Introducción

La ciruela mexicana (Spondias purpurea L) es un frutal originario de Mesoamérica, donde se le conoce también como ‘jocote’ (del náhuatl Xocotl o fruto ácido; Duarte y Paull, 2015). En áreas con estaciones secas (noviembreabril) y húmedas (mayo-octubre) de esa región hay poblaciones silvestres o espontáneas, las cuales pudieran ser los antecesores de las ciruelas cultivadas (Avitia et al., 2003). Aunque la ciruela mexicana se multiplica con fines comerciales, la información acerca de los genotipos actuales es escasa, debido principalmente a que su cultivo se basa en la agricultura informal en huertos de traspatio, cercas vivas y granjas pequeñas, y los tipos silvestre están en zonas de acceso difícil (Alia et al., 2012).

Avitia et al. (2003) indicaron que las ciruelas mexicanas se clasifican de acuerdo a la época de fructificación en: 1) ciruelos que fructifican de abril a mayo o ciruelos de estación seca y 2) ciruelos que fructifican de septiembre a diciembre o de estación húmeda. Avitia et al. (2003) y Ruenes et al. (2010) sugirieron un grupo intermedio que fructifica a inicios de la época de lluvias y que tiene características morfológicas intermedias entre los ciruelos de estación seca y húmeda, pero no hay estudios específicos al respecto.

Avitia et al. (2003) indicaron que aparentemente la diversidad mayor en las poblaciones silvestres y cultivadas está en el área costera del Golfo de México, donde se han descrito 20 variantes. Algunos trabajos de caracterización de materiales sobresalientes o de carácter etnobotánico en Veracruz (Nava y Uscanga, 1979), Tabasco (Vargas et al., 2011) y Yucatán (Ruenes et al., 2010) apoyan esta hipótesis. Sin embargo, Cruz y Gutiérrez (2012) al estudiar la distribución de S. purpurea en México determinaron que los estados donde más se ha recolectado esta especie son Yucatán, Jalisco, Oaxaca y Veracruz. Además, otros trabajos de caracterización de sistemas de producción, caracterización de calidad, morfológica, química, estudios postcosecha y nutrición con ecotipos de S. purpurea provenientes de estados de la región del Pacifico como: Nayarit, Colima, Jalisco, Morelos, Guerrero, Oaxaca y Chiapas (Salazar y Becerra, 1994; Pérez et al., 2004;Ramírez et al., 2008;Alia et al., 2012; Solórzano et al., 2015), sugieren una gran diversidad de ciruela mexicana en esa región. Recientemente, Arce-Romero et al. (2017) indican que en México S. purpurea se ditribuye predominantemente en la vertiente del océano Pacífico, centro de Veracruz y Península de Yucatán. Cabe indicar que en ambas regiones los estudios mencionados se han realizado con ciruelas de estación seca.

En las ciruelas de estación húmeda se han realizado escasos estudios básicos de su calidad y fisiología postcosecha (Bautista et al., 2003;Bautista et al., 2006; Maldonado et al., 2014), y aún no se han realizado estudios de su fenología, manejo agronómico, aporte nutricional y de metabolitos funcionales.

La fruta de ciruela mexicana posee una amplia diversidad de colores del epicarpio (verde, amarillo, naranja, rojo o púrpura; Alia et al., 2012) y se consume madura o inmadura, aunque con mayor preferencia cuando ha alcanzado sus máximas características de calidad organoléptica, ya que aporta altas cantidades de carbohidratos, vitamina C y minerales como K y Ca (Koziol y Macía, 1998), además de cantidades importantes de antioxidantes como fenoles y carotenoides (Solórzano et al., 2015).

Terry y Thompson (2011) mencionan que las frutas son generalmente una buena fuente de antioxidantes o compuestos funcionales tales como vitaminas, compuestos fenólicos y carotenoides, y que estos antioxidantes intervienen de forma importante en la reducción de enfermedades degenerativas, principalmente del tipo cardiovascular, diabetes y algunos tipos de cáncer. La mayoría de los estudios para determinar las moléculas con efectos benéficos en la salud humana se han realizado en frutas o vegetales de gran demanda. Sin embargo, frutos de interés regional en algunas áreas del mundo no han sido estudiadas y es necesario hacerlo para poder conocer sus beneficios al consumirlos, para extraer los compuestos bioactivos de interés, o para utilizarlos como ingredientes en la elaboración o diseño de alimentos funcionales (Vallejo et al., 2014). Diamanti et al. (2011) mostraron que en la actualidad los consumidores de frutas exigen una alta diversidad de productos y consideran aquellos con un mayor aporte nutricional y alto contenido de compuestos funcionales.

