Introducción

Macrovalsaria Petr. es un género monotípico, con la especie M. megalospora (Mont.) Sivan, pertenecen a la familia Botryosphaeriaceae, orden Botryosphaeriales, clase Dothideomycetes, Phylum Ascomycota (Liu et al., 2012). La especie ha sido ampliamente citada de regiones tropicales y secas de África (Sivanesan, 1975), Asia (Sivanesan, 1975; Sharma et al., 1990; Old et al., 2000; Wang y Linn, 2004; Doilom et al., 2016) y Australia (Hyde, 1994); en América, de Guayana Francesa (Sivanesan, 1975) y México (Chacón et al., 2014).

Macrovalsaria megalospora se ha encontrado en múltiples hospederos como fitopatógeno causante de tumores provocados por el patógeno conocido como cancros; Sivanesan (1975) la cita de ramas y tallos muertos de Azanza lampas (Cav.) Alef., Bambusa arundinacea (Retz.) Willd., Bauhinia tomentosa L., Borassus aethiopum Mart., Caesalpinia sappan L., Calliandra surinamensis Benth., Cassia auriculata L., Cassia javanica L., Cassia marginata Sessé & Moc., Cassia sieberiana DC., Citrus medica L., Dialium dinklagei Harms, Dialium guineense Willd., Dichrostachys glomerata (Forssk.) Chiov., Grevillea robusta A. Cunn. ex R. Br., Hippocratea welwitschii Oliv., Lagerstroemia indica L., Lantana camara L. var. aculeata (L.) Moldenke, Macrolobium macrophyllum (P. Beauv.) J.F. Macbr., Mussaenda elegans Schumach. & Thonn, Ochthocosmus africanus Hook. f., Phoenix reclinata Jacq., Phyllanthus discoides Müll. Arg., Psidium guajava L., Sabal glabra (Mill.) Sarg., Sorindeia juglandifolia (A. Rich.) Planch. ex Oliv., Tecoma stans (L.) Juss. ex Kunth y Uvaria chamae P. Beauv. Sharma et al. (1990) la citan de algunas especies de Eucalyptus L'Hér. Hyde (1994) la describe sobre Livistona R. Br. en la India, mientras que Old et al. (2000) la señalan como generadora de cancros en tallo y ramas de Acacia mangium Willd. en Indonesia y Malasia. Wang y Lin (2004) la registran de Citrus grandis f. butan Hayata de Taiwan, Liu et al. (2012) de ramas de bambú en China, y Chacón et al. (2014) de tallos de Cassia fistula L., en vegetación secundaria en México. Recientemente, Doilom et al. (2016) la observaron en ramas muertas de Tectona grandis L. f. en Tailandia.

En Colombia se conocen, hasta 2019, 201 especies de ascomicetos macroscópicos de acuerdo con el listado de macrohongos de Colombia (Vasco-Palacios y Franco-Molano, 2013) y con un estudio de los ascomicetos de una reserva natural en el departamento de Quindío (Soto-Agudelo et al., 2016). Recientemente Raymundo et al. (2017) describieron Colpoma guadueticola T. Raymundo, R. Soto-Agudelo y R. Valenzuela, creciendo sobre Guadua angustifolia Kunth. Sin embargo, considerando la gran diversidad de ascomicetos que existe en el país, es necesario continuar con sus inventarios en Colombia. De esta manera, el presente estudio tiene por objetivo reportar la especie Macrovalsaria megalospora, por primera vez para la República Colombiana.

Materiales y Métodos

Se realizó una exploración en la Finca Bellavista, municipio Galera, departamento de Sucre, ubicada en la vereda Palmital y el arroyo grande, en las coordenadas 9°1'52.21"N, 74°58'47.43"O, 40 m s.n.m. (Fig. 1). El clima es cálido seco, la temperatura de 28ºC y las precipitaciones de 1233 mm de promedio anual; la vegetación es sabana abierta (PAM, 2013).

Figura 1
Ubicación de Macrovalsaria megalospora (Mont.) Sivan en la Finca Bellavista, municipio Galera, departamento de Sucre, Colombia

Se recolectaron ejemplares sobre árboles muertos, en pie y en descomposición. Se tomaron fotografías in situ con una cámara (Nikon D5300 y D7000, Tokio, Japón) y un lente DX Micro 85 mm. Los ejemplares se deshidrataron, desinfectaron, etiquetaron y depositaron en el Herbario de la Universidad de Sucre (HEUS) con duplicados en la colección de hongos “Dr. Gastón Guzmán Huerta” del Herbario de la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas (ENCB) del Instituto Politécnico Nacional (IPN).

