ricaRevista internacional de contaminación ambientalRev. Int. Contam.
Ambient0188-4999Universidad Nacional Autónoma de México, Centro de Ciencias de la Atmósfera10.20937/RICA.5371100013ArtículosPATOTIPOS Y RESISTENCIA A ANTIBIÓTICOS DE Escherichia
coli EN AGUA RESIDUALPATHOTYPES AND ANTIBIOTIC RESISTANCE OF Escherichia
coli IN RESIDUAL WATERMartínez-OrgánizÁngeles1Garza-RamosUlises2Sampedro-RosasMaría L.1González-GonzálezJustiniano1Nava-FaustinoGetzemany3Toribio-JiménezJeiry3*Centro de Ciencias de Desarrollo Regional,
Universidad Autónoma de Guerrero, Pino s/n, Col. El Roble, 39640 Acapulco,
Guerrero, México.Universidad Autónoma de
GuerreroCentro de Ciencias de Desarrollo
RegionalUniversidad Autónoma de GuerreroAcapulcoGuerreroMexicoInstituto Nacional de Salud Pública, Av.
Universidad 655, Col. Santa María Ahuacatitlán, 62100 Cuernavaca, Morelos,
México.Instituto Nacional de Salud
PúblicaInstituto Nacional de Salud
PúblicaCuernavacaMorelosMexicoLaboratorio de Microbiología Molecular y
Biotecnología Ambiental, Facultad de Ciencias Químicas, Universidad Autónoma de
Guerrero, Col. Haciendita, 39087 Chilpancingo, Guerrero, México.Universidad Autónoma de
GuerreroLaboratorio de Microbiología Molecular y
Biotecnología AmbientalFacultad de Ciencias QuímicasUniversidad Autónoma de GuerreroChilpancingoGuerreroMexicoLaboratorio de Microbiología Molecular y
Biotecnología Ambiental, Facultad de Ciencias Químicas, Universidad Autónoma de
Guerrero, Col. Haciendita, 39087 Chilpancingo, Guerrero, México.Universidad Autónoma de
GuerreroLaboratorio de Microbiología Molecular y
Biotecnología AmbientalFacultad de Ciencias QuímicasUniversidad Autónoma de GuerreroChilpancingoGuerreroMexicojeiryjimenez2014@gmail.com
Autora para correspondencia:
jeiryjimenez2014@gmail.com1120203649579660109201901042020Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia
Creative CommonsRESUMEN
La contaminación del agua es un problema ambiental grave. En una planta de
tratamiento de agua residual (PTAR) en México se evaluó la presencia de
coliformes fecales totales y de Escherichia coli, la
prevalencia de patotipos diarreicos y los perfiles de resistencia a los
antibióticos en las diferentes etapas del tratamiento. Se realizaron tres
muestreos compuestos para evaluar la presencia de E. coli con
los parámetros físicos y químicos establecidos en la Norma Oficial Mexicana
NOM-001-SEMARNAT-1996. Se seleccionaron 57 cepas de las diferentes etapas del
proceso y se determinó el patotipo de E. Coli por reacción en
cadena de polimerasa múltiplex: enteropatógena (EPEC), enterotoxigénica (ETEC),
enteroinvasiva (EIEC), enteroagregativa (EAEC), enterohemorrágica (EHEC) y de
adherencia difusa (DAEC); asimismo, se determinó su resistencia por el método de
Kirby Bauer. Los resultados muestran una eficiencia de remoción del 95.4 %, con
base en la demanda química de oxígeno (DBO5). Los coliformes y
E. coli son mayores en el influente. La frecuencia total de
patotipos fue del 39 % (22/57) de EIEC, 30 % (17/57) de ETEC y 15.5 % (9/57) de
DAEC y EPEC. Respecto de la distribución, se detectó un 39 % de ETEC en el
influente, 50 % de EIEC antes de la desinfección, 100 % de EIEC después de la
desinfección y un 43 % de ETEC en el efluente. Todas las cepas muestran baja
resistencia a los antibióticos. La eficiencia de remoción de la PTAR, con base
en el DBO5, es alta y cumple con las normas ambientales, sin embargo,
la presencia de patotipos diarreicos en el efluente impacta negativamente al
ambiente y a la salud pública.
