Introducción

En larvicultura de peces, el alimento vivo es comúnmente usado como primera alimentación; sin embargo, su baja producción y alto precio en el mercado se han convertido en el cuello de botella para el cultivo de algunos silúridos a escala comercial (Person-Le Ruyet et al., 1993). A pesar de esto, el proceso de acondicionamiento a consumo de alimentos artificiales conocido comúnmente como ‘destete’, el cual consiste en proporcionar una dieta mixta que contenga alimento comercial acompañado de un suplemento proteico de origen animal, puede ser una alternativa viable para solucionar este cuello de botella (Marciales-Caro et al., 2011). No obstante, a menudo su uso puede conducir a una baja supervivencia y/o crecimiento debido a la inadecuada edad de destete (Jones et al., 1993; Person-Le Ruyet et al., 1993; Watanabe y Kiron, 1994), ocasionando daños en el tracto digestivo (Pickering, 1998) y retrasando el desarrollo, la salud y la función fisiológica de las larvas (Fevolden y Røed, 1993; Fevolden et al., 1999, Cahu y Zambonino-Infante, 2001; Hamza et al., 2007).

En los peces, durante el desarrollo larvario se presentan cambios importantes en el sistema digestivo, involucrando algunos procesos y asimilación de compuestos químicos, y determinando modificaciones en los requerimientos nutricionales de acuerdo con la etapa de desarrollo de las larvas (Kolkovski, 2001). Las larvas de silúridos presentan un desarrollo tardío del estómago funcional y deficiencia en la producción de enzimas digestivas (Dabrowski, 1984), por lo que es indispensable incluir en su dieta alimento vivo que le proporcione estímulos visuales y aportes enzimáticos para incrementar la actividad digestiva e ingestiva (Aristizábal y Suárez, 2006), y le permita una fácil transición a una dieta inerte (Borges y Portella, 2006).

Este proceso de acondicionamiento o destete ha sido estudiado en algunas espcies como Heterobranchus longifilis (Kerdchuen y Legendre, 1994), Colossoma macropomum (Sevilla y Günther, 2000), Pangasius bocourti (Hung et al., 2002), Pseudoplatystoma corruscans (Guerrero-Alvarado, 2003), Sorubim cuspicaudus (Vergara y Hoyos, 2005), Pseudoplatystoma sp. y Leiarius marmoratus (Marciales-Caro et al., 2011) y Leiocassis longirostris (Liu et al., 2012).

El capaz, Pimelodus gross-kopfii, es una especie de la familia Pimelodidae, que en Colombia se encuentra en la cuenca del río Magdalena y/o en el Embalse de Betania (Villa-Navarro y Losada-Prada, 1999) en el departamento del Huila. Debido a la calidad de su carne, la ausencia de espinas intramusculares y su precio en el mercado nacional ($12.000/kg), es una especie de gran importancia comercial (Valbuena-Villareal et al., 2012). La reproducción de la especie ha sido estudiada, reportándose protocolos eficientes para su producción en cautiverio (Valbuena-Villareal et al., 2010), asi como el desempeño y sobrevivencia utilizando alimento vivo (Valbuena-Villareal et al., 2013). Aunque se han realizado estudios en algunas especies de bagres (Padilla et al., 2001; Marciales-Caro et al., 2011), aún no es posible su cultivo a escala comercial, debido principalmente a las dificultades para adaptarlas a consumir dietas secas o concentrados comerciales (Guerrero-Alvarado, 2003). Ello hace necesario estudios del desarrollo larvario para establecer técnicas de manejo más eficientes, especialmente durante la transición de la alimentación endógena a exógena (Zaniboni-Filho et al., 2001).

Teniendo en cuenta que hasta el momento no existen estudios sobre el acondicionamiento a dieta seca de especies nativas como el capaz, el objetivo del presente trabajo fue evaluar el crecimiento y sobrevivencia de larvas de capaz durante el proceso de acostumbramiento a una dieta comercial por un periodo de cinco semanas.

Materiales y Métodos

Localización

Los ensayos fueron realizados en la Estación Piscola de la Autoridad Nacional de Acuicultura y Pesca (AUNAP) de Colombia, localizada en el municipio de Gigante-Huila, a 960msnm, con ~29ha totales y 5,5ha de espejo de agua, temperatura promedio de 24ºC y precipitación anual de 1250mm.

Material biológico

Las larvas de capaz (Pimelodus grosskopfii Steindachner 1879) fueron obtenidas por reproducción inducida con extracto de hipófisis de carpa (EHC) en la Estación Piscícola AUNAP. Durante los primeros 10 días posteclosión (DPE), las larvas se mantuvieron en incubadoras de acrílico de 200 litros y fueron alimentadas con Artemia salina en ración de 600 nauplios/ml/larva/día.