En el laboratorio se realizaron preparaciones temporales en alcohol al 70% y KOH al 5% para observar y describir el tamaño, forma y color del pseudotecio, ascas, ascosporas, pseudoparáfisis y células de la pared del ascoma, en el microscopio óptico (MO) (K-7 Zeiss, Jena, Alemania). Para la ornamentación de las esporas se situó un corte del pseudotecio sobre una cinta adhesiva doble previamente adherida a un cílindro, las muestras se colocaron en una evaporadora (Denton Vacum Des II, Moorestown, New Jersy, Estados Unidos de América) para quedar cubiertas de oro; la observación se realizó en un microscopio electrónico de barrido (MEB) (Jeol Jeol JSM-5800LV, Peabody, Akishima/Shi, Japón) de la central de instrumentación y microscopía de la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas del Instituto Politécnico Nacional.

Resultados

Dothideomycetes

Botryosphaeriales

Botryosphaeriaceae

Macrovalsaria megalospora (Mont.) Sivan, Trans. Br. Mycol. Soc. 65(3): 400. 1975. TIPO: GUAYANA FRANCESA. Cayenne, in corticibus emortiorum circa Cayennae lecta, coll. Leprieur 239 (K). Figs. 2, 3.

Figura 2
Macrovalsaria megalospora (Mont.) Sivan. A. pseudotecios gregarios; B. pseudotecio errumpente mostrando el ostiolo; C. corte longitudinal de psedutecios; D. pseudotecio maduro; E. ostiolo con perifisis; F. ascas; G. ascospora

Figura 3
Macrovalsaria megalospora (Mont.) Sivan. A. pseudotecios en MEB; B-C. ascosoporas

( Sphaeria megalospora Mont. Annales des Sciences Naturelles Botanique 14: 324. 1849.

= Amphisphaeria megalospora (Mont.) Sacc., Syll. Fung. (Abellini) 1: 724. 1882.

= Melogramma megalospora (Mont.) Cooke, Grevillea 13(68): 109. 1885.

= Amphisphaeria bambusina Sydow, Philip. Jour. Sci. 8: 247. 1913.

= Valsaria leonensis Deighton, Sydowia 6: 321. 1952.

= Amphisphaeria lantanae K. Ramakr., Proc. Ind. Acad. Sci. 42: 249. 1955.

≡ Macrovalsaria leonensis (Deighton) Petr., Sydowia 15: 300. 1961.

Pseudotecios negros, subglobosos a cónicos, 700-1000 µm de alto, 500-600 µm de diámetro, base truncada, inmerso a subinmerso, errumpente, ostíolos evidentes, perifisados; pared 90-100 µm de grosor, parte interna color pálida amarillenta, parte externa color marrón obscuro a negro, textura pseudoparenquimática a angularis, células 10-12 × 4-6 µm, subglobosas, hialinas a pálido amarillentas, ostíolos evidentes, células 3-4 µm de diámetro, filamentosas; pseudoparáfisis hasta 2 µm de diámetro, hialinas a pálidas amarillentas, filamentosas, con septos transversales irregulares, anastomosadas; ascas 260-280 × 25-30 µm, cilíndricas, uniseriadas, octospóricas, endotúnica y exotúnica separadas por 28-30 µm, ápice redondeado; ascosporas 35-39 × 15-17 µm, parte distal 16-17 × 14-15 µm, parte proximal 15 × 10-12 µm, elipsoides a fusiformes, ligeramente curvadas, color marrón a marrón obscuro, un septo medio y constreñido, líneas en la parte basal o proximal en microscopio óptico, prismático en microscopio electrónico.

Hábitat: gregario, crece sobre ramas y troncos recién caídos de Terminalia amazonia (J.F. Gmel.) Exell (Combretaceae), Ficus americana Aubl. (Moraceae) y Nectandra sp. (Lauraceae).

Distribución: especie ampliamente documentada de las regiones tropicales de Kerala, Nigeria, Filipinas, Sri Lanka, Sierra Leona (Sivanesan, 1975), e India (Sharma et al., 1990; Doilom et al., 2016). En América, ha sido citada de Guayana Francesa (Sivanesan, 1975) y de Veracruz, México (Chacón et al., 2014). Se cita por primera vez para Colombia.

Material examinado: COLOMBIA. Departamento Sucre, municipio Galera, Finca Bellavista a 6.8 km de Baruya, 40 m, 9°1'52.21"N, 74°58'47.43"O, 29.IV.2016, T. Raymundo 5973 (ENCB), 5979 (ENCB), 5983 (ENCB), R. Valenzuela 16461 (ENCB), 16468 (ENCB), 16470 (ENCB), 16473 (ENCB).

