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				<journal-title>Revista internacional de contaminación ambiental</journal-title>
				<abbrev-journal-title abbrev-type="publisher">Rev. Int. Contam.
					Ambient</abbrev-journal-title>
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				<publisher-name>Universidad Nacional Autónoma de México, Centro de Ciencias de la Atmósfera</publisher-name>
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			<article-id pub-id-type="doi">10.20937/RICA.53054</article-id>
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					<subject>Artículos</subject>
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				<article-title>BIODEGRADACIÓN DE RESIDUOS DE ACEITE USADO DE COCINA POR HONGOS
					LIPOLÍTICOS: UN ESTUDIO IN VITRO</article-title>
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					<trans-title>BIODEGRADATION OF WASTE USED COOKING OIL BY LIPOLYTIC FUNGI: AN IN
						VITRO STUDY</trans-title>
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				<label>1</label>
				<institution content-type="original">Facultad de Farmacia y Bioquímica, Universidad
					Privada Norbert Wiener. Av. Arequipa 444, Lima 01, 51001 Lima,
					Perú</institution>
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					Wiener</institution>
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				<label>2</label>
				<institution content-type="original">Hospital Nacional Docente Madre Niño San
					Bartolome, Av. Alfonso Ugarte 825, Cercado de Lima 15001, Perú</institution>
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				<label>3</label>
				<institution content-type="original">Facultad de Medicina Humana, Universidad
					Privada Norbert Wiener, Jr. Larrabue y Unanue 110, Lima 01, Perú.</institution>
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					Wiener</institution>
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					<label>*</label>Autor para correspondencia:
						<email>a2018200823@uwiener.edu.pe</email>
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			<!--<pub-date date-type="pub" publication-format="electronic">
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				<year>2021</year>
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				<pub-date pub-type="epub-ppub">
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				<year>2020</year>
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					<license-p>Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia
						Creative Commons</license-p>
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			</permissions>
			<abstract>
				<title>RESUMEN</title>
				<p>Los residuos de aceites usados de cocina (RAUC) son uno de los más graves
					factores de contaminación del agua porque son capaces de crear una capa que
					dificulta el paso de oxígeno y es difícilmente eliminable. Con el objetivo de
					demostrar la capacidad y eficiencia de biodegradación in vitro de RAUC mediante
					hongos lipolíticos se realizó un estudio con tres géneros hongos provenientes de
					efluentes industriales de aceite de palma (<italic>Penicilium</italic>,
						<italic>Aspergillus</italic> y <italic>Amorphoteca</italic>). Se evaluó la
					eficiencia de biodegradación en un contenedor con partes iguales (300 mL) de
					RAUC y agua de grifo donde se inocularon ± 10<sup>4</sup> conidios/mL en los
					experimentos con un género, ± 50<sup>3</sup> conidios/mL con dos géneros y ± 33
					300 conidios/mL con los tres géneros. Para cada experimento se realizaron tres
					repeticiones y todos fueron incubados a 27 y 30 ºC hasta por ocho días. Los
					niveles de actividad lipolítica entre géneros de hongos difirieron durante los
					primeros días del experimento (p &lt; 0.05) normalizándose hacia el octavo día
					(p = 0.573). La combinación de tres géneros mejoró la eficiencia de
					biodegradación (p &lt; 0.001), comparable con la evaluación a los 8 días de los
					experimentos individuales (p = 0.012). Todos los experimentos a 27 ºC tuvieron
					mejor eficiencia que los de 30 ºC (p &lt; 0.001). Los tres hongos lipolíticos
					tienen alta capacidad y eficiencia de biodegradación de RAUC in vitro luego de
					ocho días de incubación a 27 ºC. </p>
			</abstract>
			<trans-abstract xml:lang="en">
				<title>ABSTRACT</title>
				<p>The waste used cooking oil (WUCO) is one of the most serious factors of water
					pollution because it is able to create a layer that hinders the passage of
					oxygen and is difficult to remove. In order to demonstrate the capacity and
					efficiency of in vitro biodegradation of WUCO by lipolytic fungi, a study was
					conducted with three genera of fungi from industrial effluents of palm oil
						(<italic>Penicilium, Aspergillus</italic> and <italic>Amorphoteca</italic>).
