Introducción

Diversos estudios micobióticos se han realizado en los últimos 30 años en Jalisco, México. Sobresalen los de Nieves (1985), Téllez et al. (1988), Vázquez-González y Guzmán-Dávalos (1988), Rodríguez et al. (1994, 2010b, 2018), Fierros et al. (2000), Oliva-León (2000), Arroyo (2001), Herrera-Fonseca et al. (2002), Arceo-Orozco (2011), Gándara-Zamorano et al. (2014), Padilla-Velarde et al. (2016) y Terríquez-Villanueva et al. (2017). Particularmente en el Complejo Volcánico de Colima (CVC), zona que forma parte del Eje Volcánico Transversal Mexicano, reconocida por su alta riqueza, endemismos bióticos y porque constituye un área importante de especiación de organismos, sobresalen los trabajos de Fa y Morales (1993), Flores-Villela (1993), Ceballos et al. (1998), Espinosa et al. (2000) y Segura-Trujillo y Navarro-Pérez (2010).

Por su ubicación geográfica, el CVC se encuentra situado en un extremo de la zona de transición entre dos regiones biogeográficas como son la Neártica y la Neotropical, en donde es posible observar desde selvas tropicales a bosques templados y zonas semiáridas, así como la presencia de comunidades bióticas únicas como el bosque mesófilo de montaña (Rzedowski, 1978; Cox, 2001). Respecto a estudios previos sobre diversidad fúngica en el área del CVC, solo se contaba con la cita de 140 taxones registrados de los municipios que lo comprenden, recopilados la mayor parte por Sánchez-Jácome y Guzmán-Dávalos (2011) y de otros trabajos consultados como los de Bautista-Hernández et al. (2011), Landeros y Guzmán-Dávalos (2013) y Rodríguez et al. (2009, 2010a, 2013).

Con base en lo anterior, y por ser reconocido el Complejo Volcán Nevado de Colima como una zona de alta diversidad biológica, se considera relevante este estudio porque permite conocer la micobiota de esta región, la distribución geográfica de sus especies, sus aspectos ecológicos e importancia.

Materiales y Métodos

Área de estudio

El Complejo Volcánico de Colima (CVC) forma parte del Eje Volcánico Transversal Mexicano (Fig. 1), se localiza entre los estados de Jalisco y Colima, en las coordenadas geográficas 19°40'45"N, 103°49'16"O y 19°22'48"N, 103°25'32"O, con una superficie total de 843.13 km² (Magaña-Martínez y Palacios-Vargas, 2010; Segura-Trujillo y Navarro-Pérez, 2010). Dicho complejo está constituido por tres cumbres volcánicas: el Nevado de Colima (4270 m s.n.m.), el Volcán de Fuego (3860 m s.n.m.) y el Volcán del Cántaro (2900 m s.n.m.) (SEMARNAT-CONANP, 2007). El CVC comprende seis municipios del estado de Jalisco: San Gabriel (Venustiano Carranza), Tonila, Tuxpan, Zapotiltic, Zapotitlán de Vadillo y Zapotlán el Grande (Ciudad Guzmán) y dos del estado de Colima: Comala y Cuauhtémoc (SEMARNAT-CONANP, 2007).

Figura 1
Localización del área de estudio Complejo Volcánico de Colima, México

El complejo se localiza en un extremo de la zona de transición biogeográfica en la que es posible observar bosque tropical caducifolio y subcaducifolio, bosque mesófilo de montaña (principalmente en cañadas), bosque de Pinus-Quercus, bosque de Pinus hartwegii y bosque de Abies (Rzedowski, 1978; Jardel et al., 2014). La flora presenta cinturones de vegetación que cambian a través de un gradiente de altitud que va desde 1200 m hasta poco más de 4000 m. El clima puede variar desde cálido y subhúmedo en las partes bajas, hasta frío subhúmedo en alta montaña, variación que está dada en función de su gradiente altitudinal y orientación geográfica (Segura-Trujillo y Navarro-Pérez, 2010). Los datos de precipitación media anual que se tienen dentro de los municipios que conforman el Complejo Volcánico de Colima, oscilan entre 700 y 800 mm³ con régimen de lluvias de junio a octubre (INIFAP, 2019).

Recolección y determinación de material fúngico

Se efectuaron diversas exploraciones a campo, al menos una por semana, durante el periodo de lluvias en los meses de junio a octubre entre 2011 y 2018; época de esporulación de la mayoría de los macromicetos considerados en este estudio.