ABSTRACT
Water pollution is a serious environmental problem. We analyzed the presence of
total fecal coliforms and Escherichia coli, the prevalence of
diarrheal pathotypes, and the profiles of antibiotic resistance at different
stages. Three composite samples from a wastewater treatment plant (WWTP) in
Mexico were analyzed for the presence E. coli with the physical
and chemical parameters established in the Mexican Official Standard
NOM-001-SEMARNAT-1996. Fifty seven strains were selected from the different
stages of the process, and the following pathotypes were determined by multiplex
polymerase chain reaction: enteropathogenic (EPEC), enterotoxigenic (ETEC),
enteroinvasive (EIEC), enteroaggregative (EAEC), enterohemorrhagic (EHEC), and
diffuse adherence (DAEC). Their resistance was assessed by the Kirby Bauer
method. The results showed a removal efficiency of 95.4% based on the chemical
oxygen demand (BOD5). Coliforms and E. coli were
found to be higher in the influent. The total frequency of pathotypes was 39 %
(22/57) for EIEC, 30 % (17/57) for ETEC, and 15.5 % (9/57) for DAEC and EPEC.
Regarding the distribution, 39% of ETEC was detected in the influent, 50% of
EIEC before disinfection, 100% of EIEC after disinfection and 43% of ETEC in the
effluent.
La contaminación del agua es considerada un problema ambiental emergente que ocasiona
efectos graves en la salud humana y a los ecosistemas (Huang et al. 2006, Kümmerer
2009a). Se estima que en 2025 más del 60 % de la población mundial
sufrirá problemas de escasez de este recurso; sin embargo, el desafío en la
actualidad es tener agua potable, debido a que miles de millones de personas están
expuestas a diversos contaminantes y patógenos transmitidos a través de su consumo.
En el agua, las heces de humanos y animales son la principal fuente de coliformes u
otras bacterias patógenas, las cuales pueden dispersarse en el ambiente. Las plantas
de tratamiento de aguas residuales (PTAR) son consideradas como una de las
principales fuentes de contaminación por este tipo de contaminantes (US-EPA 2005, Ye
y Zhang 2011, Novo et al. 2013).
La ingestión de agua con restos fecales es la vía de transmisión más frecuente de
enfermedades intestinales que afectan a las poblaciones vulnerables. En México, las
enfermedades diarreicas ocupan uno de los primeros lugares en la
morbilidad/mortalidad de niños menores de 5 años de edad y generan el 7.4 % de la
demanda de consulta en los servicios de salud y el 10 % de las hospitalizaciones
pediátricas (Franzolin et al. 2005). Entre los
patógenos intestinales transmitidos por el agua, el más frecuente es la bacteria
Escherichia coli, cuyos patotipos diarreicos son considerados
un problema ambiental y de salud pública a nivel mundial (Sidhu y Toze 2009). Dichos patotipos de E.
coli son: enteropatógena (EPEC), enterotoxigénica (ETEC),
enteroinvasiva (EIEC), enteroagregativa (EAEC), enterohemorrágica (EHEC) y de
adherencia difusa (DAEC) (Nataro y Kaper
1998, Weintraub 2007). La ETEC causa
diarrea acuosa en niños y adultos (Shaheen et al.
2004). En México, este patotipo se ha aislado en el 70 % de los casos de
brotes epidémicos y se asocia con zonas donde la higiene es precaria. La presencia
de cepas patogénicas de E. coli en el agua residual se agrava por
la capacidad de intercambiar genes de resistencia a los antibióticos a partir de
mecanismos de transferencia horizontal.
El uso y abuso de antibióticos en la comunidad, hospitales, ganadería, veterinarias y
agricultura ha generado que se dispersen y liberen en el medio acuático y lleguen a
las PTAR, contribuyendo a la selección y diseminación de bacterias resistentes en el
ambiente acuático (Davies y Davies 2010). La
presencia de antibióticos en el ambiente y la resistencia bacteriana es una
preocupación mundial (Rodríguez et al. 2006).