					The efficiency of experimental biodegradation was evaluated in a container with
					equal parts (300 mL) of WUCO and tap water, where they were inoculated: ± 104
					conidia/mL for individual experiments, ± 50<sup>3</sup> conidia/mL for a dual
					evaluation (two genera) and ± 33 300 conidia/mL for an evaluation of the three
					fungi. For each experiment three replicates were performed and all were
					incubated at 27 and 30 ºC for up to eight days. Lipolytic activity levels among
					genera of fungi were significant during the first days of the experiment (p &lt;
					0.05), normalizing to eighth day (p = 0.573). The combination of the three fungi
					improved the efficiency of biodegradation (p &lt; 0.001), comparable with the
					eight-day evaluation of individual experiments (p = 0.012). All experiments at
					27 ºC had better efficiency (p &lt; 0.001). The three lipolytic fungi have high
					capacity and efficiency of biodegradation of WUCO in vitro after eight days of
					incubation at 27 ºC.</p>
			</trans-abstract>
			<kwd-group xml:lang="es">
				<title>Palabras clave:</title>
				<kwd>aguas residuales</kwd>
				<kwd>Penicilium</kwd>
				<kwd>Aspergillus</kwd>
				<kwd>Amorphoteca</kwd>
				<kwd>biorremediación</kwd>
			</kwd-group>
			<kwd-group xml:lang="en">
				<title>Key words:</title>
				<kwd>residual water</kwd>
				<kwd>Penicilium</kwd>
				<kwd>Amorphoteca</kwd>
				<kwd>Aspergillus</kwd>
				<kwd>bioremediation</kwd>
			</kwd-group>
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			</counts>
		</article-meta>
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		<sec sec-type="intro">
			<title>INTRODUCCIÓN</title>
			<p>Los principales problemas ambientales en el Perú son la contaminación del agua, la
				erosión del suelo y la deforestación. La contaminación hídrica incluye los residuos
				industriales, aguas residuales y los residuos relacionados con el petróleo (<xref
					ref-type="bibr" rid="B10">Carrizales et al. 1999</xref>). </p>
			<p>Las actividades del ser humano están generando modificaciones del equilibrio hídrico
				convirtiendo las reservas de agua en peligrosas e impropias para el consumo humano,
				la agricultura y la pesca, entre otras actividades (<xref ref-type="bibr" rid="B25"
					>Ongley 2004</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B17">Moss 2008</xref>). Según la
				Organización Mundial de la Salud, en el Perú entre el 21 y el 25 % de las
				enfermedades son ocasionadas por cambios en el ambiente, principalmente los
				relacionados con temperatura, disponibilidad de agua y desertificación (<xref
					ref-type="bibr" rid="B34">Valdez et al. 2013</xref>). Pese a estas condiciones
				de contaminación del agua, el 86 % del agua dulce es usada actualmente para la
				agricultura y actividades afines, es por ello que el informe de la Fundación para la
				Seguridad Ambiental y Sostenibilidad, señaló que en las próximas décadas Perú se
				enfrentará a una crisis crónica del agua en todo el país, al igual que otros países
				del mundo (<xref ref-type="bibr" rid="B11">Cosgrove y Rijsberman 2000</xref>).</p>
			<p>La contaminación por los residuos de aceite usado de cocina (RAUC) es uno de los
				factores más graves de contaminación del agua, ya que es capaz de crear una capa
				sobre la superficie del agua que dificulta el paso de oxígeno pudiendo matar a los
				seres vivos de los ríos, canales o mares. Esta capa es difícil de eliminar, aunque
				se considera, las más de las veces, con nimiedad (<xref ref-type="bibr" rid="B9"
					>Canakci 2007</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B1">Abdul y Bhargavi
					2015</xref>). El Instituto Nacional de Tecnología Industrial Argentino (INTI)
				señala que aproximadamente un litro de RAUC puede contaminar hasta mil litros de
				agua, lo que representa la cantidad de agua que consume aproximadamente una persona
				promedio durante 11.5 años (<xref ref-type="bibr" rid="B32">Solate y Vargas
					2013</xref>). Asimismo, las industrias aceiteras han crecido considerablemente
				en las últimas décadas debido a que obtienen gran variedad de derivados vegetales.
				No obstante, estas industrias causan problemas cada vez más graves para las
				poblaciones locales y sus medios de vida pues el proceso de extracción de aceite
				exige grandes cantidades de agua, que posteriormente son descargadas como desechos
				directamente a los ríos (<xref ref-type="bibr" rid="B31">Shirkie y Ching
				2000</xref>). En el Perú, por ejemplo, más de la mitad de los ríos están
				contaminados (Chillón, Mantaro y Chili, entre otros) en gran parte por productos
				derivados de plantas aceiteras (<xref ref-type="bibr" rid="B26">Oré et al.