Todo el material colectado fue herborizado y depositado en la Colección Micológica del Herbario IBUG de la Universidad de Guadalajara. Los ejemplares se determinaron a través del estudio de sus características macro y microscópicas basadas en el concepto de morfoespecie. Para el estudio micromorfológico se realizaron cortes del esporoma siguiendo las técnicas empleadas en micología propuestas por Largent et al. (1977) y Vellinga (1998). Los especímenes fueron estudiados con un microscopio óptico (Zeiss K-7, Jena, Alemania). Dentro de algunas de las estructuras microscópicas con valor diagnóstico, están el tamaño y forma de las esporas, la cual, a partir de su medición, se obtiene el coeficiente Q=largo/ancho cuyo intérvalo indica la forma básica de las esporas. Para la toma de las fotografías de los caracteres microscópicos se utilizó un microscopio óptico (Zeiss Axioskop 40, Jena, Alemania), cámara (AxioCam MRc, Zeiss, Jena, Alemania) y software Axio Vision 4 (Carl Zeiss Microscopy, 2020).

Aunado a lo anterior, se efectuó el estudio microscópico de ejemplares que estaban identificados como afínes, con el propósito de incrementar el número de registros y/o especies.

La determinación de las especies se realizó con base en la revisión de diversas obras y claves dicotómicas (Guzmán, 1977; Pegler, 1977, 1983, 1986; Breitenbach y Kränzlin, 1984, 1986, 1991, 1995, 2000; Pegler et al., 1995; Calonge, 1998; Kränzlin, 2005) y literatura especializada para cada grupo (Smith y Thiers, 1964; García-Jiménez y Castillo, 1981; Santiago et al., 1984; Gilberson y Ryvarden, 1986, 1987; Phillips, 1991, 2006; Vázquez-González y Guzmán-Dávalos, 1991; Valenzuela et al., 1994; García-Jiménez, 1999; Nuñez y Ryvarden, 2001; Rodríguez y Guzmán-Dávalos, 2001; Gándara-Zamorano y Ramírez-Cruz, 2005; Sánchez-Jácome y Guzmán-Dávalos, 2005; Groposo et al., 2007; Esqueda-Valle et al., 2009, 2011; Camacho-Sánchez, 2010; Raymundo et al., 2013a, b; Rodríguez, 2013; Montañez et al., 2016).

Revisión de herbario y bibliografía

Se revisó la colección micológica IBUG con el objetivo de incluir material no citado previamente en la literatura y confirmar la validación de los registros históricos con el fin de evitar sinonimias. Con base en el trabajo de Sánchez-Jácome y Guzmán-Dávalos (2011) y revisión bibliográfica, se logró obtener la referencia completa de algunas especies citadas para dicha zona, la cual se menciona en el Apéndice 1.

Listado de especies

El listado actualizado de hongos se realizó con base en los ejemplares de las colecciones antes mencionadas, la revisión del material de herbario, la corroboración de algunas especies erróneamente identificadas de acuerdo con la base de datos pública digital de la Comisión Nacional para el Conocimiento y Uso de la Biodiversidad (CONABIO) (Guzmán-Dávalos, 2003), y de los taxa que previamente se tenían citados en la bibliografía del área de estudio.

El orden taxonómico de las especies se siguió de acuerdo con Wijayawardene et al. (2018), He et al. (2019), Index Fungorum (2019) y MycoBank (2019); consultándose estos últimos también para la validación de los taxones determinados, los nombres de autores y sinonimias. En la lista de especies (Apéndice 1) se incluye el nombre abreviado del colector, su número de colección, tipo de vegetación, localidad, hábitat e importancia.

En dicho listado, además de las especies estudiadas y corroboradas en este trabajo, se incluyen los taxones citados en la bibliografía y en el que la mayoría de los casos no se cuentan con el ejemplar y/o datos completos (o precisos) del material. La información sobre el uso de los hongos se obtuvo de la consulta bibliográfica de diversas obras (Guzmán, 1994, 2004, 2008; Hall et al., 2003; Pérez-Moreno et al., 2008; Shepard et al., 2008; Bautista-González y Moreno-Fuentes, 2014; Garibay-Orijel y Ruan-Soto, 2014). Se aporta la lista de colectores con su respectiva abreviatura (Apéndice 2) con un total de 136 registrados. Se incluye un listado de localidades de los municipios de ambos estados, Jalisco y Colima, que comprenden el CVC (Cuadro 1).

