo expuesto anteriormente y considerando la escasa información que evidencie la actividad del <italic>molle</italic> sobre mecanismos de la respuesta inmunitaria innata, la presente investigación tiene como <bold>objetivo</bold> evaluar la actividad fagocítica y toxicidad <italic>in vivo</italic> del extracto acuoso de <italic>Schinus molle</italic> L. en <italic>Mus musculus</italic> BALB/c, de modo que se recopile evidencia científica de sus propiedades reportadas, garantice su uso terapéutico y contribuya a la revalorización de las especies vegetales medicinales presentes en Perú.</p>
		</sec>
		<sec sec-type="materials|methods">
			<title>MATERIAL Y METODOS</title>
			<p>El presente estudio fue de diseño experimental. La población estuvo conformada por 22 especímenes de <italic>Mus musculus</italic> BALB/c con 20g ± 24g de peso promedio. La investigación fue ejecutada en el laboratorio de Microbiología de la Universidad Nacional “Pedro Ruiz Gallo”, en la provincia y departamento de Lambayeque-Perú, durante los meses de enero a mayo de 2022. </p>
			<p>Los roedores fueron adquiridos del bioterio del Instituto Nacional de Salud (Lima, Perú). Los ejemplares fueron de ambos sexos con edades de entre 30 a 45 días y sin enfermedad previa. Fueron mantenidos en jaulas individuales, a una temperatura ambiental de 22 ± 3°C, con ciclo luz/oscuridad de 12 horas. Se les proporcionó acceso <italic>ad-libitum</italic> al agua y alimentos, y se registraron los signos vitales diariamente. </p>
			<p>Las hojas de <italic>S. molle</italic> fueron colectadas en los alrededores de la Universidad Nacional “Pedro Ruiz Gallo” (6°42′26″S 79°54′29″O) a 18 m.s.n.m. Una parte del material vegetal fue llevado al Herbario “Pedro Ruiz Gallo” para su identificación, caracterización y certificación.</p>
			<p>El extracto acuoso de <italic>S. molle</italic> fue preparado a partir de hojas en etapa de floración y con las mejores condiciones fitosanitarias. El material vegetal fue lavado con abundante agua destilada estéril y posterior a ello se desinfectó con alcohol de 96<sup>o</sup>. Se emplearon 10 g de hojas frescas, que fueron colocadas en un vaso de precipitación que contenía 100 ml de agua destilada estéril (1:10m/v). El sistema se llevó a calefacción en plancha a 80<sup>o</sup>C durante 15 min, seguido de un período de enfriamiento de 10 min a temperatura ambiente (25<sup>o</sup>C). El preparado fue triturado en agua y filtrado tres veces utilizando papel filtro Whatman N° 1; se obtuvo el extracto a la concentración de 100 mg/ml. El extracto se preservó en refrigeración a 4<sup>o</sup>C en un recipiente de vidrio ámbar estéril, tapado herméticamente, hasta el momento de la experimentación.</p>
			<p>La cepa de <italic>Staphylococcus aureus</italic> fue proporcionada por el laboratorio de Microbiología de la Universidad Nacional “Pedro Ruiz Gallo”. Fue reactivada en 5 mL de caldo tripticasa de soya durante 24 horas a 37°C en aerobiosis. Posteriormente, el cultivo bacteriano fue centrifugado a 2 500 rpm durante 10 min seguido de dos lavados inmediatos con solución salina fisiológica estéril (SSFE), estandarizándose el inóculo a una concentración de 4 x 10<sup>6</sup> células/ml.<xref ref-type="bibr" rid="B19"><sup>19</sup></xref>
			</p>
			<p>El aislamiento y estandarización de los macrófagos peritoneales se realizó a partir de 10 especímenes de ratones de ambos sexos y aparentemente sanos. Los roedores fueron distribuidos de manera aleatoria y equitativamente entre los grupos experimental y control, considerando un período de aclimatación de 5 días y siguiendo las recomendaciones de Saravia, <italic>et al</italic>.<xref ref-type="bibr" rid="B20"><sup>20</sup></xref>
			</p>