A pesar de lo anterior, este fenómeno no se ha estudiado completamente en entornos
ambientales (Martí et al. 2014). Diversos
estudios han revelado que las concentraciones subinhibitorias de antibióticos
reportadas en ambientes acuáticos (Kümmerer
2009a, b) pueden promover la
resistencia bacteriana (Gullberg et al. 2011,
Chow et al. 2015). Los residuos de
diversos antibióticos son excretados a través de la orina y las heces (Kasprzyk-Hordern et al. 2008, Al Aukidy et al. 2012) y son liberados
posteriormente al ambiente mediante las descargas de agua residual tratada.
Las PTAR son consideradas como puntos de acceso y selección de bacterias resistentes.
Albergan una alta densidad y diversidad de bacterias ambientales asociadas con
humanos y animales (incluidos los patógenos), y tienen diversos factores de
resistencia a antibióticos que pueden intercambiarse entre ellas (Bengtsson-Palme et al. 2016, Manaia et al. 2018). No obstante, el efecto del
tratamiento de agua residual sobre la resistencia bacteriana se ha estudiado en todo
el mundo. Varios autores han investigado la selección de resistencia bacteriana
mediante la comparación de poblaciones de bacterias en el influente y el efluente,
lo que ha producido resultados variables y a veces contradictorios (Flach et al. 2018). Si bien los resultados no
siempre son consistentes, se han encontrado patrones, y en algunos casos se han
observado aumentos de resistencia bacteriana a múltiples antibióticos (Grabow et al. 1974, Linton et al. 1974, Mezrioui y
Baleux 1994).
Es de suma importancia monitorear las PTAR debido a que el agua tratada que se
descarga puede generar propagación de cepas resistentes a antibióticos de interés
para las Instituciones de Salud Pública y ocasionar altas tasas de morbilidad y
mortalidad para la población. Cabe mencionar que en México sólo se monitorea la
calidad del agua con algunos parámetros físicos y químicos mínimos establecidos en
la Norma Oficial Mexicana NOM-001-SEMARNAT-1996 (SEMARNAT 1996a); en cuanto a los
parámetros biológicos, sólo se reportan coliformes fecales, totales y E.
coli, pero se desconoce la presencia de los patotipos y la resistencia
a antibióticos. Por ello el objetivo de esta investigación fue estudiar la
prevalencia de patotipos de E. coli presentes en el agua residual
resistentes a antibióticos en una PTAR al sur de México, con el fin de aportar datos
sobre la misma y sugerir acciones.
MATERIALES Y MÉTODOSSitio de estudio
Se seleccionó una PTAR localizada en Acapulco, Guerrero, México. Esta planta
trata el agua residual generada por una población estimada de 800 mil
habitantes, con una capacidad instalada de 1.35 m3/s de caudal en el
efluente. El tratamiento consiste en un proceso biológico aeróbico a nivel
secundario por lodos activados con desinfección por radiación UV y espesamiento
mecánico, digestión aeróbica y deshidratación en filtros banda para los lodos.
El tratamiento del agua residual cruda previo al biológico, consiste en la
eliminación de la materia flotante, basura y sólidos gruesos por procedimientos
mecánicos de desbaste grueso y fino, y la desarenación mecánica con aeración y
extracción mecánica del material granular.
Colección de muestra para los estudios bacteriológicos
Se realizaron tres muestreos compuestos en la PTAR en diferentes momentos en
enero, febrero y abril de 2018. Las muestras de agua de los diferentes procesos
(influente, antes de la desinfección [AD] y después de la desinfección [DDE], y
efluente) se colocaron en frascos estériles de 50 mL. Las muestras se
mantuvieron en cadena fría durante el transporte y se analizaron en el
laboratorio.
Análisis físicos y químicos de las muestras de agua
En el momento de cada muestreo se registraron in situ la temperatura, el pH y la
conductividad eléctrica (Ce). Además, se midieron los siguientes parámetros:
demanda química de oxígeno (DQO), demanda bioquímica de oxígeno
(DBO5), dureza total, turbidez, sólidos suspendidos volátiles (SSV),
sólidos suspendidos totales (SST), coliformes fecales, totales y E.
coli, y se determinó el número más probable (NMP) con base en la
Norma Mexicana NMX-AA-042-SCFI-2015 (SE
2015a) en el laboratorio de análisis químico ambiental de la
Universidad Autónoma de Guerrero, considerando las normas vigentes
correspondientes (SEMARNAT 1996a, b, 1997). Con los datos obtenidos se calculó el porcentaje de
eficiencia de remoción del reactor biológico (con en la DBO5):
donde % eficiencia es el porcentaje de eficiencia remoción de la
PTAR; DBO5 influente es el valor de la DBO5 de la muestra del influente en mg/L; y DBO5efluente es el valor el valor de la DBO5 de la muestra del efluente en mg/L.