					2009</xref>).</p>
			<p>En numerosos estudios previos se ha reportado la utilidad de los microrganismos
				capaces de absorber y degradar metabólicamente estos aceites (<xref ref-type="bibr"
					rid="B23">Okogbenin et al. 2014</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B33"
					>Soleimaninanadegani y Manshad 2014</xref>). Estos señalan una alta efectividad
				en la reducción de lípidos/aceites, principalmente de plantas industriales. Sin
				embargo, se han descrito problemas como la adaptación limitada de los microrganismos
				en condiciones ambientales locales, su desarrollo experimental únicamente in vitro y
				la falta de integración entre los organismos que limitan el proceso de
				biorremediación en desmedro de la salud ambiental global. Los microrganismos con
				capacidad para degradar aceite son principalmente bacterias y hongos (<xref
					ref-type="bibr" rid="B21">Nizam 2008</xref>), que tienen una mayor eficiencia si
				se usan de manera combinada a temperaturas óptimas (± 30 ºC) (<xref ref-type="bibr"
					rid="B28">Otálora et al. 2000</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B7">Bin
					2008</xref>). Sin embargo, cuando se ha comparado la eficiencia de degradación
				entre bacterias y hongos usando trioleína, aunque no se determinó diferencia en
				ambos, hubo mayores reportes de biodegradación para géneros de hongos,
				principalmente con métodos de asilamiento convencional (agar Sabouraud) y
				modificados (ácido fosfórico en medio Czapek-Dox) siendo favorables los géneros
					<italic>Aspergillus, Penicillium, Fusarium</italic> (<italic>F.
					avenaceum</italic> y <italic>F. solani</italic>), entre otros (<xref
					ref-type="bibr" rid="B28">Otálora et al. 2000</xref>, <xref ref-type="bibr"
					rid="B12">Domínguez 2002</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B7">Bin 2008</xref>,
					<xref ref-type="bibr" rid="B30">Rodríguez 2011</xref>, <xref ref-type="bibr"
					rid="B24">Okwoute e Ijah 2014</xref>).</p>
			<p>En la investigación que se presenta, demostramos la capacidad de biodegradación in
				vitro de hongos lipolíticos sobre los residuos de aceites usados de cocina,
				comparando el rendimiento entre géneros fúngicos y la turbidez del producto final
				del agua biodegradada por hongos </p>
		</sec>
		<sec sec-type="materials|methods">
			<title>MATERIALES Y MÉTODOS</title>
			<p>El estudio se realizó en el Hospital Nacional Docente Madre Niño San Bartolomé, en
				Lima. Se utilizaron tres hongos con capacidad para degradar aceites
					(<italic>Penicilium</italic> sp<italic>, Aspergilus</italic> sp. y
					<italic>Amorphoteca</italic> sp.) obtenidos de efluentes industriales de aceite
				de palma de la Amazonia del Perú y caracterizados en la Universidad Peruana Cayetano
				Heredia, en Lima, Perú (<xref ref-type="bibr" rid="B35">Vertiz 2016</xref>).</p>
			<p>El fundamento de la reacción de biodegradación de RAUC por hongos lipolitícos se
				muestra en la <xref ref-type="fig" rid="f1">figura 1</xref>. El estudio se dividió
				en tres etapas: preanalítica, analítica y postanalítica.</p>
			<p>
				<fig id="f1">
					<label>Fig. 1</label>
					<caption>
						<title>Reacción general reversible catalizada por la lipasa en medio
							natural</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0188-4999-rica-36-02-351-gf1.png"/>
				</fig>
			</p>
			<sec>
				<title>A. Etapa preanalítica</title>
				<p>Las cepas identificadas y seleccionadas se inocularon en agar Sabouraund-dextrosa
					(ASD) (Merck, Darmstadt, Alemania) al 5 %, incubándose a 37 ± 1 ºC con 68 % de
					humedad relativa por 24 h, posterior al aislamiento primario donde se observaron
					las colonias características de cada hongo inoculado (<xref ref-type="bibr"
						rid="B23">Okogbenin et al. 2014</xref>). Las cepas se crioconservaron a - 20
					ºC hasta su transporte y procesamiento. </p>
				<p>Los contenedores de plástico se esterilizaron previamente por radiación, en estos
					se preparó un contenedor de plástico con partes iguales de agua de grifo y RAUC
					(300 mL de ambos) para cada experimento (<xref ref-type="bibr" rid="B28">Otálora
						et al. 2000</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B7">Bin 2008</xref>). Los
					RAUC fueron procedentes de grasa usada de frituras (2 papas (<italic>Solanum
						tuberosum</italic>) = peso aproximado ± 180 gr) durante 5 ± 1 min, a
					intensidad de fuego moderado (<xref ref-type="bibr" rid="B9">Canakci
					2007</xref>). Primero se inocularon las cepas sobre agua de grifo y luego se
					mezcló con RAUC, evitando la contaminación de la fase acuosa bajo condiciones de
					esterilidad (durante la inoculación inicial y en cada observación).</p>
			</sec>
			<sec>
				<title>B. Etapa analítica</title>
				<p>Para la obtención de conidios se realizó cultivo con 20 mL ASD por 11 días. La
					evaluación de la viabilidad de los conidios fue mediante la capacidad de formar
					colonias viables (unidades formadoras de colonia por mililitro, UFC/mL) con
					siembra en placas (<xref ref-type="bibr" rid="B29">Palmero et al. 2009</xref>).