			<p>A los ejemplares del grupo experimental se les administró vía intraperitoneal 0,5 mL del inóculo de <italic>S. aureus</italic> y 0,5 mL del extracto acuoso de <italic>S. molle</italic> por triplicado. Mientras que a los especímenes del grupo control se les suministró 0,5 mL del inóculo de <italic>S. aureus</italic> y 0,5 mL de SSFE. Posteriormente a 6 horas de la inoculación los especímenes de ambos grupos fueron sacrificados y con ayuda de una torunda estéril se obtuvieron muestras de líquido peritoneal para su análisis a partir de frotis en lámina portaobjeto y tinción con Giemsa.<xref ref-type="bibr" rid="B19"><sup>19</sup></xref> El porcentaje de fagocitosis se determinó mediante recuento del número de macrófagos fagocíticos en 100 campos microscópicos y el total de bacterias fagocitadas. Las lecturas se realizaron en microscopio binocular Boeco BM-120 a 1000 aumentos.</p>
			<p>Por otra parte, se evaluó la toxicidad del extracto acuoso de <italic>
 <italic>S. molle</italic> 
</italic> mediante el método de las clases de toxicidad aguda, recomendado por la Organización para la Cooperación y el Desarrollo Económicos (OCDE).<xref ref-type="bibr" rid="B18"><sup>18</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B21"><sup>21</sup></xref> Para ello, se distribuyeron de manera aleatoria y equitativamente 12 ratones de ambos sexos en los grupos control y experimental. Al grupo experimental se le administró el extracto a un volumen de 0,1ml/10g, con una dosis máxima de 2 000 mg/kg por vía oral mediante cánula gástrica, iniciando con los especímenes machos en ayuno de 4 horas. Al grupo control solo se le suministró SSFE. Los roedores fueron sometidos a observación clínica diaria durante 14 días. </p>
			<p>Para la evaluación de toxicidad se valoró el peso, tiempo de muerte de los animales y las manifestaciones de signos y síntomas de toxicidad aguda en ojos, piel, mucosas, patrones de comportamiento, actividad sensorial, actividad neuromuscular, problemas respiratorios, cardiovasculares y gastrointestinales. Los especímenes fueron observados hasta que desaparecieron las manifestaciones clínicas de toxicidad, controlándoles el peso en los días 0, 7 y 14 del experimento. Luego, fueron sacrificados por dislocación cervical para la evaluación anatomopatológica de sus órganos.<xref ref-type="bibr" rid="B18"><sup>18</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B21"><sup>21</sup></xref>
			</p>
			<p>Los datos obtenidos se recopilaron en una ficha de recolección para su posterior análisis estadístico, el cual fue realizado en los programas <italic>Microsoft office excel</italic>® 2016 y <italic>Minitab®</italic> 18 para <italic>Windows® versión</italic> 8. Se determinó la media y desviación estándar de los valores obtenidos y se aplicó la prueba de normalidad de Kolmogórov-Smirnov, seguido de una prueba T student, para establecer las diferencias significativas (p&lt;0,05) entre la fagocitosis <italic>in vivo</italic> del grupo experimental y grupo control. </p>
			<p>El estudio siguió los lineamientos del <italic>International Guiding Principles for Biomedical Research Involving Anima</italic>l<xref ref-type="bibr" rid="B22"><sup>22</sup></xref> y <italic>Ethical guidelines for investigations of experimental pain in conscious animals</italic>.<xref ref-type="bibr" rid="B23"><sup>23</sup></xref> Además, se respetaron los principios éticos de reemplazo, reducción y refinamiento, así como las normas éticas para la experimentación animal de la Guía de Manejo y Cuidado de los Animales, propuestas por el Ministerio de Salud de Perú.<xref ref-type="bibr" rid="B24"><sup>24</sup></xref><sup>)</sup> La investigación se ejecutó posterior a la aprobación del Comité de Ética de la Universidad Nacional de Jaén (Oficio N<sup>O</sup> 03-2022 / VPI-UNJ/ CE).</p>
		</sec>
		<sec sec-type="results">
			<title>RESULTADOS</title>
			<p>Se evaluó la actividad del extracto acuoso de <italic>Schinus molle</italic> sobre el índice fagocítico de macrófagos peritoneales de <italic>Mus musculus</italic> BALB/c infectados con <italic>Staphylococcus aureus</italic>. En el grupo experimental, el índice fagocítico fue 57,1 %. Mientras que en el grupo control fue 28,3 %, siendo esta diferencia significativa (<xref ref-type="table" rid="t1">Tabla 1</xref>).</p>
			<p>
				<table-wrap id="t1">
					<label>Tabla 1. </label>
					<caption>