<bold>Aislamiento e identificación de <italic>
<italic>E. coli</italic>
</italic>
</bold>
Para el aislamiento de E. coli en las muestras se realizaron
diluciones de 10-1 a 10-6. De esta última dilución se
inocularon 100 μL en cajas de Petri con agar BHI y agar MacConkey por duplicado
y se incubaron durante 24 h a 30 ºC.
Posteriormente se realizó el conteo del total de colonias en cada medio de
cultivo y se multiplicó por la dilución correspondiente. En el agar MacConkey se
seleccionaron al azar 10 colonias lactosa-positivas con morfología colonial de
E. coli por muestra. Las colonias y se identificaron con el
sistema API20E siguiendo el protocolo del fabricante. Todas las cepas
identificadas como E. coli se conservaron en glicerol al 40 % a
-70 ºC.
<bold>Detección de patotipos en las cepas de <italic>
<italic>E. coli</italic> por PCRm</italic>
</bold>
En las cepas de E. coli seleccionadas se realizó la extracción
de ADN por el método de choque térmico como lo describen Garza-Ramos et al. (2018). Se incluyeron cepas control para
el estudio de los patotipos. Todas las reacciones en cadena de polimerasa
múltiplex (PCRm, por sus siglas en inglés) fueron realizadas en un termociclador
Biorad Mycycler TM, en un volumen final de 25 μL con el siguiente contenido por
reacción: amortiguador, 2.5 μL; MgCl2, 2.5 μL; dNTP, 2.5 μL;
oligonucleótido F, 2.0 μL; oligonucleótido R, 2.0 μL; H2O, 3 μL; Taq
polimerasa, 0.5 μL partiendo de una concentración comercial de 5 U/μL. Cabe
mencionar que en cada mix de PCRm se incluyeron dos pares de oligonucleótidos
para la amplificación de los genes específicos por patotipo, los cuales se
describen en el cuadro I. Las reacciones
se sometieron a un paso de desnaturalización inicial a 95 ºC durante 1 min,
seguido de 35 ciclos que consisten en desnaturalización a 95 ºC durante 45 s,
hibridación a 58 ºC durante 1 min, extensión a 72 ºC durante 1 min y elongación
final a 72 ºC durante 7 min (Omar y Barnard
2010). El control positivo contenía una mezcla de cepas de E.
coli correspondiente a los seis patotipos. El control negativo
contenía solo agua mili Q. Los amplificados de la PCR fueron sometidos a
electroforesis en un gel de agarosa al 1 % teñido con bromuro de etidio (3
μL/100 mL) a 120 V por 1 h en solución amortiguadora TAE 1X. Posteriormente,
fueron visualizados con luz UV.
GENES DE VIRULENCIA PARA LA DETECCIÓN DE PATOTIPOS DE CEPAS DE
<italic>Escherichia coli</italic> AISLADOS EN LA PTAR DE
ACAPULCO, GUERRERO, MÉXICO.