					Luego de evaluar el crecimiento y desarrollo completo de conidios de cada hongo
					se procedió a inocular los conidios de <italic>Penicilium, Aspergilus</italic> y
						<italic>Amorphoteca</italic> del medio ASD a la fase acuosa de la matriz de
					almacenamiento (300 mL de agua de grifo y 300 mL de RAUC). La mezcla se realizó
					por lateralización para un mejor desprendimiento y disolución de los hongos
					lipolíticos (<xref ref-type="bibr" rid="B3">APHA 2014</xref>). Antes de la
					mezcla de RAUC con agua, se separaron las impurezas y los artefactos propios de
					las frituras con una espátula. Para la inoculación se realizó una suspensión de
					conidios en suero salino fisiológico. Para los experimentos individuales fue de
					± 100 000 conidios/ mL. Se inoculó una vez por cada género en cada uno de los
					tres experimentos. Para los experimentos de actividad lipolítica combinada, se
					inocularon ± 50 000 conidios/mL de cada género para la evaluación dual, y ± 33
					300 conidios/ mL para la evaluación de las tres cepas de los géneros fúngicos en
					conjunto. En general, se inoculó 1 mL de suspensión de suero fisiológico (con
					conidios/mL) en la mezcla de agua del grifo y RAUC (600 ml volumen total).</p>
				<p>Se realizaron tres repeticiones de cada experimento para cada género y para los
					experimentos combinados (entre dos y tres géneros). Todos los experimentos se
					condujeron a 27 ± 1 ºC (temperatura ambiente) y 30 ± 1 ºC (incubación por
					convección) de los cultivos de hongos en medio líquido (agua/RAUC). Para
					realizar la evaluación de turbidez entre los inóculos de la fase acuosa se
					utilizó el patrón 0.5 de turbidez de <xref ref-type="bibr" rid="B16">McFarland
						en turbidímetro PCE-TUM 20 (PCE, Albacete, España) (McFarland 1907)</xref>.
					Se consideró esta evaluación para el crecimiento de bacterias ambientales
					contaminantes durante el tiempo de incubación (≤ 8 días). Las mezclas se
					agitaron solamente al inicio de cada experimento, por tanto, se evitó la
					formación de microgotas de RAUC durante esta evaluación.</p>
				<p>Asimismo, las colonias se mantuvieron en tubos tapa rosca estériles, en
					condiciones de refrigeración en ASD hasta su identificación definitiva mediante
					técnicas moleculares. La identificación se realizó por microscopía con la
					técnica de microcultivo en lámina desde ASD y determinación molecular (<xref
						ref-type="bibr" rid="B35">Vertiz 2016</xref>). La extracción de ADN fúngico
					se hizo con CTAB2 (bromuro de hexadeciltrimetilamonio: Sigma-Aldrich, St. Louis,
					Missouri, EUA) (<xref ref-type="bibr" rid="B18">Murray y Thompson 1980</xref>,
						<xref ref-type="bibr" rid="B2">Alwakeel 2013</xref>), purificados con el
					equipo QIA quick PCR Purification (QiaGen, Hilden, Alemania). Los cebadores
					fueron: nu-SSU-0817-59 (TTAGCATGGAATAATRRAATAGGA); nu-SSU-1196-1139
					(TCTGGACCTGGTG AGTTTCC), ynu-SSU-1536-1539 (ATTGCAATGCYCTATCCCCA) ya que estos
					se unen a secuencias de la subunidad pequeña de ADN ribosomal (ADNr) de los
					hongos representativos de todos los grupos filogenéticos (Murray y Thompson
					1980, <xref ref-type="bibr" rid="B8">Borneman y Hartin 2000</xref>). Treinta y
					cinco ciclos de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) se realizaron a 94 ºC
					durante 0 s, 56 ºC durante 10 s, y 72 ºC durante 30 s, seguido de 72 ºC durante
					2 min. Por último, las secuencias conservadas dentro de este grupo se
					identificaron con al servicio de Genetics Computer Group Inc. (University of
					South Florida, Tampa, FL) (Datos no mostrados). </p>
			</sec>
			<sec>
				<title>C. Etapa postanalítica</title>
				<p>Se observó la biodegradación de RAUC diariamente, mediante fotografiado seriado
					durante ocho días, luego se realizó la medición de la concentración de aceites y
					grasas totales libres en el producto final, mediante la cuantificación de ácidos
					grasos libres por el método de espectrofometría de masas-cromatografía de gases
					(GCMS) en el laboratorio de cromatografía del grupo Societé Genérale de
					Surveillance (SGS) del Perú (<xref ref-type="bibr" rid="B24">Okwoute y Ijah
						2014</xref>). Se centrifugaron cada uno de los contenidos de cada
					experimento a 3500 rpm × 3 min., separándose el sobrenadante para este análisis.