El objetivo del presente estudio fue evaluar algunos variables de calidad, contenido de metabolitos funcionales y la actividad antioxidante en 102 recolectas de ciruela mexicana de épocas seca y húmeda en Morelos, Guerrero y Chiapas, México, que ayuden a seleccionar materiales que cuenten con características organolépticas deseables, cantidades altas de metabolitos funcionales y actividad antioxidante alta, y promuevan el consumo del fruto en fresco o tengan potencial para industrializarlo.

Materiales y Métodos

^{Durante 2013} y 2014 se obtuvieron frutos de 102 árboles de traspatio o huertas comerciales en los estados de Morelos, Guerrero y Chiapas, México (Figura 1,Tabla I). Cuarenta y nueve recolectas fueron de época seca, colectadas entre marzo y mayo (X1- X49), y 53 (X50-X102) fueron de época húmeda, cosechadas entre septiembre y octubre (Figura 2, Tabla I). En cada árbol seleccionado se recolectaron entre 30 y 40 frutos que fueron lavados con agua clorada (2% v/v) y secados al ambiente antes de iniciar las evaluaciones correspondientes. Los frutos evaluados fueron aquellos en madurez de consumo que no tenían daños mecánicos o por patógenos.

La masa se determinó en una balanza digital (Ohaus®, EEUU) con sensibilidad de 0,01g; los diámetros polar y longitudinal, con un vernier digital (Mitutoyo®, Japón) con sensibilidad de 0,01mm. El color de la epidermis se midió con un espectrofotómetro (X-rite® mod. 3690, EEUU) en las partes opuestas de la sección ecuatorial de cada fruto y se realizaron tres mediciones para obtener los datos de Luminosidad (L*), cromaticidad (C*=(a2 +b2 ) 1/2) y matiz (h= tan-1 b/a) (McGuire, 1992). Los sólidos solubles totales (SST) se determinaron a partir del jugo obtenido de la pulpa de cada fruto, con un refractómetro (Atago® PAL-1, Japón) y se reportaron en unidades ºBrix. La masa, diámetro polar, ecuatorial, color y sólidos solubles totales se evaluaron en 20 frutos de cada recolecta. La acidez titulable se determinó como lo indican Alia et al. (2012) y Solórzano et al. (2015), y los resultados se reportaron en porcentaje; esta última variable se evaluó en seis frutos de cada recolecta.

La tasa respiratoria y producción de etileno se evaluó en un sistema cerrado utilizando 10 frutos, para lo cual se colocaron dos frutos en frascos de vidrio herméticos de 120ml durante 2h. Posteriormente, se tomó 1ml de gas del espacio de cabeza a través de la septa de los frascos, para inyectarlo a un cromatógrafo de gases (Agilent Technologies® 7890A, EEUU), con columna tipo abierta con empaque de capa porosa de sílica conectada simultáneamente a un detector de ionización de flama (FID) a 170ºC y otro de conductividad térmica (TCD) a 170ºC. Como gas acarreador se utilizó N2 (2ml·min-1). El inyector y el horno del cromatógrafo mantuvieron temperaturas de 150 y 80ºC respectivamente durante las mediciones. Para la cuantificación se usaron estándares (Quark INFRA®) de CO2 (460mg·l-1) y etileno (100mg·l-1).

El contenido de fenoles totales se midió conforme a la metodología de Folin-Ciocalteau (Singleton et al., 1999). Los resultados se expresaron como mg equivalentes de ácido gálico (EAG)/100g peso fresco. La unidad experimental para esta variable fueron dos frutos de ciruela mexicana con cinco repeticiones.

Para la extracción y cuantificación de carotenoides totales se utilizó la metodología descrita por Rodríguez y Kimura (2004) con algunas modificaciones indicadas por Solórzano et al. (2015).

