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				<journal-title>Revista internacional de contaminación ambiental</journal-title>
				<abbrev-journal-title abbrev-type="publisher">Rev. Int. Contam.
					Ambient</abbrev-journal-title>
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				<publisher-name>Universidad Nacional Autónoma de México, Centro de Ciencias de la
					Atmósfera</publisher-name>
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			<article-id pub-id-type="doi">10.20937/RICA.53543</article-id>
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					<subject>Artículos</subject>
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			<title-group>
				<article-title>CRECIMIENTO DE <italic><italic>Fraxinus uhdei</italic> INOCULADO CON
						DOS CEPAS ECTOMICORRÍZICAS EN DOS SUSTRATOS, UNO CONTAMINADO CON
						MERCURIO</italic></article-title>
				<trans-title-group xml:lang="en">
					<trans-title>GROWTH OF <italic><italic>Fraxinus uhdei</italic> INOCULATED WITH
							TWO ECTOMICORRHYZIC STRAINS IN TWO SUBSTRATES, ONE POLLUTED WITH
							MERCURY</italic></trans-title>
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				<label>1</label>
				<institution content-type="original">Laboratorio de Contaminación y Salud Ambiental,
					Escuela Nacional de Estudios Superiores, ENES-Morelia, UNAM, Antigua Carretera a
					Pátzcuaro 8701, Ex-hacienda de San José de la Huerta, 58190 Morelia, Michoacán,
					México</institution>
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				<institution content-type="original">Laboratorio de Restauración Ambiental,
					Instituto de Investigaciones en Ecosistemas y Sustentabilidad, UNAM. Antigua
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					Michoacán, México</institution>
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				<institution content-type="original">Laboratorio de Restauración Ambiental,
					Instituto de Investigaciones en Ecosistemas y Sustentabilidad, UNAM. Antigua
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				<email>rlindig@iies.unam.mx</email>
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					<label>*</label>Autor para correspondencia: <email>rlindig@iies.unam.mx</email>
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				<year>2021</year>
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					<license-p>Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia
						Creative Commons</license-p>
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			<abstract>
				<title>RESUMEN</title>
				<p>La minería es una actividad industrial importante en muchos países, a pesar de lo
					cual los daños que causa son cada día más graves por su impacto ecológico. Lo
					anterior se debe, entre otras cosas, a los efectos de los residuos de metales
					pesados originados por los diversos métodos de extracción de minerales. Para
					reducir el impacto ambiental de esta actividad es importante estudiar relaciones
					simbióticas entre especies que permitan favorecer la supervivencia y el
					desarrollo de plantas en sitios degradados por la minería, y, de esta manera,
					mejorar su estructura al incorporar materia orgánica y reiniciar ciclos
					biogeoquímicos. Por lo tanto, se llevó a cabo un ensayo en mesocosmos para
					documentar la respuesta de <italic>Fraxinus uhdei</italic> (Wenz.) Lingelsh
					(fresno) inoculado con hongos ectomicorrízicos en dos sustratos diferentes: uno
					proveniente de un jal del municipio de Tlalpujahua de Rayón, Michoacán, sitio
					donde se desarrolló actividad minera; y otro orgánico. El experimento consistió
					en someter a individuos de <italic>F. uhdei</italic> a inoculación con
						<italic>Laccaria laccata</italic> y <italic>Lactarius deliciosus</italic>
					con dos dosis: 2.5 × 10<sup>5</sup> y 1 × 10<sup>6</sup> de esporas por planta).
					Los hongos ectomicorrízicos favorecieron el desarrollo y supervivencia de las
					plantas en ambos sustratos. El desempeño de las plantas fue mayor en el sustrato
					orgánico, ya que la altura, cobertura y peso fresco de las plantas inoculadas
					con <italic>Laccaria laccata</italic> fueron mayores (66 cm, 1186 cm<sup>2</sup>
					y 92 g, respectivamente) respecto a los otros tratamientos. La concentración de
					mercurio fue menor para las plantas inoculadas con <italic>Lactarius
						deliciosus</italic> (F<sub>(1, 28)</sub> = 12.22; p = 0.002) respecto a las
					inoculadas con <italic>Laccaria laccata.</italic> Este estudio indica que la
					inoculación favorece el desarrollo de plantas de fresno tanto en un sustrato
					orgánico como en un sustrato derivado de la actividad minera; asimismo, exhibe
					el potencial de la especie arbórea para la recuperación de sustratos
					mineros.</p>
			</abstract>
			<trans-abstract xml:lang="en">
				<title>ABSTRACT</title>
				<p>Mining is one of the most important industrial activities in many countries;
					however, environmental damages associated with this activity are severely
					detrimental. These effects are a consequence, among other things, of heavy
					metals originated by mineral extraction methods. To reduce the environmental
					impact of this activity, it is important to develop remediation technologies,
					including the symbiotic relationships between species that allow high survival
					and proper development of plants. Therefore, a mesocosm assay was carried out to
					document the response of <italic>Fraxinus uhdei</italic> (Wenz.) Lingelsh (ash)
					inoculated with ectomycorrhizal fungi on two different substrates: a
					mine-derived substrate from the municipality of Tlalpujahua de Rayón, Michoacán,
					and an organic one. The study consisted in the inoculation of <italic>F.