					Con esto se evaluó la eficiencia de la biodegradación de RAUC mediante la prueba
					de degradación en medio liquido con control de crecimiento sobre RAUC (<xref
						ref-type="bibr" rid="B23">Okogbenin et al. 2014</xref>). </p>
			</sec>
			<sec>
				<title>Análisis de datos</title>
				<p>Para la evaluación de los ensayos de eficiencia de la biodegradación de RAUC se
					utilizó el análisis de varianza (Andeva) de una vía tomando como variable
					categórica los géneros de hongos y, como variable de respuesta, la medición de
					la biodegradación de RAUC: concentración de ácidos grasos en la suspensión,
					medidos por cromatografía de gases-espectrometría de masas (GCMS). Se utilizó la
					prueba de t para muestras independientes para la comparación entre la eficiencia
					de degradación a 27 y 30 ºC de los cultivos de hongos en medio líquido. El nivel
					de significación fue de 0.05 (α = 0.05). El análisis de datos se realizó con el
					analizador estadístico IBM SPSS v.20.0 (Armonk, EUA) y MS-excel (Redmond, EUA)
					para Windows.</p>
			</sec>
		</sec>
		<sec sec-type="results">
			<title>RESULTADOS</title>
			<p>En principio, en la identificación microscópica de los hongos se obtuvieron
				similitudes con otras especies de los géneros <italic>Penicillium,
					Aspergillus</italic> y <italic>Amorphoteca</italic>, todos comparados en el
				laboratorio (datos no mostrados). En la identificación molecular coincidieron todos
				los géneros de los hongos lipolíticos (especies no identificadas) (<xref
					ref-type="bibr" rid="B35">Vertiz 2016</xref>). El control diario de la
				biodegradación de RAUC se muestra en la <xref ref-type="fig" rid="f2">figura
					2</xref>. </p>
			<p>
				<fig id="f2">
					<label>Fig. 2</label>
					<caption>
						<title>Biodegradación de residuos de aceites usados de cocina (RAUC) in
							vitro por acción combinada de <italic>Penicillium, Aspergillus</italic>
							y <italic>Amorphoteca</italic>. A. Evaluación de la eficiencia
							biodegradativa el día dos (85 ± 2 % de ácidos grasos libres
							aproximadamente). B. Evaluación de biodegradación de RAUC durante el día
							cuatro (44 ± 2 % de ácidos grasos libres aproximadamente). C.
							Biodegradación completa al día ocho, mediante combinación de hongos
							lipolíticos. (8 ± 2 % de ácidos grasos libres aproximadamente)</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0188-4999-rica-36-02-351-gf2.png"/>
				</fig>
			</p>
			<p>Encontramos diferencias significativas entre las temperaturas de los ensayos de
				biodegradación de RAUC, teniendo mayor eficiencia a 27 ºC (t<sub>322.87</sub> =
				15.047, p &lt; 0.001). No encontramos diferencia significativa entre cada ensayo de
				biodegradación, tanto en los ensayos individuales (p = 0.229) como en los ensayos de
				actividad lipolítica combinada (p = 0.109). Como resultado de la eficiencia de
				biodegradación de RAUC, no se encontraron diferencias significativas en la prueba
				individual (p &gt; 0.750), variando de la interacción con dos y tres géneros
				[género1 vs. género2 (p = 0.027), género1 vs. género3 (p = 0.002), y género2 vs.