La obtención de los extractos para determinar de la actividad antioxidante por los métodos de DPPH (1,1 difenil2-picrilhidrazil), ABTS (ácido 1.2’- azinobis (3-etilbenzotiazolín-6-sulfónico) y FRAP (capacidad para reducir el hierro férrico) se realizó utilizando un 1g de epicarpio y/o pulpa por separado, el cual fue homogenizado con 12ml de agua destilada. Una dilución de la muestra (1:10) se utilizó para realizar las determinaciones de actividad antioxidante correspondiente.

Para la determinación de la actividad antioxidante por DPPH, se utilizó la metodología propuesta por Brand et al. (1995) con mínimas modificaciones. Se colocaron 3ml de una solución metanólica de DPPH 6,1×10-5M y se hicieron reaccionar con 100µl de la muestra. La mezcla se incubó en oscuridad durante 30min a temperatura ambiente y posteriormente se midió la absorbancia a 517nm. Los resultados se expresaron en mg equivalentes de ácido ascórbico (EAA)/100g.

La determinación de actividad antioxidante por el método de ABTS se realizó de acuerdo a la metodología descrita por Re et al. (1999). Se prepararon soluciones de ABTS 7mM y persulfato de potasio (K2S2O8) 2,45mM, las cuales fueron mezcladas (1:1 v/v). La mezcla se dejó reposar durante 16h. Alícuotas de la solución se diluyeron con etanol al 20% hasta obtener una absorbancia de 0,7 ±0,02 a 734nm. La mezcla de reacción para la determinación de la actividad antioxidante contenía 3ml de la solución ABTS y 50µl de muestra, se dejó reaccionar durante 15min y se midió la absorbancia a 734nm. Los resultados se expresaron en mg equivalentes de ácido ascórbico (EAA)/100g peso fresco.

Para la actividad antioxidante por el método de FRAP se empleó la metodología de Benzie y Strain (1996). Se preparó el reactivo FRAP (TPTZ (Tripiridil-s-triazina), FeCl3 y amortiguador de acetato), se mezcló 1,8ml de la solución FRAP con 140µl de agua destilada y 60µl de muestra y se dejó reaccionar durante 30min a 37ºC. Transcurrido el tiempo de reacción se leyó la absorbancia a 593 nm. Los resultados se expresaron en mg equivalentes de ácido ascórbico (EAA)/100g peso fresco. La unidad experimental para todas las determinaciones de actividad antioxidante fue la mezcla homogénea de dos frutos con seis repeticiones.

Con los datos obtenidos se realizó estadística descriptiva de todas las variables utilizando el procedimiento Univariate de SAS® V. 8.0 (Castillo, 2011). Posteriormente los datos se estudiaron con un análisis clúster utilizando distancias euclidianas y el método de varianzas mínimas de Ward (1963) de acuerdo con NúñezColín y Escobedo-López (2014), donde los grupos resultantes se sometieron a un análisis discriminante canónico, un análisis de varianza multivariado (MANOVA) de las raíces canónicas y prueba de distancia de Mahalanobis (Johnson, 1998;Núñez-Colín y Escobedo-López, 2014). Todas estas pruebas fueron realizadas con el programa SAS V. 8.0 (SAS, 1999).

Resultados y Discusión

La masa de la población estudiada f luctuó entre 6,0 y 33,5g (Tabla II). La colecta ‘Vena’ de la estación seca mostró la masa menor y ‘Tepa3’ de la estación húmeda presentó la masa mayor. Alia et al. (2012) y Solórzano et al. (2015) determinaron masas entre 4,0 y 43,2g y entre 11,1 y 35,0g en frutos de 67 y 11 colectas, respectivamente, de ciruela mexicana provenientes de los estados de Morelos, Guerrero y Chiapas de estación seca. Avitia et al. (2003) mostraron que los frutos de ciruela mexicana con masa entre 4 y 7g son de árboles silvestres, los frutos de masa entre 8 y 14g son de árboles de estación seca y los de masa entre 20 y 25g son de árboles de estación húmeda. Cruz et al. (2012) al estudiar 87 colectas de frutos de ciruela mexicana en los meses de mayo y junio, determinaron que las ciruelas silvestres tenían una masa promedio de 6,9g mientras para las cultivadas era de 10,5g.

El diámetro polar y ecuatorial, varió entre 21,2 y 44,6mm y entre 18,5 y 36,1mm, respectivamente (Tabla II). Los frutos de dimensiones menores fueron de estación seca y los de tamaño mayor fueron de estación húmeda. Cruz et al. (2012) reportaron diámetros polar y ecuatorial de 20,5 y 25,0mm y de 25,8 y 30,5mm, en frutos silvestres y cultivados, respectivamente, de ciruela mexicana de estación seca. Los resultados sugieren que los materiales evaluados se consideran cultivados.