						uhdei</italic> plants with two fungi strains, <italic>Laccaria
						laccata</italic> and <italic>Lactarius deliciosus</italic>, on two doses:
					2.5 × 10<sup>5</sup> and 1 × 10<sup>6</sup> spores per plant. Ectomycorrhizal
					fungi favored the development and survival in both substrates; however, the
					performance of the plants was higher with the organic substrate. Height, cover,
					and fresh weight of plants inoculated with <italic>Laccaria laccata</italic>
					were the highest (66 cm, 1186 cm<sup>2</sup>, and 92 g, respectively). Mercury
					was lower in plants inoculated with <italic>Lactarius deliciosus</italic>
						(F<sub>(1, 28)</sub> = 12.22; P = 0.002) with respect to those inoculated
					with <italic>Laccaria laccata</italic>. Our results indicate that inoculation
					has a positive effect on ash growth both in an organic rich substrate and a
					substrate produced by mining activities, also the potential use of the tree
					species for remediation of mining dumps.</p>
			</trans-abstract>
			<kwd-group xml:lang="es">
				<title>Palabras clave:</title>
				<kwd>minería</kwd>
				<kwd>asociación simbiótica</kwd>
				<kwd>contaminación</kwd>
				<kwd>metales pesados</kwd>
			</kwd-group>
			<kwd-group xml:lang="en">
				<title>Key words:</title>
				<kwd>mining</kwd>
				<kwd>symbiotic association</kwd>
				<kwd>pollution</kwd>
				<kwd>heavy metals</kwd>
			</kwd-group>
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		</article-meta>
	</front>
	<body>
		<sec sec-type="intro">
			<title>INTRODUCCIÓN</title>
			<p>Una de las actividades económicas más importantes en México y otros países es la
				minería. Esta actividad ha sido fundamental a lo largo de la historia, ya que ha
				determinado la dinámica económica y social de los sitios en que ha prosperado (<xref
					ref-type="bibr" rid="B25">Muñoz 1986</xref>). Desde la época colonial hasta
				finales del siglo XIX, la producción minera en México tuvo un desarrollo muy
				importante que favoreció las actividades económicas y, por ende, sociales del país.
				Además, provocó diversos impactos ambientales, paisajísticos y de salud pública,
				cuyos efectos continúan manifestándose hasta nuestros días (<xref ref-type="bibr"
					rid="B34">Uribe 2002</xref>). </p>
			<p>A partir de 2011, la producción de plata y oro recobró su auge en México, llegando a
				representar el 56 % de la producción metalúrgica nacional con una alta inversión
				extranjera. Además, para 2017 contribuyó con el 4 % del PIB nacional (<xref
					ref-type="bibr" rid="B18">Góngora 2013</xref>), lo cual muestra la importancia
				de entender los impactos ambientales que se relacionan con esta actividad y la forma
				de mitigarlos. </p>
			<p>Específicamente, en el municipio de Tlalpujahua de Rayón, localizado entre las
				coordenadas 19º 41´-19º 53´ de latitud norte y 100º 08´-100º 18´ de longitud oeste
				en el estado de Michoacán, se llevó a cabo una fuerte explotación minera durante el
				período colonial tardío y hasta inicios del siglo XX (<xref ref-type="bibr" rid="B7"
					>Corona et al. 2010</xref>). Como consecuencia de esta actividad cambiaron tanto
				el paisaje, debido a la deforestación y erosión, como la disponibilidad de elementos
				químicos en el suelo a causa de los residuos mineros, lixiviación y formación de
				nuevos minerales. Por ello el municipio presenta afectaciones ambientales, entre
				ellas la presencia de depósitos de desechos mineros conocidos como jales. Éstos
				tienen impactos en la población y la dinámica del ecosistema, principalmente por la
				contaminación con metales pesados que los acompañan, además de su propia estructura,
				la cual dificulta el desarrollo de vegetación (<xref ref-type="bibr" rid="B8">Corona
					et al. 2017</xref>). </p>
			<p>Durante aproximadamente 350 años se utilizó para la extracción de oro y plata el
				método de amalgamación con mercurio o método de patio, que consiste en mezclar en un
				patio mercurio metálico (Hg), sal, cobre, hierro, agua y los minerales triturados
				para dejarlos reposar días o semanas. Posteriormente se separa la amalgama de oro,
				plata y mercurio mediante un proceso de lavado, evaporación y calentamiento que
				volatiliza y recupera parcialmente este último metal. Así fue como el mercurio se
				incorporó a los suelos del municipio. Además, las arenas y limos obtenidos de la
				trituración quedaron compactados en los sitios de producción, creando condiciones no
				aptas para el desarrollo de la vegetación (<xref ref-type="bibr" rid="B22">Lacerda
					1997</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B34">Uribe 2002</xref>, <xref
					ref-type="bibr" rid="B7">Corona et al. 2010</xref>). </p>
			<p>Uno de los retos para la rehabilitación de minas es la selección de especies para la
				revegetación (<xref ref-type="bibr" rid="B31">Singh et al. 2004</xref>), proceso
				fundamental para mejorar las condiciones del sustrato y facilitar el establecimiento
				de especies nativas a mediano y largo plazo (<xref ref-type="bibr" rid="B33">Tucker
					y Ungar 2002</xref>). En algunas ocasiones es necesario usar enmiendas o
				aditivos para el sustrato de tal manera que se facilite el establecimiento de las
				plantas (<xref ref-type="bibr" rid="B4">Brown et al. 2007</xref>). Otros estudios se
				han centrado en la identificación de barreras para el establecimiento de la
				vegetación; de ellos se desprende la dificultad de recrear las condiciones idóneas
				para el sitio a restaurar. Esto es consecuencia de que los terrenos degradados por
				actividad minera son muy susceptibles a presentar valores de pH alejados de la
				neutralidad y bajas concentraciones de elementos como nitrógeno (N) y fósforo (P),
				además de escasez de materia orgánica (<xref ref-type="bibr" rid="B20">Jim
					2001</xref>). </p>
			<p>Un aspecto menos estudiado es el efecto de las relaciones simbióticas como la
				micorrización para mejorar el crecimiento y desarrollo de las plantas destinadas a
				la rehabilitación de sustratos mineros. En particular, la micorrización puede
				facilitar el desarrollo de plantas en sustratos con baja disponibilidad de
				nutrientes, además de facilitar la absorción de agua mediante la formación de
				agregados del suelo, creando un suelo poroso y permeable (<xref ref-type="bibr"
					rid="B30">Royo et al. 1998</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B10">Crane et al.