				género3: (p = 0.001)]. La combinación de tres géneros mejoró la eficiencia de
				biodegradación (p &lt; 0.001), comparable con la evaluación a los ocho días de los
				experimentos individuales (p = 0.012). Los niveles de actividad lipolítica entre
				géneros de hongos fueron significativos durante los primeros días del experimento (p
				&lt; 0.05) y a diferentes temperaturas (27 ºC y 30 ºC) (<xref ref-type="table"
					rid="t1">Cuadro I</xref>). </p>
			<p>
				<table-wrap id="t1">
					<label>CUADRO I</label>
					<caption>
						<title>BIODEGRADACIÓN DE RAUC A 27 ºC y 30 ºC. EVALUACIÓN DE ACTIVIDAD
							LIPOLÍTICA Y ÁCIDOS GRASOS LIBRES DURANTE LOS OCHO DÍAS DEL
							EXPERIMENTO.</title>
					</caption>
					<table frame="hsides" rules="groups">
						<colgroup>
							<col/>
							<col span="4"/>
							<col span="4"/>
						</colgroup>
						<tbody>
							<tr>
								<td align="justify" rowspan="2"> </td>
								<td align="center" colspan="4">Actividad lipolítica 27 ºC </td>
								<td align="center" colspan="4">Actividad lipolítica 30 ºC </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">3 días</td>
								<td align="center">5 días</td>
								<td align="center">8 días</td>
								<td align="center">p valor**</td>
								<td align="center">3 días</td>
								<td align="center">5 días</td>
								<td align="center">8 días</td>
								<td align="center">p valor<italic>**</italic></td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Penicillium</italic> (Género 1)</td>
								<td align="center">21 ± 1.11</td>
								<td align="center">55 ± 0.13</td>
								<td align="center">96 ± 1.25</td>
								<td align="center"><italic>&lt; 0.02</italic></td>
								<td align="center">18 ± 1.21</td>
								<td align="center">54 ± 2.73</td>
								<td align="center">93 ± 2.88</td>
								<td align="center"><italic>&lt; 0.002</italic></td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Aspergillus</italic> (Género 2)</td>
								<td align="center">33 ± 0.98</td>
								<td align="center">70 ± 0.89</td>
								<td align="center">98 ± 0.41</td>
								<td align="center"><italic>&lt;0.001</italic></td>
								<td align="center">22 ± 2.51</td>
								<td align="center">68 ± 1.23</td>
								<td align="center">97 ± 0.33</td>
								<td align="center"><italic>0.041</italic></td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify"><italic>Amorphoteca</italic> (Género 3)</td>
								<td align="center">19 ± 2.73</td>
								<td align="center">44 ± 1.02</td>
								<td align="center">95 ± 3.12</td>
								<td align="center"><italic>0.001</italic></td>
								<td align="center">18 ± 3.42</td>
								<td align="center">41 ± 2.44</td>
								<td align="center">95 ± 0.45</td>
								<td align="center"><italic>0.003</italic></td>
							</tr>
						</tbody>
					</table>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN1">
							<p>*Los valores señalados para cada género fúngico como porcentajes de
								actividad lipolítica son inversamente proporcionales al porcentaje
								de ácidos grasos libres en el contenedor (agua/RAUC). **Los
								p-valores evalúan la diferencia entre los días tres y ocho de cada
								género respecto al proceso de biodegradación.</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>La evaluación de actividad lipolítica combinada demostró que el uso de dos géneros y
				tres géneros de hongos, independientemente del genero fúngico, permitió una
				biodegradación promedio de 95.5 % de RAUC. En la <xref ref-type="fig" rid="f3"
					>figura 3</xref> se observan los niveles de actividad lipolítica entre los días
				de evaluación, mostrando resultados significativos en la evaluación de dos géneros y
				entre los tres géneros (ambos con p &lt; 0.05) a diferentes temperaturas de
				análisis, pero obteniéndose mejores resultados a 27 ºC (p = 0.045). Estos valores se
				normalizaron significativamente hacia el último día del experimento (p = 0.573).</p>
			<p>
				<fig id="f3">
					<label>Fig. 3</label>
					<caption>
						<title>Actividad lipolítica combinada de dos géneros y tres géneros de
							hongos a 27 ºC y 30 ºC. Promedio de biodegradación de los residuos de
							aceites usados de cocina (RAUC) 95.7 ± 1.3 % (rango: 94-98 %). Los
								<italic>p-</italic>valores evalúan la diferencia entre los días tres
							y ocho de cada género respecto al proceso de biodegradación. No se
							encontraron diferencias significativas entre los productos de
							biodegradación finales de 2 y 3 géneros (p valor = 0.120). Los valores
							señalados para cada especie fúngica como porcentajes de actividad
							lipolítica son inversamente proporcionales al porcentaje de ácidos
							grasos libres en el contenedor (agua/RAUC). Abreviaturas: Género 1:
								<italic>Penicillium</italic>; Género 2:
							<italic>Aspergillus</italic>.; Género 3:
							<italic>Amorphoteca</italic></title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0188-4999-rica-36-02-351-gf3.png"/>
				</fig>
			</p>
			<p>Encontramos diferencias significativas de descontaminación bacteriana en agua
				post-biodegradación y el estándar de turbidez (p &lt; 0.001), es decir la evaluación
				final de la mezcla presentó niveles por debajo del estándar de turbidez. Entonces,
				este análisis es una medida indirecta de contaminación del medio por turbidez. </p>
		</sec>
		<sec sec-type="discussion">
			<title>DISCUSIÓN</title>
			<p>La capacidad de biodegradación de RAUC en los tres géneros estudiados tuvo gran
				eficiencia in vitro luego de ocho días de incubación, teniendo un rendimiento
				comparable entre los experimentos de géneros combinados y los experimentos de
				géneros individuales, siendo más óptimos a 27 ºC. Asimismo, las aguas
				post-biodegradación mostraron baja turbidez por contaminación bacteriana durante los
				ensayos. </p>
			<p>Durante el tiempo en estudio, no se han hallado estudio sobre biodegradación de RAUC
				con hongos con características lipolíticas. Los RAUC contaminan las fuentes de agua
				para consumo de muchos pobladores, primordialmente de comunidades rurales-agrícolas,
				e impactan directamente en los recursos hidrobiológicos, los cuales también son
				parte del sustento directo de estas personas. Del mismo modo, los RAUC son
				producidos cada vez con mayor cuantía por los centros de comida rápida donde, y por
				normativas nacionales e internacionales, los aceites usados son cambiados cada cinco
				y/o siete horas posteriores al uso, consignando, importantes fuentes de
				contaminación del agua por RAUC (<xref ref-type="bibr" rid="B15">Mba et al.,
					2015</xref>). </p>
			<p>Nuestros hallazgos demostraron que todos los géneros fúngicos lipolíticos produjeron
				incrementos de concentración de ácidos grasos libres en medio líquido en diferentes
				niveles (<xref ref-type="table" rid="t1">Cuadro I</xref> y <xref ref-type="fig"
					rid="f2">Fig. 2</xref>), estas concentraciones fueron superiores al porcentaje
				mínimo reportado previamente (20 %) y a otros reportes en sustratos similares (<xref
					ref-type="bibr" rid="B27">Oso 1978</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B20"
					>Negedu et al. 2012</xref>). Estos ácidos libres fueron directamente
				proporcionales al grado de biodegradación de RAUC. </p>
			<p>Recientemente demostramos que los ácidos grasos contaminantes pueden unirse a las
				lipasas fúngicas (<xref ref-type="bibr" rid="B19">Moya-Salazar et al. 2019</xref>).
				Al igual que en reportes previos, nuestros resultados muestran alta capacidad
				biodegradativa de <italic>Aspergillus, Penicillium</italic> y
					<italic>Amorphoteca</italic> bajo las condiciones controladas del estudio (<xref
					ref-type="bibr" rid="B28">Otálora et al. 2000</xref>, <xref ref-type="bibr"
					rid="B30">Rodríguez 2011</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B20">Negedu et al.
					2012</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B35">Vertiz 2016</xref>). Si bien
				evidenciamos diferencias significativas intra e inter géneros, los resultados
				finales demostraron biodegradación de RAUC ≥ 94 %. Esto indica una alta capacidad de
				degradación de estos géneros fúngicos sobre los RAUC con niveles de actividad
				lipolítica gradual.</p>
			<p>La actividad incrementada de lipasas fúngicas se atribuye a la actividad de lipasas
				extracelulares que evidencian la oxidación de los triglicéridos (<xref
					ref-type="bibr" rid="B13">El Azzabi et al. 1981</xref>, <xref ref-type="bibr"
					rid="B22">Ogugua y Chukwuma 2011</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B24">Okwoute
					y Ijah 2014</xref>). Las diferencias de actividad lipolítica, y por
				consiguiente, biodegradación de RAUC, están atribuidas a la capacidad de producción
				de lipasas y a la especificidad de utilización de ácidos grasos libres por cada
				género fúngico. Esto explicaría lo sucedido en este estudio: cuando se utilizaron
				los tres géneros combinados se obtuvo mayor eficiencia en la biodegradación de RAUC. </p>
			<p>Como estudios previos demostraron, los géneros que permitieron óptimos resultados de
				biodegradación fueron, en este orden, <italic>Aspergillus, Penicillium</italic> y
					<italic>Amorphoteca</italic> (<xref ref-type="table" rid="t1">Cuadro I</xref>)
					(<xref ref-type="bibr" rid="B13">El Azzabi et al. 1981</xref>, <xref
					ref-type="bibr" rid="B28">Otálora et al. 2000</xref>, <xref ref-type="bibr"
					rid="B30">Rodríguez 2011</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B20">Negedu et al.