La cromaticidad y matiz fueron los componentes del color con mayor coeficiente de variación (CV >40%; Tabla II). Se observaron frutos de color cercanos al verde (h=153,6) hasta rojo púrpura (h=5,8), con una cromaticidad cercana al gris (C*=4,7) o vívido (C*=66,2) Cerca de 19,6% de las colectas evaluadas fueron de color rojo púrpura (h= 5,81-16,1), 30.4% de color rojo (h= 17,2-49,8), 41,1% de color naranja (h= 50- 70), 80% amarillo (h= 70-90) y 0,9% de color verde (h= 153.4). Los resultados obtenidos mostraron una amplitud mayor del intervalo en los valores de los parámetros de color, en comparación con trabajos anteriores, donde se obtuvo una amplitud del matiz desde h=15,4 hasta h=105,4 y una cromaticidad de entre C*=13,0 y 60,3 (AliaTejacal et al., 2012). Cruz et al. (2012) en 87 colectas de ciruela mexicana reportaron que el color tuvo un gradiente de frecuencia rojo >naranja >amarillo >púrpura, con ausencia de este último color en poblaciones silvestres. En el presente trabajo el gradiente de frecuencia fue naranja >rojo >púrpura >amarillo >verde, sugiriendo que los árboles con frutos de color naranja y rojo son los más aceptados por quienes lo cultivan.

Con respecto al contenido de sólidos solubles totales (SST) se observó una amplitud entre 8,2 y 22,8ºBrix (Tabla II). La colecta ‘Vena’ de la estación seca mostró los valores menores. Mientras que ‘Maz1’ de la estación húmeda mostró los valores mayores. Ambas colectas se obtuvieron de Mazatepec, Morelos (Tabla II). Alia et al. (2012) y Solórzano et al. (2015) reportaron valores máximos de SST en colectas de la estación seca entre 17,3 y 18,2ºBrix, en tanto que Maldonado-Astudillo et al. (2014) indicaron valores máximos entre 17 y 18ºBrix en una colecta de la estación húmeda. En el presente trabajo las colectas de estación húmeda mostraron hasta 19,2ºBrix.

La acidez titulable menor, tanto en epidermis (ATE) como en pulpa (ATP) se observó en la colecta ‘Joctet’ de estación seca, mientras que las mayores ATE y ATP se encontraron en la colecta ‘Mia1’ de la estación seca y ‘Morcua’ de estación húmeda (Tabla II), los valores observados entre estas colectas fueron similares, de 0,11 a 0,74% y de 0,10 a 0,81%, respectivamente. Alia et al. (2012) obtuvieron valores entre 0,2 y 2,0% en colectas de estación seca, en tanto que MaldonadoAstudillo et al. (2014) reportaron entre 0,3 y 0,5% en ciruelas de estación húmeda. Los coeficientes de variación en acidez titulable de epidermis y pulpa fueron >42%, lo que sugiere que estas variables pueden ser útiles para la selección de variedades.

La tasa respiratoria y la producción de etileno, fueron las variables con los mayores coeficientes de variación, de 107 y 81% (Tabla II). Se determinó una diferencia entre 34 y 65 veces, entre los frutos de las colectas que produjeron menor y mayor cantidad de gases, lo que sugiere una amplia variación en estas variables. La tasa respiratoria y la producción de etileno en ciruela mexicana podrían clasificarse como muy alta y alta, respectivamente (Kader, 2002). Estas variables guardan una alta correlación con la vida postcosecha del fruto, ya que a mayor velocidad en la tasa respiratoria y producción de etileno menor vida de anaquel. En el caso de la ciruela mexicana, esta está clasificada como un producto altamente perecedero, es decir que el potencial de almacenamiento postcosecha es <2 semanas (Kader, 2002). A través de la respiración los carbohidratos, proteínas y aceites almacenados en el fruto se degradan a productos más simples para liberar energía que se utilizará en el metabolismo del fruto. La pérdida de estas reservas en los frutos durante la respiración acelera la senescencia, ya que proveen la energía para mantener el producto vivo hasta que se agotan. Lo anterior disminuye la calidad sensorial del producto, especialmente su dulzura, y causa la perdida de materia seca. La energía liberada en forma de calor, conocida como calor vital, debe considerarse en diferentes tecnologías postcosecha para estimar las necesidades de refrigeración o ventilación (Kader y Yahia, 2011). El etileno, por otra parte, puede incrementar el decaimiento de algunos frutos al acelerar su senescencia y ablandamiento (Kader y Yahia, 2011).