Ensayos de acostumbramiento

Después del periodo de acondicionamiento se tomaron al azar 576 larvas con un peso promedio inicial de 20,96 ±4,35mg y talla de 9,77 ±2,64mm, las cuales fueron distribuidas en acuarios de vidrio con un volumen de 16 litros, manteniendo una densidad de 4 larvas/litro, aireación continua, recambio diario de 50% del agua, temperatura promedio del agua de 27ºC, manteniéndola por medio de termostatos y cubiertos con bolsas plásticas de color negro con el fin de disminuir la intensidad lumínica. Cada acuario fue considerado como una unidad experimental, las cuales fueron asignadas aleatoriamente a uno de tres tratamientos, con tres réplicas, así: T1: hígado de bovino + bacalao; T2: hígado de bovino y T3: control. La proporción de los componentes de la dieta para cada tratamiento fue modificado semanalmente, iniciando con una proporción 80:20 (suplemento de proteína animal:alimento balanceado comercial) y finalizando la quinta semana con 0:100, tal como se indica en la Tabla I. Las porciones de alimento balanceado y suplemento de proteína fueron mezcladas con gelatina sin sabor en proporciones iguales para cada tratamiento dentro del periodo de acondicionamiento, para otorgarle consistencia a la dieta suministrada y evitar su rápida desintegración y dilución en el agua. El suministro de la ración fue realizada ad libitum cuatro veces al día, a las 8:00, 11:00, 14:00 y 18:00. Durante el experimento se registró diariamente la temperatura (ºC) y oxígeno disuelto (mg·l^-1) empleando una sonda multiparamétrica YSI. Dos horas después de cada alimentación, se realizó un recambio del 20% del agua del recipiente y se retiró mediante sifoneado los residuos sólidos para evitar acumulación de materia orgánica y deterioro de la calidad del agua.

TABLA I

ESQUEMA DE ALIMENTACIÓN PARA ACONDICIONAMIENTO PROGRESIVO A DIETA SECA COMERCIAL DE LARVAS CAPAZ (Pimelodus grosskopfii)

AP: dieta viva (Artemia salina), DH: dieta húmeda (mezcla de hígado con dieta seca), DS: dieta seca (alimento balanceado comercial 45% proteína).

Evaluación del crecimiento y supervivencia

Al final de cada una de las cinco semanas y para cada uno de los tres tratamientos con sus respectivas réplicas se determinaron los incrementos de peso y longitud, mediante el uso de una balanza analítica (Ohaus, USA, 0,01mg de sensibilidad) y una reglilla calibrada en el ocular del estereoscopio. Para tal fin, las larvas seleccionadas al azar se fijaron en formol tamponado al 4%. Igualmente se determinaron otros parámetros tales como la tasa de sobrevivencia, por periodo y al final, mediante la aplicación de la fórmula.

Tasa de sobrevivencia=Nº final de larvas × 100/Nº inicial de larvas - Nº de larvas muestreadas y la tasa de crecimiento específico (TCE) según la formula de Kesmont y Stalmans (1992):

donde Wtf: peso final, Wti: peso final inicial, t= duración en días entre biometrías.

Análisis estadístico

Los datos fueron descritos como media ±error estándar de la media (ESM). Para analizar los efectos de los tratamientos se realizó un análisis de varianza (ANOVA) simple, verificando previamente los supuestos de normalidad (prueba de Kolmogorov-Smirnov) y homogeneidad de varianzas (prueba de Levene). Se utilizó la prueba de Tukey para comparar las medias entre los diferentes tratamientos, como prueba a posteriori luego de establecer diferencias significativas. El criterio de significancia fue p<0,05. Los análisis estadísticos fueron realizados usando el programa SPSS 13.0.

Resultados

En general, se observaron diferencias significativas en el comportamiento de las variables productivas evaluadas en las larvas de capaz, excepto para la tasa de crecimiento específico (F= 4,90; p= 0,548). La ganancia de peso (F= 58,25; p=0,0001), talla (F= 158,66; p= 0,0000) y sobrevivencia (F= 23,02; p= 0,0015) fue mayor en larvas que recibieron dietas con hígado y/o bacalao (Figura 1).

Figura 1
Ganancia de talla (a), peso corporal (b), sobrevivencia (c) y tasa de crecimiento especifico (d) en larvas de Pimelodus grosskopfii al final del acondicionamiento progresivo al consumo de dieta seca, durante un periodo de cinco semanas. T1: hígado de bovino, T2: hígado de bovino + aceite de bacalao y T3: control.

Los mas bajos resultados en cuanto a aumento de peso (177,98 ±0,016mg), talla (7,67 ±0,08mm) y sobrevivencia (27 ±2%) se presentaron en el tratamiento control.