					2012</xref>).</p>
			<p>De la misma forma, el estudio in vitro permitió demostrar la capacidad de
				biodegradación de géneros fúngicos durante ochos días de evaluación bajo condiciones
				físicas controladas. Dada la naturaleza del estudio, no podemos aseverar que estas
				aguas post-biodegradación sean aptas para consumo el humano ya que difícilmente se
				podrían eliminar todos los contaminantes. Sin embargo, se podrían derivar sus usos
				de acuerdo con las necesidades de los usuarios (regadío, etc.) en función de su
				calidad. Cuando analizamos la turbidez de los productos finales de biodegradación
				encontramos diferencias significativas de contaminación por microrganismos (p &lt;
				0.001), es decir, si bien bajo nuestros protocolos de trabajo no se desarrollaron
				contaminantes bacterianos, sí hallamos otros contaminantes que pudieran afectar la
				calidad del agua post-biodegradación (<xref ref-type="fig" rid="f2">Fig. 2C</xref>).
				En ese sentido, proponemos otros posibles métodos de eliminación de ácidos grasos
				del contenedor líquido (agua/RAUC) asociado al proceso de bioremediacion fúngica,
				por ejemplo a través de la filtración o el uso de minerales que permitan incrementar
				el proceso de biodegradación presentado en este estudio (<xref ref-type="bibr"
					rid="B14">El-Masry et al. 2004</xref>). </p>
			<p>Sin embargo, la alta producción de lipasas extracelulares podría ocasionar la
				inhibición de cepas fúngicas, ya que al generarse progresivamente este efecto en el
				medio acuoso quedaría probablemente exento de hongos. Esta factible situación
				permitiría usos más seguros del agua post-lipolización fúngica en diversas áreas de
				la industria y a contrario sensu la inhibición ocasionaría disminución en la
				cantidad disponible mínima que pueda cumplir la función biorremediadora de RAUC.
				Dado que este estudio centró su análisis en la capacidad y eficiencia biodegradativa
				de RAUC por hongos, no es posible considerar estas variables dentro del análisis
				final de los resultados. Se necesitan futuras investigaciones que evalúen estas
				características.</p>
			<p>Véase ahora la evolución de los conocimientos relacionados con la biodegradación de
				aceites. Aunque, con anterioridad, se han descrito, evaluado y comparado
				microrganismos con capacidad de biodegradación (<xref ref-type="bibr" rid="B31"
					>Shirkie y Ching 2000</xref>), no se han desarrollado procesos circunspectos
				sobre biorremediación de RAUC, y como se ha mencionado, sí se han desarrollado han
				presentado dificultades para su empleo cosmopolita en las comunidades.</p>
			<p>Nuestros resultados demuestran la efectividad de microorganismos solos o combinados.
				Sin embargo, este estudio in vitro requiere posteriores evaluaciones que permitan
				estudiar otros factores como las variables del crecimiento fúngico de las cepas
				utilizadas en los puntos de cultivo intermedios o finales. También, debe de
				evaluarse la saturación de oxígeno en cada punto de evaluación de los experimentos,
				para saber de buena tinta si después de la lipólisis se permite el paso de oxígeno a
				través de la capa de grasa. Asimismo, se debe ejercer control en la producción y
				evaluación externa de conidios, y determinar la producción de micotoxinas para
				establecer su posible rol en la actividad lipolítica global. </p>
			<p>La contaminación del agua es un problema mundial trascendental que requiere una
				continua evaluación y revisión de las políticas de recursos hídricos en todos los
				niveles. Los problemas de contaminación del agua se dan tanto más en países de altos
				ingresos como en países de bajos ingresos donde se generan problemas ambientales y
				de salud (<xref ref-type="bibr" rid="B4">Avcievala 1991</xref>, <xref
					ref-type="bibr" rid="B6">Bereciartua 2005</xref>).</p>
			<p>Hemos descrito un método sencillo que proporciona resultados de remediación natural
				(biodegradación), método que espera contribuir en la descontaminación
				(biorremediación) del agua (alcantarillado, ríos, riachuelos, etc.) mediante el uso
				de hongos con actividad lipolítica.</p>
		</sec>
		<sec sec-type="conclusions">
			<title>CONCLUSIÓN</title>
			<p>Este estudio demostró la capacidad y eficiencia de biodegradación in vitro de
				residuos de aceites usados de cocina por los tres géneros fúngicos utilizados
					(<italic>Penicilium</italic>, <italic>Aspergillus</italic> y
					<italic>Amorphoteca</italic>) luego de ocho días de incubación a 27 ºC. Ya sea
				en combinación de géneros o de manera aislada, estos hongos permitieron obtener agua
				con bajo nivel de turbidez por contaminación bacteriana. </p>
		</sec>
	</body>
	<back>
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					<source>Especies fúngicas biodegradadores de residuos de aceite de palma
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					<publisher-name>Facultad de Ciencias y Filosofía, Maestría en Microbiología,
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