					2012</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B28">Pereira et al. 2014</xref>).</p>
			<p>Por ello en este estudio se analizó la relación simbiótica entre los hongos
				ectomicorrízicos (HEM) <italic>Lactarius deliciosus</italic> y <italic>Laccaria
					laccata</italic> con <italic>Fraxinus uhdei</italic>, especie arbórea nativa de
				México (fresno). Esta especie tiene importancia económica y es tolerante a sustratos
				pobres (<xref ref-type="bibr" rid="B6">Conabio 2017</xref>), por lo que probar su
				utilidad para fitorremediar suelos contaminados es una opción atractiva.</p>
			<p>El objetivo central de esta investigación fue analizar la respuesta de
					<italic>Fraxinus uhdei</italic> a la presencia de mercurio (Hg) en dos sustratos
				contrastantes y con dos especies diferentes de HEM, a través de un experimento en
				mesocosmos. Se planteó la hipótesis de que la inoculación del fresno con hongos
				ectomicorrízicos mejora el desarrollo, supervivencia y resistencia de esta especie
				cuando se desarrolla en sustratos contaminados con Hg. Esta hipótesis está
				sustentada en que se ha encontrado que diversas especies de ectomicorrizas son
				capaces de almacenar metales pesados depositados en suelos contaminados y que, al
				hacerlo, reducen el daño que estos contaminantes causan a las plantas (<xref
					ref-type="bibr" rid="B3">Brown y Wilkins 1985</xref>, <xref ref-type="bibr"
					rid="B12">Dermibas 2001</xref>). </p>
		</sec>
		<sec sec-type="materials|methods">
			<title>MATERIALES Y MÉTODOS</title>
			<sec>
				<title>Material vegetal</title>
				<p>Se propagaron 300 plantas de fresno en condiciones de casa de sombra (20 % de
					reducción de la intensidad lumínica), sembradas en contenedores de plástico (240
						cm<sup>3</sup>), utilizando como sustrato agrolita-turba 2:1 (v:v),
					esterilizada en autoclave por 30 min a 121 ºC y 15 libras por pulgada cuadrada
					(PSI, por sus siglas en inglés). A las siete semanas de crecimiento, se
					seleccionaron al azar 200 plantas y fueron inoculadas a una profundidad de 3 cm
					cerca de la raíz con dos especies de HEM, <italic>Laccaria laccata</italic> y
						<italic>Lactarius deliciosus,</italic> provenientes de zonas boscosas de la
					localidad de Yoricostio, Tacámbaro, Michoacán. </p>
			</sec>
			<sec>
				<title>Preparación de inóculo e inoculación</title>
				<p>Los inoculantes se prepararon como se describe a continuación. Después de la
					identificación de las especies micorrízicas del material recolectado, los
					cuerpos fructíferos fueron deshidratados y molidos (el tamaño de las partículas
					se homogeneizó con un tamiz de 0.50 mm). Se determinó la concentración de
					esporas viables en el inoculante con una cámara de Neubauer, previamente
					tiñéndolas con sales de tetrazolio (MTT). Este reactivo permite evaluar la
					actividad metabólica celular, ya que un color azul indica esporas
					metabólicamente activas (<xref ref-type="bibr" rid="B1">Báez-Pérez et al.
						2015</xref>). El inóculo se diluyó en turba micronizada para su posterior
					aplicación, de tal forma que por cada gramo de turba micronizada hubiera al
					menos 1 × 10<sup>6</sup> esporas del hongo micorrízico. Los tratamientos de
					inoculación fueron de 2.5 × 10<sup>5</sup> y 1 × 10<sup>6</sup> esporas/planta.
					Estudios previos determinaron que estas dosis son apropiadas para lograr la
					micorrización de las plantas de fresno (<xref ref-type="bibr" rid="B2"
						>Báez-Pérez et al. 2017</xref>). La micorrización se evaluó con la técnica
					de azul de tripano a una concentración de 0.05 % por 48 h, descrita por <xref
						ref-type="bibr" rid="B1">Báez-Pérez et al. (2015)</xref>. </p>
			</sec>
			<sec>
				<title>Establecimiento del experimento</title>
				<p>Se realizó una selección completamente al azar de los árboles propagados e
					inoculados de fresno para ser distribuidos entre los dos sustratos, el del jal
					extraído de Tlalpujahua de Rayón, localizado al noroeste del estado de
					Michoacán, y el orgánico que se elaboró mezclando materia orgánica (corteza de
					pino molida) con suelo de una parcela agrícola obtenido de la misma localidad.
					El experimento consistió en un diseño de dos factores. El primero, la
					inoculación con tres niveles (<italic>Laccaria laccata, Lactarius
						deliciosus</italic> y testigo sin inocular), y el segundo, el sustrato con
					dos niveles, en un diseño ortogonal con 15 plantas por cada uno de los seis
					tratamientos resultantes de la combinación de factores. </p>
				<p>El experimento se llevó a cabo en el Laboratorio de Restauración Ambiental del
					Instituto de Investigación en Ecosistemas (IIES), en un sistema de mesocosmos,
					es decir, en pequeño, en el cual se intentó simular las funciones de un
					ecosistema natural (<xref ref-type="bibr" rid="B19">González 2012</xref>).</p>
			</sec>
			<sec>
				<title>Monitoreo del experimento y análisis de mercurio</title>
				<p>Las plantas fueron monitoreadas mensualmente en alturas y trimestralmente en
					cobertura y diámetro a la altura de la base (DAB). Se registraron dos diámetros
					de la copa de las plantas y se calculó la cobertura por medio de la siguiente
					fórmula (<xref ref-type="bibr" rid="B29">Popma et al. 1988</xref>):</p>
				<p>
					<disp-formula id="e1">
						<mml:math id="m1" display="block">
							<mml:mn>0.25</mml:mn>
							<mml:mi mathvariant="normal"> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi mathvariant="normal"> </mml:mi>
							<mml:mi mathvariant="normal">D</mml:mi>
							<mml:mn>1</mml:mn>
							<mml:mi mathvariant="normal"> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi mathvariant="normal"> </mml:mi>
							<mml:mi mathvariant="normal">D</mml:mi>
							<mml:mn>2</mml:mn>
							<mml:mi mathvariant="normal"> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi mathvariant="normal"> </mml:mi>
							<mml:mi mathvariant="normal">π</mml:mi>
						</mml:math>
						<label>(1)</label>
					</disp-formula>
				</p>
				<p>Asimismo, se calculó el error estándar (<mml:math id="m6" display="block">
						<mml:mrow>
							<mml:mrow>
								<mml:mi>σ</mml:mi>
							</mml:mrow>
							<mml:mo>/</mml:mo>
							<mml:mrow>
								<mml:msqrt>
									<mml:mi>n</mml:mi>
								</mml:msqrt>
							</mml:mrow>
						</mml:mrow>
					</mml:math>) para cada promedio de las variables de crecimiento. </p>
				<p>La determinación de contenido de Hg en los tejidos vegetales se hizo con
					espectrometría de emisión óptica (ICP-OES). Las muestras se prepararon con el
					método de digestión ácida. Para ello, las hojas de fresno de cada tratamiento se
					sometieron a un proceso de secado en horno por 48 h a una temperatura constante
					de 65º C. Las muestras se pulverizaron en un mortero de cerámica para
					homogeneizarlas. Luego se utilizaron 0.4 g de muestra para la digestión con 5 mL
					de ácido nítrico (HNO<sub>3</sub>) ultrapuro (60 %) y se calentaron en horno de
					microondas por 30 min. Al terminó de dicho procedimiento la muestra se aforó a
					25 mL y por último se colocó en tubos de lectura. Los procedimientos de control
					de calidad (QC, por sus siglas en inglés) y de confiabilidad (QA) se llevaron a
					cabo usando muestras que incluyeron calibración externa y se verificaron cada 20
					mediciones con alícuotas del blanco. Para verificar la precisión, alícuotas de
					un material de referencia certificado (Crescent Chemical, Single-Element
					Standard en una matriz de HNO<sub>3</sub> al 2 %) fueron sometidas al mismo
					procedimiento que el resto de las muestras. El límite de detección obtenido
					(LOD, por sus siglas en inglés) se calculó con la suma de las mediciones de los
					blancos y tres veces el valor de la desviación estándar. Para las muestras
					blanco el valor fue de 0.03 ppm y para las muestras de digestión de 0.90 ppm.