Cuadro 1
Lista de localidades en la que fueron colectados los ejemplares estudiados. BMM=bosque mesófilo de montaña; BP=bosque de Pinus; BPA=bosque de Pinus con Abies; BPE=bosque de Pinus-Quercus; BTC=bosque tropical caducifolio; BTSC=bosque tropical subcaducifolio; CM=cultivo de maíz; R.M.O.=Repetidora de Microondas; SD=sin datos

Estado	Municipio	Localidad	Vegetación
Jalisco	Zapotlán el Grande	1) 100m-3 km del crucero, El Floripondio camino a Las Víboras, Las Antenas, R.M.O.	BPE
		2) km 4-5 del crucero, El Floripondio camino a Las Víboras, Las Antenas, R.M.O.	BPE
		3) km 6-7 del crucero, El Floripondio camino a Las Víboras, Las Antenas, R.M.O.	BPE
		4) km 8-9 del crucero, El Floripondio camino a Las Víboras, Las Antenas, R.M.O.	BP
		5) km 5.5-6.5 camino hacia el Refugio La Joya, Parque Nacional Volcán Nevado de Colima.	BPE
		6) km 28 Refugio la Joya, Volcán Nevado de Colima.	BPA
		7) Entre El Leoncito y Los Depósitos, Volcán Nevado de Colima.	BP
		8) km 11.5 brecha El Fresnito, Antenas del Canal 13, Volcán Nevado de Colima.	BPE
		9) km 14 brecha El Fresnito, Antenas del Canal 13, Volcán Nevado de Colima.	BPE
		10) Parque los Ocotillos, Ciudad Guzmán.	BTC
		11) Camino de Ciudad Guzmán a San Andrés Ixtlán.	BPE
		12) Sin localidad precisa.	SD
	Zapotitlán de Vadillo	13) Predio Los Corralitos.	BMM
		14) Predio El Borbollón.	BMM
		15) Camino al Volcán Nevado de Colima, ladera N.	BMM
		16) km 4.7 de la brecha El Milanés, Volcán Nevado de Colima.	BPE
		17) Poblado San José del Carmen.	BMM
		18) km 4 después del poblado de Telcruz, Predio La Colmena.	BPE
		19) km 7-11 después del poblado de Telcruz, Predio La Colmena.	BPE
		20) Sin localidad precisa.	SD
	Zapotiltic	21) Poblado El Rincón, km 1 camino al cerro El Calaque.	BTC
	Tuxpan	22) Cerro de Los Puercos.	BPE
		23) km 2 al S del poblado de Tuxpan.	BPE
		24) Borde del Río Tuxpan.	BTSC
		25) La Higuera.	CM
	Tonila	26) Volcán de Fuego ladera E, camino al poblado de Atenquique.	BPE
		27) Sin localidad precisa.	SD
	San Gabriel	28) 200 m-2 km sobre la brecha, Cerro Las Víboras, Puerto El Floripondio.	BPE
		29) km 15 después de La Media Luna, Volcán Nevado de Colima.	BPE
		30) Poblado El Apango, km 20 de la carretera Sayula-San Gabriel.	BPE
		31) km 3 sobre la brecha que cruza el poblado de Apango.	BPE
		32) Alrededores del poblado de San Gabriel.	BPE
		33) Poblado La Mesa, 11 km al S de San Gabriel.	BPE
		34) km 3 antes del poblado La Cañada, carretera Sayula-San Gabriel.	BP
		35) km 8 del crucero de La Yerbabuena-San Gabriel, carretera Tapalpa-San Gabriel.	BPE
		36) Sin localidad precisa.	SD
Colima	Comala	37) 500 m-1 km antes del poblado La Yerbabuena, camino a la Laguna María.	BMM
		38) Alrededores de la Laguna María.	BMM
		39) km 1 camino La Becerra-La Yerbabuena, alrededores de la Laguna María.	BTC
		40) km 9.5 después del poblado Campo Cuatro, camino hacia Lagunillas.	BPE
		41) Cultivo de café, cercano a la carretera Comala-Colima.	BTSC
		42) Laguna La María, ex hacienda de San Antonio.	BTC

Para conocer el estado de riesgo de las especies o su estado de conservación se consultaron los documentos sobre normas y criterios nacionales e internacionales como la Unión Internacional para la Conservación de la Naturaleza (UICN, 2020) y la Norma Oficial Mexicana NOM-059-SEMARNAT-2020 (SEMARNAT, 2020). Toda la información obtenida fue agrupada y depurada en bases de datos diseñadas para éste y otros proyectos posteriores en formato Microsoft Excel^® 2016.