Discusión

Nuestra descripción concuerda con las características morfológicas indicadas por Wang y Lin (2004), Liu et al. (2012) y Chacón et al. (2014), con excepción de la ornamentación de las esporas. Los autores antes mencionados indican que la pared de las ascosporas presenta sulcos o estrías como aparato de germinación; sin embargo, durante la revisión al microscopio electrónico de barrido, no se observaron sulcos, hendiduras o fisuras, por lo que en el presente trabajo se indica que la ornamentación es de tipo prismática.

En Macrovalsaria megalospora no se conoce el estado asexual; sin embargo, estudios filogenéticos propuestos por Liu et al. (2012) han demostrado que podrían estar relacionados con la fase asexual conocida como Lasiodiplodia theobromae (Pat.) Griffon & Maubl., agente causal de numerosas enfermedades de plantas tropicales. Finalmente, es necesario realizar una revisión filogenética de los especímenes determinados como Macrovalsaria megalospora de todas las áreas tropicales del mundo, con el fin de corroborar tanto que se trata de un género monotípico, como la importancia que tiene como fitopatógena.

Agradecimientos

Se agradece a Edgar Oliver López Villegas del Laboratorio Central de Microscopía de la Escuela Nacional de Ciencias Biológicas (ENCB) del Instituto Politécnico Nacional (IPN), por el apoyo en la toma de fotografías en Microscopio Electrónico de Barrido y a Julio Ramírez Martínez del laboratorio de Biogeografía de la Facultad de Ciencias de la Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM), por la elaboración del mapa. Valenzuela y Raymundo agradecen a las autoridades de la ENCB, IPN, las facilidades otorgadas para realizar este estudio.

Literatura citada

Chacón, S., F. Tapia y M. Esqueda. 2014. New records of Dothideomycetes from Mexico. Mycotaxon 128: 145-157. DOI: https://doi.org/10.5248/128.145

Doilom, M., J. E. Taylor, D. J. Bhat, E. Chukeatirote, K. D. Hyde, C. To-Anun y E. B. G. Jones. 2016. Check list on teak. Mycosphere 7(5): 656-678. DOI: https://doi.org/10.5943/mycosphere/7/5/11

Hyde, K. D. 1994. Fungi from rachides of Livistona in the western province of Papua New Guinea. Botanical Journal of the Linnean Society 116: 315-324.

Liu, J. R., M. Phookamsak, M. Doilom, S. Wikee, Y. Li, H. Ariyawan-Sha, S. Boonme, P. Chomnunti, D. Dai, J. Bhat, A. I. Romero, W. Zhuang, J. Monkai, E. B. G. Jones, E. Chukeatirote, K. T. W Ko, Y. Zhao, Y. Wang y K. D. Hyde. 2012. Towards a natural classification of Botryosphaeriales. Fungal Diversity 57: 149-210. DOI: https://doi.org/10.1007/s13225-012-0207-4

Old, K. M., L. S. See, J. K. Sharma y Z. Q. Yuan. 2000. A manual of diseases of tropical acacias in Australia, South East Asia and India. Center For International Forestry Research (CIFOR). Bogor, Indonesia. 104 pp.

PAM. 2013. Plan Ambiental Municipal (PAM) de la Alcaldía municipal de Galera, departamento de Sucre, Colombia. Galera, Colombia. 99 pp.

Raymundo, T., R. Soto-Agudelo y R. Valenzuela. 2017. Colpoma guadueticola sp. nov. in guadual forest from Quindío Departament, Colombia. Mycotaxon 132(4): 819-829. DOI: https://doi.org/10.5248/132.819

Sharma, J. K., C. Mohanan y E. J. M. Florence. 1990. Diseases af forest trees in Kerala Evergreen (Trichov) 24: 8-10.

Sivanesan, A. 1975. Redisposition and descriptions of some Amphisphaeria species and note on Macrovalsaria. Transactions of the British Mycological Society 65: 395-402.

Soto-Agudelo, R., R. Valenzuela, D. G. Gómez-Marín y T. Raymundo. 2016. Ascomicetos de los guaduales en la reserva natural La Montaña del Ocaso, departamento del Quindío, Colombia. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas Físicas y Naturales 40(156): 438-449. DOI: https://doi.org/10.18257/raccefyn.352

Vasco-Palacios, A. M. y A. E. Franco-Molano. 2013. Diversity of Colombian macrofungi (Ascomycota-Basidiomycota). Mycotaxon 121: 99-504.

Wang, C. L. y C. C. Lin. 2004. Five new records of ascomycetes in Taiwan. Fungal Science 19: 21-29.

Notas

Notas de autor

³Autor para la correspondencia: rvalenzg@ipn.mx