					Los valores de recuperación se determinaron analizando muestras del blanco con
					concentraciones conocidas de Hg (0.05, 0.1, 0.5 y 1.0 ppm). Para cada
					concentración se realizaron 10 repeticiones. La media de los valores de estas
					repeticiones se usó para calcular la recuperación de acuerdo con la siguiente
					ecuación (<xref ref-type="bibr" rid="B14">Eurachem Working Group 1998</xref>): </p>
				<p>
					<disp-formula id="e2">
						<mml:math id="m2" display="block">
							<mml:mi>R</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mi>u</mml:mi>
							<mml:mi>p</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>ó</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>(</mml:mo>
							<mml:mi>%</mml:mi>
							<mml:mo>)</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>=</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>(</mml:mo>
							<mml:mo>[</mml:mo>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mn>1</mml:mn>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>-</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mn>2</mml:mn>
							<mml:mo>]</mml:mo>
							<mml:mo>/</mml:mo>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mn>3</mml:mn>
							<mml:mo>)</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mn>100</mml:mn>
						</mml:math>
						<label>(2)</label>
					</disp-formula>
				</p>
				<p>donde cl es la concentración de Hg en la muestra de concentración conocida, c2 es
					la concentración de Hg en la muestra de la matriz del blanco y c3 es la
					concentración adicionada de Hg.</p>
				<p>Los valores de recuperación de Hg para las concentraciones de 0.05, 0.1, 0.5 y
					1.0 ppm variaron de 90 a 99 %, que es un rango aceptable para este elemento
						(<xref ref-type="bibr" rid="B35">Yogesh et al. 2015</xref>).</p>
				<p>Los detalles de las condiciones de operación instrumentales se presentan en el
						<xref ref-type="table" rid="t1">cuadro I</xref>. Las curvas de calibración
					se obtuvieron con estándares de calibración preparados en el mismo medio ácido
					que las muestras. A pesar de la complejidad de la matriz analizada, no fue
					necesaria una calibración de adición estándar. La calibración se verificó cada
					20 mediciones y la precisión de la técnica analítica se determinó sometiendo
					alícuotas de material de referencia certificado (Crescent Chemical, Single
					Element Standard en una matriz de HNO<sub>3</sub> al 2 %) al mismo tratamiento
					que las muestras analizadas.</p>
				<p>
					<table-wrap id="t1">
						<label>CUADRO I</label>
						<caption>
							<title>PARÁMETROS DE OPERACIÓN DEL EQUIPO DE ESPECTROMETRÍA DE EMISIÓN
								ÓPTICA (ICP-OES)</title>
						</caption>
						<table frame="hsides" rules="groups">
							<colgroup>
								<col/>
								<col/>
							</colgroup>
							<tbody>
								<tr>
									<td align="justify">Parámetros del método</td>
									<td align="center"> </td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Potencia del generador de Radio frecuencia
										(kW)</td>
									<td align="center">1</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Flujo de plasma (L/min)</td>
									<td align="center">12.8</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Flujo auxiliar (L/min)</td>
									<td align="center">0</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Presión del nebulizador (kPa)</td>
									<td align="center">3.4</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Tiempo de toma de muestras (s)</td>
									<td align="center">30</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Tiempo de enjuague (s)</td>
									<td align="center">40</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Velocidad de la bomba (rpm)</td>
									<td align="center">15</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Tiempo de replicado (s)</td>
									<td align="center">15</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Tiempo de estabilizado (s)</td>
									<td align="center">20</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Réplicas</td>
									<td align="center">3</td>
								</tr>
								<tr>
									<td align="justify">Longitud de onda Hg (nm)</td>
									<td align="center">253.652</td>
								</tr>
							</tbody>
						</table>
					</table-wrap>
				</p>
				<p>El grado de estrés de las plantas se estimó por medio del contenido de clorofila.