Resultados

Con base en el material colectado durante los años 2011-2018 que suman 1542, así como los 400 especímenes del herbario revisados y 140 de la bibliografía consultada, se tiene un total de 2082 ejemplares que fueron determinados hasta especie, lo que corresponde a 408 taxones. De estos, 48 se incluyen en la división Ascomycota y 360 en Basidiomycota; se encuentran incluidos en 204 géneros distribuidos en 84 familias. En cuanto al número de órdenes registrados, en Basidiomycota se adscriben 17 y cinco para Ascomycota. Los órdenes con mayor riqueza en especies de Basidiomycota fueron los Agaricales con 164 taxones, seguido por Polyporales (60), Boletales (43), Russulales (29) e Hymenochaetales (16). Las familias mejor representadas de Ascomycota y Basidiomycota, por el número de taxones y los géneros más ricos en especies, se incluyen en el Cuadro 2.

Cuadro 2
Riqueza de grupos taxonómicos registrados para el Complejo Volcánico de Colima, México

División	Órdenes	Familias	Géneros	Taxa
Ascomycota	Helotiales	2	2	2
	Hypocreales	3	4	7
	Leotiales	2	2	2
	Pezizales	7	16	29
Basidiomycota	Xylariales	2	3	8
	Agaricales	22	68	164
	Auriculariales	2	3	5
	Boletales	9	22	43
	Cantharellales	3	5	8
	Dacrymycetales	1	3	5
	Geastrales	1	1	6
	Gloeophyllales	1	1	3
	Gomphales	2	3	6
	Hymenochaetales	2	7	16
	Phallales	1	1	1
	Polyporales	10	39	60
	Pucciniales	2	3	3
	Russulales	7	13	29
	Sebacinales	1	2	3
	Thelephorales	2	4	5
	Tremellales	1	1	2
	Ustilaginales	1	1	1
Total	22	84	204	408

Se encontraron dos registros nuevos para México, Ductifera exidioidea Lowy y Psathyrella longistriata (Murrill) A.H. Sm., 11 para la micobiota del estado de Jalisco, Bulgaria inquinans (Pers.) Fr., Crepidotus applanatus (Pers.) P. Kumm., Gymnopilus sapineus (Fr.) Murrill, Hohenbuehelia spathulata (Pers.) Singer, Hygrocybe spadicea (Scop.) P. Karst., Inocybe obsoleta (Quadr. & Lunghini) Valade, Lepiota cristata (Bolton) P. Kumm., Pholiota lubrica (Pers.) Singer, Rhizina undulata Fr., Scleroderma aff. pseudostipitatum Petch y Trichoderma alutaceum Jacklitsch y 20 especies como nuevos registros para Colima, de los cuales no se incluye su descripción dado que son muy conocidas, pero que hasta ahora no habían sido mencionadas.

La mayoría de los ejemplares incluidos en este estudio fueron colectados de Comala, Colima. Sin embargo, del municipio Cuauhtémoc, Colima, que también forma parte del CVC, nada se tiene reportado en la bibliografía consultada. Poco se conoce de la micobiota de Colima, hasta ahora 77 especies se tienen citadas, aunque sin dar localidades precisas (López-Ramírez y Medel, 2016), por lo que resultan importantes los nuevos registros aquí aportados, ya que se incrementará el conocimiento de la diversidad fúngica para esta entidad.

Cabe mencionar que del total de los 408 taxa determinados, 183 son exclusivamente registros nuevos para la zona, 140 habían sido previamente citados y 85 se citan por primera vez para algunos municipios, los cuales son señalados en el Apéndice 1. Los 183 taxones antes mencionados se encuentran distribuidos dentro de los municipios que conforman el CVC, siendo Zapotlán el Grande (114) y San Gabriel (27) los que reportan un mayor número de especies para Jalisco, y cinco registros del estado de Colima del municipio Comala. Los taxa que se encontraron con mayor frecuencia y que fueron recolectados en más de cinco localidades fueron Auricularia nigricans (Sw.) Birkebak, Looney & Sánchez-García, Lentinus tricholoma (Mont.) Zmitr., Schizophyllum commune Fr., Stereum ostrea (Blume & T. Nees) Fr. y Trametes villosa (Sw.) Kreisel.

De acuerdo con los resultados, la diversidad fúngica registrada en la zona presentó una amplia distribución en los diferentes tipos de vegetación, siendo el bosque de Pinus-Quercus (BPE) el mejor representado con 363 taxones, seguido del bosque mesófilo de montaña (BMM) con 65, bosque de Pinus con elementos de Abies (BPA) con 50 y el bosque de Pinus (BP) con 45; mientras que en el bosque tropical caducifolio (BTC) y subcaducifolio (BTSC) se registraron 17 y cinco respectivamente, siendo estas dos últimas comunidades vegetales poco exploradas en el CVC.