La concentración de fenoles totales en la epidermis (FTE) fue entre 2,1 y 2,7 veces más que en la pulpa (FTP) (Tabla III). La colecta ‘Rodul’ fue la que menor contenido de fenoles presentó y la de mayor contenido fue la colecta ‘Joco’, ambas de la estación seca. Solórzano et al. (2015) reportaron valores de FTE entre 0,9 y 5,5 y entre 0,5 y 30mg·g-1 de peso fresco de FTP en 11 ecotipos de ciruela mexicana de estación seca. En el presente trabajo la concentración de fenoles totales fue menor. Se han reportado en otros países contenidos de fenoles totales en ciruela mexicana desde 0,31 hasta 6,7mg·g-1 de peso fresco (Zielinski et al, 2014;Vasco et al., 2008).

El contenido de carotenoides totales fue entre 2,5 y 3,7 veces mayor en la epidermis que en la pulpa, con valores entre 0,058 y 0,53mg·g-1 en pulpa y entre 0,14 y 1,99mg·g-1 en la epidermis (Tabla III). Solórzano et al. (2015) registraron en ciruela mexicana de estación seca concentraciones entre 0,5 y 2,9mg·g-1 de peso fresco en pulpa, mientras que en la epidermis consignaron concentraciones entre 6,1 y 26,3mg·g-1 de peso fresco. Maldonado et al. (2014) encontraron entre 0,08 y 0,24mg·g-1 de peso fresco en la epidermis de ciruela mexicana de estación húmeda y 0,01mg·g-1 de peso seco en la pulpa. El coeficiente de variación en esta variable fue de 40-60%. Los carotenoides son pigmentos que contribuyen a la coloración de la epidermis y la pulpa de los frutos con variaciones del color amarillo al naranja. A estos compuestos diversos autores les atribuyen propiedades antioxidantes en sistemas biológicos; en la ciruela mexicana hay pocos estudios del perfil de carotenoides. Ayala et al. (2011) al revisar el contenido de fenoles y carotenoides en la epidermis, pulpa y semilla de siete frutos tropicales (aguacate, banano, guayaba, jaca, longan y granada) determinaron que es la epidermis la estructura donde hubo mayor concentración de estos compuestos. Esto fue similar en la ciruela mexicana, pero aún más significativo es que en esta especie la epidermis es consumida junto con la pulpa, lo que favorece un mayor consumo de estas moléculas funcionales.

En cuanto a la actividad antioxidante en epidermis y pulpa se encontró una alta variación (CV= 31,6 y 43,7%) cuando se evaluó por los métodos DPPH, ABTS y FRAP, a excepción de la actividad antioxidante determinada en epidermis por el método de ABTS (CV= 24,9%) (Tabla III). En el presente trabajo, la colecta ‘Cons’ mostró la mayor actividad en pulpa por el método de ABTS y FRAP, y el ecotipo ‘Gorch’ mostró la mayor actividad en epidermis y pulpa por DPPH y en epidermis por ABTS. Finalmente ‘Cue3’, una colecta de la estación húmeda mostró la mayor actividad antioxidante por FRAP. Beserra et al. (2011) reportaron que el fruto de S. purpurea entero mostró una actividad antioxidante por los métodos de DPPH y ABTS de 93,78 ±0,6 y 47,2 ±5,95mg EAA/100g de peso fresco, respectivamente. Todas las colectas evaluadas mostraron mayor actividad de ABTS que la reportada por Beserra et al. (2011), mientras que solo 50 colectas tuvieron mayor actividad de la reportada por el método de DPPH por los mismos autores (datos no mostrados). Yahia et al. (2011) determinaron actividad antioxidante en 12 frutos tropicales en una amplitud que varió de 11,5 a 270mg de EAA/100g de peso fresco por el método de DPPH. Los resultados obtenidos en este trabajo con las colectas de ciruela mexicana evaluadas superan estos valores (Tabla III), por lo que los frutos de S. purpurea son una fuente importante de antioxidantes.