					Una hoja de cada individuo se tomó de la rama dominante, en la tercera
					ramificación a partir del ápice, para asegurar que fueran hojas maduras. Las
					hojas se dispusieron en tubos de ensaye añadiéndoles 10 mL de alcohol absoluto
					grado analítico y se colocaron tapadas en un recipiente cubierto con aluminio
					para no someterlas a la luz. Las muestras se dejaron reposar durante dos días a
					temperatura ambiente, para posteriormente aforarlas a 10 mL. Las muestras con la
					clorofila extraída se leyeron en un espectrofotómetro Genesys 20 (Thermo
					Scientific) a 664 y 649 nm. Las hojas se dejaron reposar para lograr la
					evaporación del alcohol y se pesaron en tres ocasiones o hasta lograr un peso
					constante. Para obtener los valores de clorofila a, b y su proporción se
					aplicaron las siguientes formulas desarrolladas por <xref ref-type="bibr"
						rid="B23">Lichtenthaler (1987)</xref>:</p>
				<p>
					<disp-formula id="e3">
						<mml:math id="m3" display="block">
							<mml:mi>C</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>=</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>(</mml:mo>
							<mml:mi>v</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>b</mml:mi>
							<mml:mi>t</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>d</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>v</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>d</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi>b</mml:mi>
							<mml:mi>s</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi>b</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>d</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mn>649</mml:mn>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi>m</mml:mi>
							<mml:mo>)</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mn>22.24</mml:mn>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>(</mml:mo>
							<mml:mi>p</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>s</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>d</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>h</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>j</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>g</mml:mi>
							<mml:mo>)</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mn>1000</mml:mn>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>(</mml:mo>
							<mml:mn>3</mml:mn>
							<mml:mo>)</mml:mo>
						</mml:math>
						<label>(3)</label>
					</disp-formula>
				</p>
				<p>
					<disp-formula id="e4">
						<mml:math id="m4" display="block">
							<mml:mi>C</mml:mi>
							<mml:mi>b</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>=</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>(</mml:mo>
							<mml:mi>v</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>b</mml:mi>
							<mml:mi>t</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>d</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>v</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>d</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi>b</mml:mi>
							<mml:mi>s</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi>b</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>d</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mn>664</mml:mn>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi>m</mml:mi>
							<mml:mo>)</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mn>5.24</mml:mn>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>(</mml:mo>
							<mml:mi>p</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>s</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>d</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>h</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>j</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>g</mml:mi>
							<mml:mo>)</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>×</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mn>1000</mml:mn>
						</mml:math>
						<label>(4)</label>
					</disp-formula>
				</p>
				<p>
					<disp-formula id="e5">
						<mml:math id="m5" display="block">
							<mml:mi>P</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>p</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>ó</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mo>/</mml:mo>
							<mml:mi>b</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mo>=</mml:mo>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>v</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>b</mml:mi>
							<mml:mi>t</mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>d</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>e</mml:mi>
							<mml:mi>n</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>f</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mo>/</mml:mo>
							<mml:mi>c</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>r</mml:mi>
							<mml:mi>o</mml:mi>
							<mml:mi>f</mml:mi>
							<mml:mi>i</mml:mi>
							<mml:mi>l</mml:mi>
							<mml:mi>a</mml:mi>
							<mml:mi> </mml:mi>
							<mml:mi>b</mml:mi>
						</mml:math>
						<label>(5)</label>
					</disp-formula>
				</p>
				<p>Las plantas se cosecharon a los 11 meses de iniciado el ensayo para determinación
					del peso fresco y seco (secado en estufa a 60 ºC por 48 h) de la parte
					aérea.</p>
				<p>El sistema radical se examinó al microscopio debido a que las ectomicorrizas
					hacen simbiosis con las raíces de las plantas y éstas experimentan una
					modificación morfológica. Las raíces seleccionadas al azar se colocaron en una
					caja de Petri y cuales se tiñeron con azul de tripano al 0.05 % por 48 h. Antes
					de ser observadas al microscopio se les retiró el exceso de colorante con agua
					destilada, quedando teñidos tanto el manto como el micelio externo de los hongos
					asociados a los segmentos finos de las raíces de fresno (<xref ref-type="bibr"
						rid="B1">Báez-Pérez et al. 2015</xref>).</p>
			</sec>
			<sec>
				<title>Análisis estadístico de los datos</title>
				<p>Se realizaron análisis estadísticos a fin de determinar las diferencias entre
					tratamientos por medio de análisis de varianza factorial. Si las interacciones o
					el efecto de algún factor no fueron significativos se procedió a la
					simplificación del modelo siguiendo el procedimiento sugerido por <xref
						ref-type="bibr" rid="B11">Crawley (2007)</xref>. Las comparaciones múltiples
					de medias se llevaron a cabo con la prueba de Tukey (p &lt; 0.05). </p>
				<p>El análisis estadístico para clorofila y contenido de Hg en los tejidos se llevó
					a cabo con un análisis de varianza (ANDEVA) de dos factores. Los análisis se
					llevaron a cabo utilizando los paquetes estadísticos S-PLUS 2000, JMP 6.0.0 y R
					3.4.3. </p>
			</sec>
		</sec>
		<sec sec-type="results">
			<title>RESULTADOS</title>
			<p>La inoculación de las plantas de fresno con <italic>Laccaria laccata</italic> o
					<italic>Lactarius deliciosus</italic> fue efectiva, ya que se observaron
				estructuras propias de los HEM como micelio externo septado y la red de Hartig
				después de la tinción con azul de tripano (<xref ref-type="fig" rid="f1">Fig.