Los resultados anteriores muestran que la mayor riqueza de especies fúngicas encontradas en el BPE se ha debido precisamente al sesgo en la recolección, situación algo similar a lo señalado en otros estudios (ej. Cifuentes et al., 1990; Fierros y Guzmán-Dávalos, 1995; Herrera-Fonseca et al., 2002; Gándara-Zamorano et al., 2014), por citar algunos. Lo anterior quizás se deba a la afinidad de las especies por determinado tipo de vegetación; esto tiene similitud con lo mencionado por Fierros et al. (2000), quienes señalan que cada comunidad vegetal puede presentar una micobiota característica, sumado al esfuerzo o intensidad de muestreo realizado.

De acuerdo con el Apéndice 1, se presenta el número de especies exclusivas de los principales tipos de sustrato, la mayoría de ellas son terrícolas (182 spp., 44.60%), lignícolas (161, 39.46%), humícolas (26, 6.37%), fimícolas (11, 2.68%) y fungícolas (7, 1.71%). De las 182 especies terrícolas el mayor número registrado se adscribe al BPE con 112 y el de menor cantidad al BMM con tres. Respecto a las especies lignícolas, en general estas fueron recolectadas en BPE, con un número de 74, mientras que en BMM y BPA se reportan siete y cuatro taxones, respectivamente; en tanto que en el BP y BTC se encontraron solo tres en cada uno de ellos.

Dentro de las especies humícolas, 18 son registradas del BPE, en tanto que en BMM y BP se presentan cinco. Los taxones mejor representados son Gymnopus dryophilus (Bull.) Murrill, G. polyphyllus (Peck) Halling y Lepista nuda (Bull.) Cooke. Respecto a los hongos fímícolas, se registran siete taxones de BPE, y solo uno en BPA.

En cuanto a la importancia y uso de los hongos macroscópicos enlistados en el Apéndice 1, cabe destacar que 122 taxones son micorrizógenos, lo que representa 29.90% del total de especies registradas. Es importante mencionar que este tipo de asociación simbiótica micorrícica es más común en bosques templados que en tropicales en donde también puede presentarse, aunque de forma más escasa, quizás debido a las condiciones o factores medio ambientales (humedad y temperatura principalmente) y las especies de árboles presentes que sean susceptibles de micorrizarse (Guzmán-Dávalos y Guzmán, 1979; Janos, 1983).

Se registra un total de 127 hongos comestibles silvestres, entre ellos, Helvella crispa (Scop.) Fr., Hygrophoropsis aurantiaca (Wulfen) Maire, Hydnum repandum L., Laccaria laccata (Scop.) Cooke, Gymnopus dryophilus y Schizophyllum commune; estos dos últimos encontrados de forma frecuente en el área de estudio. La mayor riqueza de hongos comestibles se reporta para BPE con 118 especies (28.92%), seguido del BMM con 23 (5.63%) y 15 (3.67%) en BP y BPA.

Asimismo, se citan 40 especies consideradas como venenosas, desde aquellas que causan ciertos problemas gastrointestinales hasta las venenosas mortales (Ramírez-Terrazo et al., 2014). Algunos de los taxones registrados para el CVC son Amanita gemmata (Fr.) Bertill, A. magnivelaris Peck, A. muscaria (L.) Lam., Chlorophyllum molybdites (G. Mey.) Massee, Hypholoma fasciculare (Huds.) P. Kumm., Inocybe geophylla (Bull.) P. Kumm., Lactarius torminosus (Schaeff.) Gray, Russula foetens Pers., Scleroderma areolatum Ehrenb. y S. texense Berk. Todos estos son micorrizógenos, a excepción de C. molybdites e H. fasciculare que son especies terrícola y lignícola, respectivamente. Dentro del grupo de los hongos medicinales se citan 82 taxones, entre los que se encuentran Ganoderma lobatum (Cooke) G.F. Atk., Phlebia tremellosa (Schrad.) Nakasone & Burds., Schizophyllum commune, Trametes versicolor (L.) Lloyd y Tremella mesenterica Retz., todos ellos lignícolas. Referente a las especies parásitas, un total de 12 se registran, de las cuales cabe destacar a Heterobasidion annosum (Fr.) Bref. y Fomitopsis pinicola (Sw.) P. Karst. como hongos xilófagos causantes de enfermedades forestales (Ruiz Rodríguez y Pinzón-Picaseño, 1994; Cibrián-Tovar et al., 2007; Romero-Bautista et al., 2010).