						<title>Actividad del extracto acuoso de <italic>Schinus molle L.</italic> sobre el índice fagocítico de macrófagos peritoneales de <italic>Mus musculus</italic> BALB/c</title>
					</caption>
					<table frame="hsides" rules="groups">
						<colgroup>
							<col/>
							<col span="2"/>
							<col/>
						</colgroup>
						<thead>
							<tr>
								<th align="justify" rowspan="2"><bold>Grupo</bold></th>
								<th align="center" colspan="2"> Porcentaje de macrófagos</th>
								<th align="center" rowspan="2"><bold>p-valor*</bold></th>
							</tr>
							<tr>
								<th align="center"><bold>Con actividad fagocítica (%)</bold></th>
								<th align="center"><bold>Sin actividad fagocítica (%)</bold></th>
							</tr>
						</thead>
						<tbody>
							<tr>
								<td align="justify">Control</td>
								<td align="center">28,3 ± 1,16</td>
								<td align="center">71,7 ± 1,16</td>
								<td align="center" rowspan="2">&lt;0,0001</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Experimental</td>
								<td align="center">57,1 ± 1,09</td>
								<td align="center">42,9 ± 1,09</td>
							</tr>
						</tbody>
					</table>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN1">
							<p> * Prueba de t student</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>En el grupo experimental, el promedio de bacterias fagocitadas por los macrófagos peritoneales de <italic>Mus musculus</italic> BALB/c fue de 21 ± 0,5521 bacterias; superó el control evaluado (p&lt;0,0001) (<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>).</p>
			<p>
				<table-wrap id="t2">
					<label>Tabla 2. </label>
					<caption>
						<title>Actividad <italic>in vivo</italic> del extracto acuoso de <italic>Schinus molle L</italic>. sobre las bacterias fagocitadas por macrófagos peritoneales de <italic>Mus musculus</italic> BALB/c.</title>
					</caption>
					<table frame="hsides" rules="groups">
						<colgroup>
							<col/>
							<col span="2"/>
							<col/>
						</colgroup>
						<thead>
							<tr>
								<th align="justify"> Grupo</th>
								<th align="center" colspan="2"><bold>Bacterias fagocitadas por macrófagos</bold></th>
								<th align="justify" rowspan="2"> p-valor*</th>
							</tr>
							<tr>
								<th align="center"><bold>Con actividad fagocítica</bold></th>
								<th align="center"><bold>Sin actividad fagocítica</bold></th>
							</tr>
						</thead>
						<tbody>
							<tr>
								<td align="justify">Control</td>
								<td align="center">10 ± 0,79</td>
								<td align="center">0</td>
								<td align="justify" rowspan="2">&lt;0,0001</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Experimental</td>
								<td align="center">21 ± 0,55</td>
								<td align="center">0</td>
							</tr>
						</tbody>
					</table>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN2">
							<p>* Prueba de t student</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>El extracto acuoso de hojas de <italic>S. molle</italic> a la dosis de 2000 mg/kg no influyó en la ganancia de peso de los ratones tratados, observándose un incremento sostenido de este durante el período de evaluación (<xref ref-type="fig" rid="f1">Figura</xref>).</p>
			<p>
					<fig id="f1">
						<label>Figura.</label>
						<caption>
							<title>Promedio del peso corporal de Mus musculus BALB/c tratados con extracto
acuoso de Schinus molle L. a 2000 mg/kg</title>
						</caption>
						<graphic xlink:href="1729-519X-rhcm-22-02-e4815-gf1.png"/>
					</fig>
				</p>
			<p>Los especímenes de <italic>Mus musculus</italic> BALB/c presentaron signos de piloerección después de 30 min de aplicado el tratamiento. Además, se observó un cambio en el comportamiento de los animales (se percibían inquietos). Los órganos blancos se mantuvieron sin alteraciones o daños visibles, y todos los ratones se mantuvieron vivos hasta finalizado el experimento (<xref ref-type="table" rid="t3">Tabla 3</xref>).</p>
			<p>
				<table-wrap id="t3">
					<label>Tabla 3</label>
					<caption>