					1</xref>).</p>
			<p>
				<fig id="f1">
					<label>Fig. 1</label>
					<caption>
						<title>Imágenes de las estructuras de hongos micorrízicos en asociación con
								<italic>Fraxinus uhdei</italic>, en (a) células corticales cubiertas
							por la red de Hartig y (b) micelio externo de la raíz de
								<italic>Fraxinus uhdei</italic></title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0188-4999-rica-36-02-455-gf1.png"/>
				</fig>
			</p>
			<p>En las <xref ref-type="fig" rid="f2">figuras 2</xref> y <xref ref-type="fig" rid="f3"
					>3</xref> se presentan las respuestas a lo largo del tiempo en altura, cobertura
				y DAB, de las plantas de fresno inoculadas con <italic>Laccaria laccata</italic> y
					<italic>Lactarius deliciosus</italic>, respectivamente. En el <xref
					ref-type="table" rid="t2">cuadro II</xref> se muestran los valores finales para
				cada tipo de inoculación. El efecto del sustrato fue evidente. La altura de las
				plantas inoculadas con <italic>Laccaria laccata</italic> fue de 50 cm ± 5.7, la
				mayor en el sustrato orgánico con dosis alta de inóculo. Las plantas mostraron el
				mayor DAB, 11 cm ± 0.8, con la dosis baja. Para las plantas inoculadas con
					<italic>Lactarius deliciosus</italic> las variables de crecimiento fueron
				mayores en el sustrato orgánico y con la dosis baja de inoculación, para todas las
				variables de crecimiento: altura (69 cm ± 4), cobertura (1094 cm<sup>2</sup> ±
				97.3), DAB (18 cm ± 1.2), peso fresco (83 cm ± 9.6) y peso seco (35cm ± 4.5). </p>
			<p>
				<fig id="f2">
					<label>Fig. 2</label>
					<caption>
						<title>Respuesta a lo largo del tiempo en altura, cobertura y diámetro a la
							altura de la base (DAB) de las plantas de <italic>Fraxinus
								uhdei</italic> inoculadas con <italic>Laccaria laccata</italic>, en
							los dos sustratos (o = orgánico; m = minero) y las dos dosis de
							inoculación (a = 1 × 10<sup>6</sup> esporas/planta; b = 2.5 ×
								10<sup>5</sup> esporas/planta)</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0188-4999-rica-36-02-455-gf2.png"/>
				</fig>
			</p>
			<p>
				<fig id="f3">
					<label>Fig. 3</label>
					<caption>
						<title>Respuesta a lo largo del tiempo en altura, cobertura y diámetro a la
							altura de la base (DAB) de las plantas de <italic>Fraxinus
								uhdei</italic> inoculadas con <italic>Lactarius deliciosus</italic>,
							en los dos sustratos (o = orgánico; m = minero) y las dos dosis de
							inoculación (a = 1 × 10<sup>6</sup> esporas/planta; b = 2.5 ×
								10<sup>5</sup> esporas/planta)</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0188-4999-rica-36-02-455-gf3.png"/>
				</fig>
			</p>
			<p>
				<table-wrap id="t2">
					<label>CUADRO II</label>
					<caption>
						<title>PROMEDIOS PARA LAS VARIABLES DE RESPUESTA CORRESPONDIENTES A LA
							ÚLTIMA FECHA DE MEDICIÓN DE LAS PLANTAS DE <italic>Fraxinus
								uhdei</italic> PARA TODOS LOS TRATAMIENTOS</title>
					</caption>
					<table frame="hsides" rules="groups">
						<colgroup>
							<col/>
							<col span="3"/>
							<col/>
							<col span="3"/>
						</colgroup>
						<tbody>
							<tr>
								<td align="justify" rowspan="2"> </td>
								<td align="center" colspan="3">Sustrato minero </td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center" colspan="3">Sustrato orgánico </td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">Testigo</td>
								<td align="center">Dosis baja</td>
								<td align="center">Dosis alta</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">Testigo</td>
								<td align="center">Dosis baja</td>
								<td align="center">Dosis alta</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center" colspan="8"><italic>Laccaria
									laccata</italic></td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Altura (cm)</td>
								<td align="center">33 ± 2.5b</td>
								<td align="center">42 <bold>±</bold> 2.6ab</td>
								<td align="center">36 <bold>±</bold> 1.8b</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">41 <bold>±</bold> 4.5ab</td>
								<td align="center">47 <bold>±</bold> 4.1a</td>
								<td align="center">50 <bold>±</bold> 5.7a</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Cobertura (cm<sup>2</sup>)</td>
								<td align="center">275 <bold>±</bold>4 1.2b</td>
								<td align="center">274 <bold>±</bold> 36.5b</td>
								<td align="center">221 <bold>±</bold> 26.2b</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">492 <bold>±</bold> 67a</td>
								<td align="center">722 <bold>±</bold> 121.4a</td>
								<td align="center">556 <bold>±</bold> 69.2a</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">DAB (mm)</td>
								<td align="center">7 <bold>±</bold>0 .7bc</td>
								<td align="center">7 <bold>±</bold> 0.3c</td>
								<td align="center">6 <bold>±</bold> 0.5c</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">9 <bold>±</bold> 1ab</td>
								<td align="center">11 <bold>±</bold> 0.8a</td>
								<td align="center">10 <bold>±</bold> 1a</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Peso fresco (g)</td>
								<td align="center">22 <bold>±</bold> 3.6b</td>
								<td align="center">25 <bold>±</bold> 2.4b</td>
								<td align="center">19 <bold>±</bold> 2.1b</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">75 <bold>±</bold> 9.5a</td>
								<td align="center">92 <bold>±</bold> 14.5a</td>
								<td align="center">90 <bold>±</bold> 14.4a</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Peso seco (g)</td>
								<td align="center">10 <bold>±</bold> 1.9b</td>
								<td align="center">11 <bold>±</bold> 1.1b</td>
								<td align="center">8 <bold>±</bold> 0.9b</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">29 <bold>±</bold> 3.7a</td>
								<td align="center">36 <bold>±</bold> 6.1a</td>
								<td align="center">36 <bold>±</bold> 6.1a</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center" colspan="8"><italic>Lactarius
									deliciosus</italic></td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Altura (cm)</td>
								<td align="center">38 <bold>±</bold> 2.8c</td>
								<td align="center">43 <bold>±</bold> 3.3bc</td>
								<td align="center">47 <bold>±</bold> 3.6bc</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">62 <bold>±</bold> 7 ab</td>
								<td align="center">69 <bold>±</bold> 4a</td>
								<td align="center">53 <bold>±</bold> 4.5abc</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Cobertura (cm<sup>2</sup>)</td>
								<td align="center">353 <bold>±</bold> 63.4c</td>
								<td align="center">326 <bold>±</bold> 46.2c</td>
								<td align="center">444 <bold>±</bold> 57.3bc</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">983 <bold>±</bold> 136.3a</td>
								<td align="center">1094 <bold>±</bold> 97.3a</td>
								<td align="center">853 <bold>±</bold> 102.3ab</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">DAB (mm)</td>
								<td align="center">11 <bold>±</bold> 0.8c</td>
								<td align="center">11 <bold>±</bold> 0.5bc</td>
								<td align="center">12 <bold>±</bold> 0.3bc</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">15 <bold>±</bold> 1.3ab</td>
								<td align="center">18 <bold>±</bold> 1.2a</td>
								<td align="center">15 <bold>±</bold> 1.4abc</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Peso fresco (g)</td>