A continuación, se presenta la descripción de los nuevos registros para Jalisco y México señalados con ** y • respectivamente, cuya simbología fue representada en el Apéndice 1. Por último, se incluyen láminas de imágenes, una de ellas con algunas de las especies colectadas (Fig. 2) y otra, con fotografías de basidiomas y estructuras microscópicas de los taxones Ductifera exidioidea y Psathyrella longistriata, citados por primera vez para el país (Fig. 3).

Figura 2
Cuerpos fructíferos de algunas especies de Ascomycota y Basidiomycota registradas dentro del Complejo Volcánico de Colima, México. A. Cordyceps militaris (L.) Fr.; B. Amanita muscaria (L.) Lam.; C. Montagnea arenaria (DC.) Zeller; D. Xeromphalina campanella (Batsch) Kühner & Maire; E. Omphalotus mexicanus Guzmán & V. Mora; F. Humaria hemisphaerica (F.H. Wigg.) Fuckel. Fotos: C. Torres-Preciado, D. Figueroa-García y D. Ulloa-Olmos

Figura 3
A. Ductifera exidioidea Lowy (C. Torres-Preciado 471, IBUG); B. esporas alantoides con ápice truncado; C. gleocistidio claviforme con ápice obtuso; D. basidiomas secos de Psathyrella longistriata (Murrill) A.H. Sm. (G. Nieves 276, IBUG); E. esporas elongadas con poro germinal hialino; F. pleurocistidios subutriforme. Fotos: C. Torres-Preciado, M. Herrera-Fonseca y D. Figueroa-García

Ascomycota

Leotiomycetes

Leotiales

Bulgariaceae

** Bulgaria inquinans (Pers.) Fr., Syst. mycol. 2(1): 167. 1822. TIPO: encontrado sobre madera muerta de Quercus y Fagus (Espécimen tipo no designado, ni se menciona en cual herbario se depositó).

= Peziza polymorpha Oeder, Fl. dan.: t. 464. 1769.

≡ Peziza inquinans Pers., Neues Magazin für die Botanik 1: 113. 1794.

≡ Ascobolus inquinans (Pers.) Nees, System der Pilze und Schwämme: 268, t. 39: 296. 1817.

≡ Phaeobulgaria inquinans (Pers.) Nannf., Nova Acta Regiae Societatis Scientiarum Upsaliensis 8(2): 311. 1932.

Apotecio en forma de copa, sésil, 10 mm de diámetro, consistencia gelatinosa, himenio liso, color negruzco; esporas (12.4-)13.2-15.2 × 6.4-7.2 µm, Q=1.7-2.2, elongadas a cilíndricas, en forma de rebanada de sandía, con una estría longitudinal hialina, en algunas con presencia de un cayo en ambos extremos, color verde-olivo.

Material examinado: MÉXICO. Jalisco, municipio Zapotlán el Grande, El Floripondio, camino a las antenas R.M.O., Las Víboras, faldas del Nevado de Colima, 12.VII. 1998, L. Arvizu Franklin 5 (IBUG).

Hábitat: lignícola, sobre madera podrida, gregario en bosque mesófilo de montaña; 2300 m s.n.m.

Distribución: en México ha sido registrada de Morelos (Bautista et al, 1986; Medel et al., 1999), Michoacán (Díaz-Barriga et al., 1988), Oaxaca (Raymundo et al., 2013b) e Hidalgo (Raymundo et al., 2019).

Notas taxonómicas: Bulgaria inquinans se distingue por su himenio liso, que se mancha de negro al tacto y por las esporas color café oscuro. El material estudiado concuerda con lo señalado por Dennis (1981), Phillips (2006) y Beug et al. (2014). Por su parte Breitenbach y Kränzlin (1984) y Raymundo et al. (2019) describen esporas lisas, ampliamente elípticas en forma de limón o reniformes, 9-17 × 6-7.6 µm, mientras que Dennis (1981) y Phillips (2006) las citan de 11-14 × 6-7 µm, medidas que concuerdan con lo observado en el ejemplar revisado.

Pezizomycetes

Pezizales

Rhizinaceae

** Rhizina undulata Fr., Observationes mycologicae 1: 162. 1815. TIPO: en suelo arenoso (Espécimen tipo no designado, ni se menciona en cual herbario se depositó).