Gen conservado (operón daA) que regula la
expresión de la adhesina F1845
146
(Riveros et
al. 2011)
Enteroagregativa
aggR
Gen activador transcripcional, regulador de
los genes que codifican para fimbrias de adherencia
agregativa (AAF)
152
(Morín et
al. 2013)
<bold>Detección de la resistencia antimicrobiana en las cepas de <italic>
<italic>E. coli</italic>
</italic>
</bold>
Se realizó la prueba de sensibilidad antimicrobiana utilizando el método de
difusión de disco estándar en agar Müeller-Hinton (MH) según lo recomendado por
el Instituto de Estándares Clínicos y de Laboratorio (CLSI 2018). Se recogieron colonias frescas (aproximadamente
18 h) de placas de cultivo de agar nutritivo en tubos de ensayo que contenían 5
mL de solución salina estéril. La turbidez de la suspensión se ajustó a 0.5 del
estándar de McFarland. Se utilizaron hisopos estériles para la dispersión de la
suspensión bacteriana en cajas de Petri con agar MH. Se utilizaron los
siguientes discos impregnados con antibióticos: amikacina (AK, 30 µg),
gentamicina (CN, 10 µg), meropenem (ME, 10 µg), tetraciclina (TE, 30 µg),
levofloxacino (LEV, 5 µg), claritromicina (CLR, 15 µg),
trimetoprima/sulfametaxol (SXT 25, µg), amoxicilina (AMC, 30 µg), ciprofloxacino
(CIP, 5 µg), ceftazidima (CAZ, 30 µg), cefotaxima (CTX, 30 µg), ceftriaxona
(CRO, 30 µg) y cloranfenicol (CL, 30 µg). Asimismo, se hizo el ensayo de
detección de betalactamasas de espectro extendido (BLEE, por sus siglas en
inglés) en las cepas que fueron resistentes a cefalosporinas de
terceravgeneración por el método de doble disco. Todos los resultados se
interpretaron de acuerdo con el m étodo recomendado por el CLSI (2018).
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
En la actualidad se requieren datos más precisos acerca de cada componente de la
interfaz humano-ambiente que contribuyan a la epidemiología de E.
coli, ya que pueden existir reservorios importantes sin identificar
como los efluentes de las PTAR. En este estudio se analizó una PTAR urbana cuya
eficiencia de remoción es de 95.4 %, que es una de las plantas de tratamiento modelo
con las que cuenta México. Cabe mencionar que todos los parámetros físicos y
químicos evaluados en el cuadro II se
encuentran dentro de los límites permisible establecidos por la
NOM-001-SEMARNAT-1996 (SEMARNAT 1996a) para determinar la calidad del agua. Es
importante destacar que existen pocas PTAR que cumplen con la normativa vigente
(Cuadro III).
PARÁMETROS FÍSICOS Y QUÍMICOS EN EL INFLUENTE Y EFLUENTE DE LA PTAR
DE ACAPULCO, GUERRERO, MÉXICO.
NMP DE ORGANISMOS COLIFORMES TOTALES, FECALES y <italic>Escherichia
coli</italic> EN LAS DIFERENTES ETAPAS DE TRATAMIENTOS DE LA PTAR DE
ACAPULCO, GUERRERO, MÉXICO.
Muestra
Organismos coliformes totales
Organismos coliformes fecales
E. coli confirmativa
INFLUENTE
≥ 2 400
1100
160
AD
240
20
19
DDE
93
21
16
EFLUENTE
93
15
11
NMP: número más probable, AD: antes de la desinfección, DDE: después
de la desinfección (interpretación con base en la
NOM-001-SEMARNAT-1996 (SEMARNAT
1996a).
No obstante, a pesar de cumplir con la normativa nacional vigente, hay una presencia
importante de coliformes fecales y totales en el efluente, la cual disminuye después
de la desinfección con luz UV, como se aprecia en el cuadro III. Estos datos coinciden con investigaciones realizadas por
Flach et al. (2018), quienes investigaron
la presencia de E. coli en el influente y efluente en una PTAR en
Suecia durante 18 meses, y observaron que el número de aislamientos era mucho mayor
en el influente que en el efluente. Asimismo, Anastasi et al. (2013) describieron la sobrevivencia de cepas de
E. coli aun después del proceso de desinfección con luz UV y
cloración en una PTAR.
En cuanto a la presencia de E. coli, se aislaron 320 cepas y de
éstas se seleccionaron al azar 57 para estudir los patotipos y la resistencia a
diversos antibióticos; de ellas, 18 pertenecían al influente, 12 a la etapa previa
al proceso de desinfección, 13 a la etapa posterior al proceso de desinfección y 14
al efluente.
En estudios similares se ha observado que las cepas de E. coli se
encuentran presentes en todo el sistema de tratamiento de las PTAR, probablemete por
mecanismos de tolerancia o resistencia a los tratamientos de desinfección empleados
en los procesos de tratamiento. Asimismo, se ha reportado su capacidad de sobrevivir
en ambientes estresantes y hostiles (Anastasi et al.
2013, Flach et al. 2018).