								<td align="center">20 <bold>±</bold> 3b</td>
								<td align="center">25 <bold>±</bold> 2.4b</td>
								<td align="center">27 <bold>±</bold> 2.7b</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">73 <bold>±</bold> 15.5a</td>
								<td align="center">83 <bold>±</bold> 9.6a</td>
								<td align="center">61 <bold>±</bold> 10.3a</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify">Peso seco (g)</td>
								<td align="center">9 <bold>±</bold> 1.3c</td>
								<td align="center">9 <bold>±</bold> 1c</td>
								<td align="center">12 <bold>±</bold> 1.2bc</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">29 <bold>±</bold> 6a</td>
								<td align="center">35 <bold>±</bold> 4.5a</td>
								<td align="center">25 <bold>±</bold> 4.8ab</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="justify" rowspan="2">Contenido de clorofila (mg/g) en
									ambas especies*</td>
								<td align="center">Clorofila a</td>
								<td align="center">Clorofila b</td>
								<td align="center">Proporción a/b</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">Clorofila a</td>
								<td align="center">Clorofila b</td>
								<td align="center">Proporción a/b</td>
							</tr>
							<tr>
								<td align="center">0.07 <bold>±</bold> 0.005</td>
								<td align="center">0.04 <bold>±</bold> 0.003</td>
								<td align="center">2.13 <bold>±</bold> 0.2</td>
								<td align="center"> </td>
								<td align="center">0.096 <bold>±</bold> 0.006</td>
								<td align="center">0.045 <bold>±</bold> 0.003</td>
								<td align="center">2.087 <bold>±</bold> 0.06</td>
							</tr>
						</tbody>
					</table>
					<table-wrap-foot>
						<fn id="TFN1">
							<p>Los promedios no identificados con las mismas letras son
								significativamente diferentes (p ≤ 0.05) de acuerdo con la prueba
								múltiple de medias de Tukey</p>
						</fn>
						<fn id="TFN2">
							<p>*Los promedios obtenidos por la clorofila son valores calculados por
								sustrato sin tomar en cuenta la especie de hongo</p>
						</fn>
						<fn id="TFN3">
							<p>DAB: diámetro a la altura de la base</p>
						</fn>
					</table-wrap-foot>
				</table-wrap>
			</p>
			<p>En la <xref ref-type="fig" rid="f4">figura 4</xref> se observa el efecto de las
				micorrizas en la estructura de las raíces del fresno y cómo fue determinante la
				influencia del sustrato en el que se desarrollaron. Las primeras dos imágenes
				corresponden a la inoculación de <italic>Laccaria laccata</italic> en: (a) sustrato
				minero y (b) sustrato orgánico. Es notoria la influencia de la micorrización y el
				desarrollo del hongo en la raíz, principalmente por abundancia de pelos absorbentes.
				En el recuadro (c) se muestra el crecimiento de la raíz de las plantas inoculadas
				con <italic>Lactarius deliciosus</italic> en sustrato minero, pudiendo observarse la
				inhibición de crecimiento de micelio externo, mientras que en (d) se muestra la
				longitud de éste, evidenciando el efecto de la ectomicorriza. En el recuadro (e) es
				notable la repercusión de la falta de inoculación en el desarrollo de ciertas
				estructuras benéficas, principalmente la densidad de las raíces, que son las
				permiten la captación de agua y nutrientes. En la <xref ref-type="fig" rid="f5"
					>figura 5</xref> se puede apreciar la densidad de raíces en una planta no
				inoculada y en una inoculada.</p>
			<p>
				<fig id="f4">
					<label>Fig. 4</label>
					<caption>
						<title>(a) Raíces de <italic>Fraxinus uhdei</italic> crecidas en sustrato
							minero e inoculadas con la dosis alta de esporas de <italic>Laccaria
								laccata</italic>. (b) Raíces crecidas en sustrato orgánico
							inoculadas con la dosis alta de esporas de <italic>Laccaria
								laccata</italic>. (c) Raíces crecidas en sustrato minero inoculadas
							con la dosis baja de esporas de <italic>Lactarius deliciosus</italic>.
							(d) Micelio de <italic>Lactarius deliciosus</italic> y al centro raíces
							crecidas en sustrato minero sin inoculación</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0188-4999-rica-36-02-455-gf4.png"/>
				</fig>
			</p>
			<p>
				<fig id="f5">
					<label>Fig. 5</label>
					<caption>
						<title>Raíces de <italic>Fraxinus uhdei</italic> inoculadas (panel
							izquierdo) y sin inocular (panel derecho). En cuanto al contenido de
							clorofila-a, se presentaron diferencias estadísticamente significativas
							entre sustratos (F<sub>(1, 165)</sub> = 5.26; p = 0.023). En el sustrato
							orgánico el contenido de clorofila fue de 0.096 mg/g ± 0.006 y en el
							sustrato minero de 0.007 mg/g ± 0.005</title>
					</caption>
					<graphic xlink:href="0188-4999-rica-36-02-455-gf5.png"/>
				</fig>
			</p>
			<p>Finalmente, en cuanto al contenido de Hg en las plantas, se obtuvieron diferencias
				significativas entre sustratos cuando fueron inoculadas con <italic>Lactarius
					deliciosus</italic> (F<sub>(1, 28)</sub> =12.22; p = 0.002). El mayor contenido
				correspondió al sustrato minero (5.04 ppm ± 0.01) y el menor al de corteza (5.02 ppm
				± 0.01). Las diferencias son significativas a pesar de que las concentraciones
				difieren solamente en un 0.4 %, pero la variación para los datos de cada sustrato es
				muy pequeña. En plantas inoculadas con <italic>Laccaria laccata</italic> no se
				encontraron diferencias significativas ni para la dosis ni para el tipo de sustrato,
				a pesar de que el contenido es muy similar al obtenido para el otro hongo
				micorrizógeno (promedio general: 5.03 ppm). Estos patrones merecen ser estudiados
				con mucho más detenimiento en experimentos adicionales. </p>
		</sec>
		<sec sec-type="discussion">
			<title>DISCUSIÓN</title>
			<p>La presente investigación mostró que la inoculación con HEM favoreció el desarrollo
				de las plantas de fresno tanto en el sustrato orgánico como en el minero. Este
				resultado concuerda con estudios previos sobre la inoculación de plantas con hongos
				micorrizógenos (<xref ref-type="bibr" rid="B24">Mohammadi et al. 2011</xref>). De
				hecho, con <italic>Pinus rigida</italic> se ha demostrado tanto este efecto como que
				la presencia de Hg no cambia significativamente la supervivencia o crecimiento, en
				términos de altura, diámetro y peso del brote (<xref ref-type="bibr" rid="B9">Crane
					et al. 2010</xref>). </p>
			<p>Los resultados indicaron que las dos especies de hongos micorrizógenos incluidas en
				el presente estudio tienen la capacidad de establecer relaciones simbióticas con el
				fresno y son consistentes con estudios previos sobre la micorrización de esta
				especie arbórea (<xref ref-type="bibr" rid="B1">Báez-Pérez et al. 2015</xref>, <xref
					ref-type="bibr" rid="B2">2017</xref>). Además, muestran que la especie arbórea y
				su simbionte son capaces de desarrollarse en sustratos contrastantes, uno de los
				cuales, el sustrato minero, se aleja considerablemente de los óptimos en términos de
				parámetros físicos y químicos fundamentales como la movilidad del agua, la
				circulación del aire, el pH, y el contenido de materia orgánica, todos fundamentales
				para que la relación simbiótica sea efectiva (<xref ref-type="bibr" rid="B13"
					>Duddridge y Read 1984</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B17">Gast et al.