= Helvella inflata Schaeff., Fungorum qui in Bavaria et Palatinatu circa Ratisbonam nascuntur Icones 4: 102, t. 153. 1774.

≡ Racodium nigrum Schumach., Enumeratio Plantarum, in Partibus Sællandiae Septentrionalis et Orientalis Crescentium 2: 447. 1803.

≡ Racodium vulgare Pers., Mycologia Europaea 1: 67. 1822.

Apotecio 3-5 cm de diámetro, sésil, margen irregular, con numerosos rizomorfos, color café-anaranjado a café-rojizo negruzco, margen más claro blanquecino-amarillento; esporas (25-)26-31(-37) × 8.5-10 µm, Q=(2.5-)2.8-3.4(-4), cilíndricas a baseliformes, finamente rugosas, bigutuladas, color café-verdoso, con dos apéndices polares, 9-5 × 1-2 µm, dextrinoides en melzer; ascas 400 × 15-20 µm; paráfisis con ápice obtuso a subcapitado, contenido granuloso, muy abundante, color amarillento.

Material examinado: MÉXICO. Jalisco, municipio Zapotitlán de Vadillo, km 4.7 brecha El Milanés, Volcán de Colima, 11.XI.2007, A. Hermosillo 27 (IBUG).

Hábitat: humícola, gregario; bosque de Pinus-Quercus; 2337 m s.n.m.

Distribución: esta especie ha sido reportada para la micobiota mexicana de los estados de Morelos y Puebla (Chacón y Guzmán, 1983), del Estado de México (Frutis et al., 1985; Zarco, 1986), de Michoacán (Gómez Reyes et al., 2014). Se amplía su distribución al registrarse por primera vez de Jalisco.

Notas taxonómicas: el material estudiado concuerda con lo descrito por Dennis (1981), Breitenbach y Kränzlin (1984), Hansen y Knudsen (2000) y Yei-Zeng (2001). Solo difieren en el nombre de la forma que presentan las esporas. Dennis (1981) los llama apículos hialinos en cada extremo, Breitenbach y Kränzlin (1984) apéndices apuntados en ambos extremos, Hansen y Knudsen (2000) como apéndices polares puntiagudos, mientras que Yei-Zeng (2001) solo las describe con apículo grande. La morfología de las esporas es un carácter de importancia para la especie debido al tipo de éstas que presenta.

Sordariomycetes

Hypocreales

Hypocreaceae

** Trichoderma alutaceum Jaklitsch, Fungal Diversity. 48: 69. 2011. HOLOTIPO: Aislado de WU 29177 y depositado con el espécimen teleomorfo como cultivo seco WU 29177a.

≡ Sphaeria alutacea Pers., Commentatio de Fungis Clavaeformibus: 12. 1797.

≡ Cordylia alutacea (Pers) Fr., Observ. Mycol. 2: 317. 1818.

≡ Xylaria alutacea (Pers.) Gray, A natural arrangement of British plants 1: 511. 1821.

≡ Hypocrea alutacea (Pers.) Ces. & De Not., Commentario della Società Crittogamologica Italiana 1(4): 370. 1863.

≡ Cordyceps alutacea (Pers.) Quél., Mémoires de la Société d'Émulation de Montbéliard sér. 2, 5: 487. 1875.

≡ Podocrea alutacea (Pers.) Lindau, Nat. Pflanzenfamilien: 364. 1897.

≡ Podostroma alutaceum (Pers.) G.F. Atk. Bot. Gaz. 40: 416. 1905.

Estroma erecto, claviforme, formado por un pie color anaranjado a café amarillento en seco, de 3-7 × 1-2 cm, superficie irregular, aspecto pruinoso debido a los ostíolos, que se encuentran embebidos en todo el estroma; esporas 3-4 × 2-3 µm, Q=1.1-2, elipsoides, equinuladas, innamiloides, hialinas; ascas (35.1-)40-61.8(-66.5) × (2.8-)2.8-3.4 (-3.6) µm, con 16 esporas, cilíndricas, inamiloides, hialinas.

Material estudiado: MÉXICO. Jalisco, municipio Zapotitlán de Vadillo, Predio La Colmena, km 7-11 después del poblado de Telcruz, ejido Zapotitlán, faldas del Nevado de Colima, 7.IX.2011, C. Torres-Preciado 336 (IBUG); municipio Zapotlán el Grande, km 8-9 del crucero, El Floripondio camino a Las Víboras, Las Antenas, R.M.O., 14.IX.2011, C. Torres-Preciado 376 (IBUG).