Los parámetros de calidad de agua no presentaron variaciones entre los diferentes tratamientos a lo largo del ensayo. La temperatura promedio que se registro durante el experimento fue de 27 ±5ºC y el oxígeno disuelto de 6,9 ±0,6mg·l^-1.

Discusión

El acondicionamiento o cambio gradual del suministro de alimento vivo a dieta comercial es un proceso considerado como crítico en el cultivo de peces carnívoros (Bock y Padovani, 2000; Kolkovski, 2001). La supervivencia de las larvas es uno de los parámetros más importantes a tener en cuenta al momento de evaluar el éxito de cualquier proceso de destete. En este sentido, se acepta generalmente que la adaptación de las larvas de peces a dietas comerciales requiere de protocolos especiales, debido a que se dan una serie de cambios morfológicos, fisiológicos y de comportamiento (Rao, 2003). El éxito de este proceso depende de algunas variables tales como: 1) el alimento suministrado (Marciales-Caro et al., 2011), 2) las características de las larvas (Kolkovski, 2001) y 3) el tiempo mínimo de suministro de alimento vivo antes de iniciar el entrenamiento a consumo de dietas secas (Guerrero-Alvarado, 2003).

En el presente estudio, el acondicionamiento de larvas de capaz se realizó a los 10 dias DPE, dando como resultado una supervivencia del 7 al 31%. Estos valores son relativamente bajos si se comparan con otras especies de bagres, tales como Clarias gariepinus (61-92%; Hogendoorn, 1980), Heterobranchus longifilis (50-96%; Kerdchuen y Legendre, 1994), Pseudoplatys toma sp y Leiarius marmoratus (40-50%; Marciales-Caro et al., 2011). Esto pudo haber ocurrido posiblemente debido al bajo desarrollo de las enzimas implicadas en la digestión de proteínas de las larvas de capaz, tal como ocurre en otro tipo de bagres (Pradhan et al., 2012).

El efecto del suplemento proteico utilizado durante el acondicionamiento progresivo presentó diferencias significativas para esta especie. El mejor desempeño se observó en los tratamientos que incluyeron hígado y/o hígado + bacalao. Valores similares fueron encontrados en otras especies de bagres como Pseudoplatystoma sp y L. marmoratus (Marciales-Caro et al., 2011). El uso de estos suplementos proteicos de origen animal está vinculado con la activación directa e indirecta de enzimas como precursores o activadores de los procesos de asimilación y absorción, y por lo tanto, de la digestibilidad de las dietas secas (Kolkovski, 2001). La fisiología y la morfogénesis del tracto digestivo de las larvas pueden ser estimuladas de acuerdo a como se lleve a cabo el proceso de co-alimentación (Cahu y Zambonino-Infante, 2001). Dependiendo del tipo de dieta y régimen de alimentación, el desarrollo y maduración del sistema digestivo de las larvas podría activarse o inhibirse (Vega-Orellana et al., 2006, Engrola et al., 2007, Engrola et al., 2010, Kamarudin et al., 2011; Liu et al., 2012).

En el presente estudio, el suministro de Artemia salina durante las primeras semanas (Tabla I) pudo haber facilitado la digestión de la dieta de transición suministrada, lo cual se manifestó en la mayor ganancia de talla, peso corporal y sobrevivencia, tal como lo reportó Borges et al., (2006) para Piaractus mesopotamicus, especie en la cual encontraron que al utilizar conjuntamente organismos vivos y dieta inerte se obtienen mejores resultados en cuanto a parámetros productivos que cuando sólo se utilizaron organismos vivos, ya que el alimento vivo por sí solo no es suficiente para suplir los requerimientos nutricionales de las postlarvas de peces (Dabrowski, 1984).

De acuerdo a los resultados obtenidos en el presente estudio se concluye que durante el proceso de acondicionamiento a dieta seca el uso de alimento vivo, al igual que de suplementos de proteína de origen animal, es de vital importancia para obtener buenos resultados. De igual forma, las especies pueden tener una respuesta diferente frente al acondicionamiento, debido posiblemente a diferencias en el desarrollo del tracto digestivo, por lo que es necesario ajustar los esquemas de acondicionamiento tradicionales.

Agradecimientos

La autora agradece a Colciencias y Corporación Centro de Desarrollo Tecnológico Piscícola Surcolombiano-Acuapez (convenio 0157-2013) por el apoyo financiero, así como a la Autoridad Nacional de Pesca y Acuicultura-AUNAP por el apoyo logístico y a José Luis Buendia y Leonardo Vargas por su colaboración en la conducción del ensayo.

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Notas de autor

Enlace alternativo

https://www.interciencia.net/wp-content/uploads/2018/03/111-CARRERA-43_02.pdf (pdf)