					1988</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B12">Dermibas 2001</xref>, <xref
					ref-type="bibr" rid="B32">Soares et al. 2015</xref>), además de lo cual está
				contaminado con mercurio. Lo anterior se basa en que la presencia de estructuras
				propias de la micorriza en el sustrato orgánico fue más fácil de identificar y la
				densidad de raíces fue notoriamente diferente, aunque no se haya podido hacer una
				comparación cuantitativa. En el sustrato minero hubo pérdidas significativas de
				tejido radical por la compactación. </p>
			<p>Además, las diferencias en la concentración de clorofila son consistentes con el
				hecho de que el sustrato minero es estresante para el desarrollo de las plantas, y
				también con el efecto positivo de la simbiosis micorrízica en el contenido de
				clorofila (<xref ref-type="bibr" rid="B26">Pedraza et al. 2001</xref>).
				Adicionalmente, se sabe que la disponibilidad de nutrientes, principalmente N y Mg,
				incide sobre el contenido de clorofila, ya que estos elementos forman parte de la
				molécula e inciden directamente en su síntesis (<xref ref-type="bibr" rid="B27"
					>Pereira et al. 2001</xref>). En contraste, las dosis de inoculación utilizadas
				en este experimento no arrojaron resultados significativos para ninguna de las
				variables medidas, por lo que se recomienda usar las dosis bajas.</p>
			<p>Ciertas ectomicorrizas acumulan metales pesados en el micelio, por ser la estructura
				que tiene mayor contacto con la superficie del suelo, así como en la red de Hartig,
				que es el intermediario entre la solución del suelo y las raíces de la planta (<xref
					ref-type="bibr" rid="B3">Brown y Wilkins 1985</xref>, <xref ref-type="bibr"
					rid="B5">Colpaert y van Assche 1992</xref>, <xref ref-type="bibr" rid="B9">Crane
					et al. 2010</xref>). Por ejemplo, se ha que especies como <italic>Laccaria
					próxima</italic> y <italic>Lactarius hibbardae</italic> (<xref ref-type="bibr"
					rid="B21">Jones y Hutchinson 1986</xref>) tienen tolerancia al Ni, Cu y Hg; sin
				embargo, otras especies sí son susceptibles al Hg, como es el caso de
					<italic>Lactarius rufus</italic> (<xref ref-type="bibr" rid="B15">Falandysz y
					Chwir 1997</xref>). En este estudio se encontró que entre las plantas de fresno
				inoculadas con <italic>Lactarius deliciosus</italic> y las no inoculadas hubo
				diferencias significativas en el contenido de Hg en los tejidos. Este estudio aporta
				información relevante para explorar el papel de las ectomicorrizas en la extracción
				de metales pesados, pues los resultados indican que plantas de fresno inoculadas
				tienen un buen desempeño en un sustrato contaminado, y soportan otras observaciones
				de que esta especia arbórea puede desarrollarse en suelos con escasos nutrientes
					(<xref ref-type="bibr" rid="B16">Francis 1990</xref>, <xref ref-type="bibr"
					rid="B1">Báez-Pérez et al. 2015</xref>).</p>
			<p>Por ello, para llevar a cabo una restauración en sitios contaminados con metales
				pesados, es recomendable aprovechar las simbiosis, en este caso la relación del
				fresno con hongos ectomicorrízicos. Asimismo, es importante destacar que el primero
				es una especie nativa del país, lo cual aumenta las posibilidades de éxito en la
				repoblación del sitio, además de tenr un potencial maderable. </p>
		</sec>
		<sec sec-type="conclusions">
			<title>CONCLUSIONES</title>
			<p>El fresno forma una simbiosis ectomicorrízica con <italic>Laccaria laccata</italic> y
					<italic>Lactarius deliciosus</italic> cuando es cultivado en sustratos con alto
				contenido de Hg, y tiene mejor desempeño que cuando no está micorrizado. Es
				importante mencionar que las especies de hongos micorrizógenos usadas en este
				estudio son comunes en los bosques templados de México, al igual que la especie
				arbórea, lo que es una indicación del potencial para su utilización en proyectos de
				recuperación de suelos contaminados y de depósitos de residuos mineros en México.
			</p>
		</sec>
	</body>
	<back>
		<ack>
			<title>AGRADECIMIENTOS</title>
			<p>El presente proyecto de investigación fue financiado por la Dirección General de
				Asuntos del Personal Académico de la Universidad Nacional Autónoma de México a
				través del proyecto IN-116218 otorgado a Roberto Lindig Cisneros. Deseamos agradecer
				el apoyo del Dr. Luis Escalera por los análisis de mercurio en tejidos
				vegetales.</p>
		</ack>
		<ref-list>
			<title>REFERENCIAS</title>
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