						<title>Signos y síntomas de toxicidad aguda en <italic>Mus musculus</italic> BALB/c inoculados con 2000 mg/kg del extracto acuoso de <italic>Schinus molle</italic> L</title>
					</caption>
					<table frame="hsides" rules="groups">
						<colgroup>
							<col/>
							<col span="2"/>
						</colgroup>
						<thead>
							<tr>
								<th align="justify" rowspan="2"> Órganos/Sistema</th>
								<th align="center" colspan="2"><bold>Signos y síntomas</bold></th>
							</tr>
							<tr>
								<th align="center"><bold>Machos</bold></th>
								<th align="center"><bold>Hembras</bold></th>
							</tr>
						</thead>
						<tbody>
							<tr>
								<td align="justify">Autónomo/Cutánea</td>
								<td align="center">Piloerección en la primera media hora</td>
								<td align="center">Piloerección en la primera media hora</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Comportamiento</td>
								<td align="center">Inquietos en las primeras horas</td>
								<td align="center">Inquietos en las primeras horas</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Sensorial</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Neuromuscular</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Cardiovascular</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Respiratorio</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Ocular</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Gastrointestinal</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
								<td align="center">Ausentes</td>
							</tr>
						</tbody>
					</table>
				</table-wrap>
			</p>
		</sec>
		<sec sec-type="discussion">
			<title>DISCUSIÓN</title>
			<p>Al evaluar la actividad <italic>in vivo</italic> del extracto acuoso de <italic>S. molle</italic> sobre la fagocitosis de macrófagos peritoneales, se observó un incremento significativo del índice fagocítico en el grupo experimental (57,1 %), respecto al grupo control (28,3 %) (p&lt;0,0001) (<xref ref-type="table" rid="t1">Tabla 1</xref>). Además, de mayor cantidad de bacterias fagocitadas y fagosomas formados en los macrófagos de <italic>Mus musculus</italic> del grupo experimental (p&lt;0,0001) (<xref ref-type="table" rid="t2">Tabla 2</xref>). Estos resultados coinciden con los obtenidos en estudios sobre el efecto de las plantas <italic>Medicago sativa</italic> (alfalfa)<xref ref-type="bibr" rid="B25"><sup>25</sup></xref> y <italic>Coriandrum sativum</italic> L. (culantro),<xref ref-type="bibr" rid="B26"><sup>26</sup></xref> que demostraron inducir un incremento significativo de la actividad fagocítica de leucocitos y macrófagos, respectivamente.</p>
			<p>Asimismo, diversas investigaciones evidenciaron que principios activos como monoterpenos (felandreno, alfa y beta pineno, limoneno), terpenos y flavonoides poseen efecto estimulador de la respuesta inmunitaria.<xref ref-type="bibr" rid="B10"><sup>10</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B27"><sup>27</sup></xref> Dichas sustancias forman parte de la composición bioquímica de las hojas del <italic>molle</italic> y serían las encargadas de estimular la actividad metabólica de los macrófagos. De modo que, favorecen la síntesis de fagosomas en mayor número y tamaño. Dichos compuestos activan e inducen la liberación del interferón gamma, factor de necrosis tumoral, factor estimulante de colonias de monocitos y granulocitos, incrementando la actividad fagocítica de los macrófagos.<xref ref-type="bibr" rid="B28"><sup>28</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B29"><sup>29</sup></xref>
			</p>
			<p>Un hallazgo demostró que el aceite esencial de <italic>S. molle</italic> activa la cascada de óxido nítrico, interleucina-10 y factor de necrosis tumoral alfa,<xref ref-type="bibr" rid="B11"><sup>11</sup></xref> potenciando la fagocitosis. Cabe señalar que, los macrófagos realizan actividad fagocítica y los péptidos obtenidos de la digestión de los patógenos microbianos favorecen la activación de los linfocitos T y B. De modo que los macrófagos no solo tienen un papel importante en la inmunidad innata, sino también en la adaptativa al inducir una mejora de la respuesta inmunológica.<xref ref-type="bibr" rid="B30"><sup>30</sup></xref>