La frecuencia de patotipos de las cepas de E. coli en la PTAR fue de
39 % (22/57) para EIEC, 30 % (17/57) para ETEC y 15.5 % (9/57) para DAEC y EPEC. En
cuanto a la distribución en los sitios de muestreo, se detectó un 39 % de ETEC en el
influente, 50 % de EIEC antes de la desinfección, 100 % de EIEC después de la
desinfección y un 43 % de ETEC en el efluente, como se muestra en el cuadro IV.
PREVALENCIA DE PATOTIPOS Y RESISTENCIA A LOS ANTIBIÓTICOS EN CEPAS DE
<italic>Escherichia coli</italic> AISLADAS EN LA PTAR DE ACAPULCO,
GUERRERO, MÉXICO.
AMC, TE, CXT-CLA, CRO, MEM y CL: 14 %, SXT: 38
%, CXT: 28 %
AD: antes de la desinfección, DDE: después de la desinfección, DAEC:
difusamente adherente, EIEC: enteroinvasiva, EPEC: enteropatogénica,
ETEC: enterotoxigénica, AK: amikacina, SXT:
trimetoprima/sulfametoxazol, CXT: cefotaxima, CRO: ceftriaxona, CL:
cloranfenicol, GN: gentamicina, CAZ: ceftazidima, CXT-CLA:
cefotaxima/ácido clavulánico, AMC: amoxacilina/ácido clavulánico,
MEM: meropenem, TE: tetraciclina.
Respecto a la sobrevivencia de cepas de E. coli, se ha reportado que
1 × 102 UFC/mL sobreviven a los tratamientos empleados para la
desinfección del agua, ya que pueden tener o transferirse genes que les ayudan a
sobrevivir y proliferar en ambientes acuáticos (Reinthaler et al. 2003). Asimismo, se ha demostrado la ineficiencia del
tratamiento con radiación UV contra coliformes fecales, ya que las bacterias tienen
la capacidad de reparar y revertir los efectos negativos sobre su ADN. Esto ocurre
cuando las dosis de radiación UV son bajas y los tiempos de exposición son cortos
según lo reportado por Okoh et al. (2007).
Con relación a la desinfección con cloro, esta puede ser más efectiva para inactivar
a las bacterias, pero se han encontrado cepas de E. coli que pueden
sobrevivir en agua clorada. Dentro de los patotipos de E. coli que
pueden resistir los procesos de desinfección en las PTAR se encuentran las
uropatogénicas (UPEC), de acuerdo con estudios realizados por Anastasi et al. (2013).
Las cepas analizadas en este estudio fueron sensibles a diversos antibióticos, a
saber: 93 % a tetraciclina; 80 % a levofloxacino, gentamicina, amoxacilina,
ceftriaxona y amikacina; 77 % a cloranfenicol; 68 % a ceftazidima; 65 % a
cefotaxima, y 60 % a meropenem y trimetoprima/sulfametoxazol. Ninguna tuvo la
capacidad de producir BLEE. Las cepas con mayor resistencia a antibióticos se
detectaron después del proceso de desinfección y en el efluente (Cuadro IV). En un estudio exhaustivo, Flach et al. (2018) detectaron la presencia de
E. coli en una PTAR con mayor capacidad de tratamiento que la
estudiada en esta investigación, indicando que no hay selección de resistencia
bacteriana; sin embargo, se demostró la resistencia a siete antibióticos evaluados
con un mismo comportamiento en el influente y el efluente, lo cual puede deberse a
la presencia de trazas de antibióticos en el agua.
A pesar que se detectaron algunos antibióticos en concentraciones que pudieron haber
ejercido presión selectiva sobre los perfiles de resistencia de E.
coli, no se observó correlación alguna. Cabe mencionar que los
resultados de Flach et al. (2018) son
contradictorios con otros autores (e.g., Davies y
Davies 2010). Davies y Davies
(2010), mencionan que la selección de bacterias resistentes a
antibióticos puede estar relacionada con la presencia de trazas de estos fármacos o
metabolitos secundarios que promueven la selección de cepas resistentes, ya sea por
mutaciones o por transferencia horizontal de genes de resistencia con otros
microorganismos en diversos ambientes.Por ello la convivencia de cepas de E.
coli con trazas de antibióticos y otros microorganismos resistentes en
las PTAR conduce a la posible selección de cepas de diversos patotipos de E.
coli resistentes a antibióticos, lo cual representan un peligro
inminente para la salud ambiental y humana (Fig.