El dendograma obtenido del análisis cluster efectuado fue dividido en cuatro grupos de acuerdo a la prueba de partición con el pseudoestadistico t2 de Hotelling, ya que es el primer punto de baja variabilidad (Figura 3). El dendograma se dividió en un valor R2 semiparcial de ~0,075.

El grupo I estuvo conformado por los 53 genotipos de ciruelas de estación húmeda (Figura 3) de color rojo opaco, de mayor masa y dimensiones del fruto, alto contenido de sólidos solubles totales y baja acidez en epicarpio y pulpa, bajo contenido de fenoles en epicarpio y baja actividad de FRAP, pero el mayor contenido de carotenoides en pulpa (Tabla IV). El grupo II se integró de 44 genotipos de ciruelas de clima seco (Figura 3) de masa baja, dimensiones intermedias, bajo contenido de sólidos solubles totales, acidez titulable en pulpa y epicarpio, fenoles en epicarpio, carotenoides y actividad antioxidante por FRAP en la pulpa (Tabla IV). El tercer grupo se integró por tres ciruelas de la región suroeste del estado de Morelos de color rojo, de masa y dimensiones, bajo contenido de sólidos solubles totales y gran acidez titulable de pulpa y epidermis (hasta tres veces más que el resto de los materiales evaluados), alto contenido de fenoles en epicarpio, pero baja actividad antioxidante en pulpa por FRAP y bajo contenido de carotenoides en epicarpio (Tabla IV). Finalmente, el grupo IV se integró por los materiales provenientes de Chiapas, que son los que se cultivan de forma comercial en el país: ‘Jocote’ y ‘Chapilla’; estos materiales mostraron un color naranja a amarillo, con masa y dimensiones mayores, contenido promedio de sólidos solubles totales, baja acidez titulable, alto contenido de fenoles en epicarpio y actividad antioxidante por FRAP en pulpa, pero bajo contenido de carotenoides en pulpa (Tabla IV).

La varianza total quedó expresada en las tres primeras raíces canónicas (Tabla V). La primera raíz canonica (Can1) ayudó a explicar 80,9%, la segunda (Can2) explicó 10,3% y la tercera (Can3) 8,8%. La Can1 estuvo relacionada (Tabla VI) a variables de color (cromaticidad y matiz), masa y dimensiones del fruto (diámetro polar y ecuatorial) y calidad (sólidos solubles totales y carotenoides totales en pulpa), la Can2 se asoció a la acidez titulable de pulpa y epicarpio, y la Can3 con aspectos de la luminosidad del exocarpo, fenoles de epicarpio y actividad antioxidante en la pulpa (FRAP).

Los grupos fueron estadísticamente diferentes con base a la prueba de la distancia de Mahalanobis (P≤0,0001, Tabla VII). En el MANOVA se encontraron diferencias en las tres raíces canónicas (Tabla VIII); la Can1, Can 2 y Can 3 no encontró diferencias en los grupos 1 y 2, pero si entre 1 y 2 vs 3, 1 y 2 vs 4, 3 vs 4.

Los resultados obtenidos pueden apoyar la selección de materiales para formar un banco de germoplasma e iniciar trabajos de selección de materiales sobresalientes que puedan en el futuro ser liberados como materiales comerciales. Se determino que los mejores genotipos para consumo en fresco son los de clima húmedo y los dos materiales comerciales de clima seco ‘Jocote’ y ‘Chapilla’. En el grupo donde se agruparon la mayoría de los materiales de clima seco (44) se pueden seleccionar algunos que pueden competir con los materiales comerciales.

Conclusiones

La masa, dimensiones del fruto, el contenido de sólidos solubles totales, carotenoides totales, fenoles totales, acidez titulable, la producción de etileno y actividad antioxidante por ABTS y DPPH son las variables que apoyarían a seleccionar materiales sobresalientes de ciruela mexicana. El estudio realizado mostró que existe clara separación entre las ciruelas de estación seca y húmeda.

Agradecimientos

El primer autor agradece a CONACyT por el apoyo económico para realizar estudios de Posgrado. Se agradece el apoyo de SEP-PROMEP a la Red “Ciencia y Tecnología Pre y Postcosecha” para la publicación del presente trabajo, así como a Alyn Mariana Palacios Sosa, por el apoyo en la medición de las variables en el laboratorio.

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