			</p>
			<p>A través del control frecuente del peso de los ratones, se estableció la cantidad del extracto necesaria para ocasionar signos y síntomas tóxicos en los animales, es decir, el peso indica la cantidad de tejido expuesto a la acción de una sustancia tóxica.<xref ref-type="bibr" rid="B21"><sup>21</sup></xref> Además, se demostró que el extracto acuoso no influyó en el incremento de peso de los especímenes evaluados, registrándose dentro de los valores normales (Figura).</p>
			<p>La supervivencia de los animales expuestos al extracto acuoso de <italic>S. molle</italic> a 2000kg/mg, demostró que la dosis letal 50 fue superior a la dosis empleada. También se analizaron los cambios visualizados en los animales tratados, durante los 14 días del experimento, encontrándose signos de piloerección al transcurrir 30 min después de aplicado el tratamiento (<xref ref-type="table" rid="t3">Tabla 3</xref>). Sumado a ello, se observó cambio en el comportamiento de los ratones tratados; esto estaría relacionado con el proceso de adaptación del animal a la sustancia inoculada. La mayoría de parámetros evaluados no sufrió cambios significativos durante el experimento al ser comparada con el grupo control.</p>
			<p>Otros estudios sobre <italic>S. molle</italic> concluyeron que no presentó toxicidad sobre <italic>Musca domestica, Chrysoperla externa, Trichogramma pintoi y Copidosoma koehleri,</italic> al no evidenciar signos de mortalidad en larvas y pupas expuestas al extracto de <italic>molle.</italic><xref ref-type="bibr" rid="B31"><sup>31</sup></xref><sup>,</sup><xref ref-type="bibr" rid="B32"><sup>32</sup></xref> Dichas investigaciones coinciden con los resultados obtenidos, donde el extracto acuoso del <italic>molle</italic> a la concentración empleada tampoco fue tóxico para los animales tratados.</p>
			<p>En este sentido, la necropsia también resultó de gran utilidad para evaluar la toxicidad del extracto, lográndose visualizar los posibles cambios ocurridos en los órganos de los ratones del grupo experimental. Entre ellos, un ligero cambio de color (palidez) en los riñones de los ratones expuestos al tratamiento (<xref ref-type="table" rid="t3">Tabla 3</xref>). Al respecto, Murkunde,<xref ref-type="bibr" rid="B33"><sup>33</sup></xref> manifestó que la posición anatómica al momento de la muerte puede influir en el color que presentan los órganos al realizar una necropsia, lo que haría sospechar que no se trató de un efecto a causa del extracto acuoso de <italic>S. molle.</italic></p>
			<p>Cabe señalar que el estudio se <bold>limitó</bold> a evaluar la actividad del extracto en macrófagos peritoneales. No se incluyeron las evaluaciones de citocinas proinflamatorias como la IL-6 y TNF y otras células de la respuesta inmune (linfocitos), útiles para medir la intensidad de la respuesta biológica establecida. Sin embargo, los resultados obtenidos permitieron demostrar la actividad del <italic>molle</italic> sobre la primera línea de defensa del huésped.</p>
		</sec>
		<sec sec-type="conclusions">
			<title>CONCLUSIONES</title>
			<p>El extracto acuoso de <italic>S. molle</italic> incrementó la actividad fagocítica <italic>in vivo de</italic> los macrófagos peritoneales de <italic>Mus musculus BALB/c</italic>. Sumado a ello, se observó un incremento en el tamaño de los macrófagos, número de pseudópodos y de fagosomas (vacuolas formadas alrededor de las bacterias fagocitadas por los macrófagos). No ocasionó la muerte de los animales de experimentación y no manifestó síntomas indicativos de toxicidad ni alteraciones en los órganos estudiados.</p>
		</sec>
	</body>
	<back>
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			<title>REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS </title>
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					<article-title>The Role of the Immune System Beyond the Fight Against Infection</article-title>
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