1).
Diagrama de flujo de la presencia de patotipos y selección de cepas
resistentes de <italic>Escherichia coli</italic> en todos los procesos
de tratamiento del agua en la PTAR de Acapulco, Guerrero,
México.
Cabe mencionar que en el efluente se repiten los patotipos que se detectaron en el
influente, prácticamente en la misma proporción (Cuadro IV), por lo tanto, los procesos de desinfección no son efectivos
con relación a estas bacterias y la remoción de antibióticos es baja o nula en esta
PTAR. Los datos observados en esta investigación indican que las bacterias patógenas
no se remueven en su totalidad, por lo que deben diseñarse estrategias de remoción
para eliminarlas o retenerlas dentro del sistema de tratamiento. Además, se sugiere
evaluar el tratamiento de fotocatálisis heterogénea TiO2 propuesto por
Rojas-Higuera et al. (2010) como un
método eficaz para la remoción de coliformes y E. coli en agua
residual.
La importancia de monitorear las PTAR continuamente radica en que el agua tratada
podría reutilizarse para actividades domésticas (e.g., riego de áreas verdes, entre
otras), además de aprovecharse para labores agrícolas; sin embargo, esto podría
conducir a la dispersión de cepas potencialmente patógenas en el ambiente. La
eficiencia de las PTAR se ha minimizado a conocer los parámetros físicos, químicos y
bacteriológicos, sin considerar la presencia de patotipos resistentes a antibióticos
en cepas de E. coli, que aumentan la morbilidad/mortalidad y
ocasionan la disminución de los tratamientos disponibles y el control de casos.
CONCLUSIÓN
Los resultados demuestran la persistencia de patotipos diarreicos en las cepas de
E. coli y su resistencia a ciertos antibióticos en los
diferentes procesos de tratamiento de las PTAR. Por ello es necesario evaluar
procesos adicionales que tengan la capacidad de eliminar este tipo de bacterias
presentes en el agua residual tratada, con el fin de evitar el desequilibrio en el
medio acuático y afectaciones a la salud humana y el ambiente.
AGRADECIMIENTOS
Queremos agradecer a Enrique Jesús Munguía Flores por su apoyo en el muestreo y
procesamiento de las muestras de este proyecto.
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residuales (DBO5) y residuales tratadas.-Método de pruebaDirección General de Normas, Secretaría de Economía. Diario Oficial de
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Economía. Diario Oficial de la Federación, 17 de abril.SE2001Norma Mexicana NMX-AA-029-SCFI-2001 Análisis de
aguas-Determinación de fósforo total en aguas naturales, residuales y
residuales tratadas.- Método de pruebaDirección General de Normas, Secretaría de Economía. Diario Oficial de
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residuales tratadas.-Método de prueba. Dirección General de Normas, Secretaría
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agua-Determinación de acidez y alcalinidad en aguas naturales, residuales y
residuales tratadas.-Método de pruebaDirección General de Normas, Secretaría de Economía. Diario Oficial de
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agua-Determinación de cloruros totales en aguas naturales, residuales y
residuales tratadas.-Método de prueba Dirección General de Normas, Secretaría de
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agua-Determinación de cloruros totales en aguas naturales, residuales y
residuales tratadasMétodo de prueba Dirección General de Normas, Secretaría de Economía.
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agua-Determinación de dureza total en aguas naturales, residuales y residuales
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agua-Determinación de dureza total en aguas naturales, residuales y
residuales tratadas.-Método de pruebaDirección General de Normas, Secretaría de Economía. Diario Oficial de
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agua-Determinación de turbiedad en aguas naturales, residuales y residuales
tratadas.- Método de pruebaDirección General de Normas, Secretaría de Economía.
Diario Oficial de la Federación, 1 de agosto .SE2001Norma Mexicana NMX-AA-038-SCFI-2001. Análisis de
agua-Determinación de turbiedad en aguas naturales, residuales y residuales
tratadas.- Método de pruebaDirección General de Normas, Secretaría de Economía. Diario Oficial de
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tratadas.-Método de pruebaDirección General de Normas, Secretaría de Economía. Diario Oficial de
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