Hábitat: lignícola, solitario; bosque de Pinus-Quercus; 1999 m s.n.m.

Distribución: se amplía la distribución de Trichoderma alutaceum al registrarse de Jalisco, especie hasta ahora citada de Chiapas y Durango (Medel, 2002; Raymundo et al., 2012).

Notas taxonómicas: el ejemplar estudiado concuerda con lo descrito por Medel (2002), excepto que menciona esporas con un rango de 3.2-4(-4.8) × 3.2(-4) µm, a diferencia del material revisado que son de menor tamaño, al registrarla de una selva alta perennifolia (Medel, 2002) y al no asociada a bosques de coníferas como lo citado por Dennis (1981). Así mismo se ajusta a las descripciones de Seaver (1910), Dennis (1981), Breitenbach y Kränzlin (1984) y Raymundo et al. (2012), solo que estos autores mencionan el estroma con tonalidades blanquecinas, amarillentas o marrón, a diferencia del material revisado que es de color anaranjado.

Basidiomycota

Agaricomycetes

Agaricales

Agaricaceae

** Lepiota cristata (Bolton) P. Kumm., Der Führer in die Pilzkunde: 137. 1871. TIPO: creciendo en en jardín de J. Cook, 15.IX.1787 (Espécimen tipo no designado, ni se menciona en cual herbario se depositó)

≡ Agaricus cristatus Bolton, An History of Fungusses, Growing about Halifax 1: 7. 1788.

≡ Agaricus colubrinus var. cristatus (Bolton) Pers., Synopsis methodica fungorum 2: 259. 1801.

≡ Lepiota colubrina var. cristata (Bolton) Gray, A natural arrangement of British plants 1: 602. 1821.

≡ Lepiotula cristata (Bolton) E. Horak, Beiträge zur Kryptogamenflora der Schweiz 13: 338. 1968.

= Lepiota cristata var. pallidior Bon, Documents Mycologiques 11(43): 34. 1981.

≡ Lepiota cristata var. macrospora (Zhu L. Yang) J.F. Liang & Zhu L. Yang, Mycotaxon 116: 391. 2011.

Píleo 2-3 cm de diámetro, cónico, escamas aplanadas en toda la superficie, color café chocolate, umbo central del mismo color que las escamas; láminas libres, juntas, angostas, borde liso, color blanco-amarillento; estípite 4-5 × 1-2 cm de largo, central, uniforme, superficie estriado-fibriloso, frágil, sólido, anillo supero, membranoso, colgante, concoloro al estípite y píleo; esporas (6.9-)7-9(-9.5) × 3-4 µm, Q=1.75-3(-3.6), cilíndricas a baseliformes, apice truncado, pared gruesa (≥0.5 µm), gutuladas, contenido granuloso, hialinas; basidios (18-)19-22 × 6-7 µm, claviforme a ventricosos, tetraspóricos, contenido refringente, fíbula basal, hialinos; pleurocistidios no observados; queilocistidios (21-)23-33 × 10-13 µm, claviformes, pared gruesa (1 µm), abundantes, hialinos; pileipellis de tipo himeniforme (20.9-)23.6-63(-77) × 10-15.5(-17.7) µm, claviformes, fíbula basal, hialinos.

Material estudiado: MÉXICO. Jalisco, municipio Zapotlán el Grande, km 5.7 del camino que va hacia las Joyas, Parque Nacional Nevado de Colima, 17.VIII.2011, C. Torres-Preciado 207 (IBUG).

Hábitat: terrícola, gregario; bosque de Pinus-Quercus; 2320 m s.n.m.

Distribución: especie de amplia distribución, pero no común, registrada hasta ahora del hemisferio norte, en Europa, Estados Unidos de América, Japón y México. Para la micobiota mexicana se había reportado de Colima y Veracruz (Murrill, 1911), del Estado de México, Hidalgo, Michoacán, Nuevo León (Valenzuela et al., 1981) y de Oaxaca (Villarruel-Ordaz et al., 2015).

Notas taxonómicas: Lepiota cristata se distingue por presentar una pileipellis himeniforme y esporas espolonadas, y macroscópicamente por el píleo umbonado con tonos café-rojizo de sus escamas concéntricas sobre fondo blanco. El ejemplar examinado concuerda con lo señalado por Murrill (1911), Valenzuela et al. (1981), Breitenbach y Kränzlin (1995) y Vellinga (2001). Se diferencia nuestro material de lo observado por Valenzuela et al. (1981), quienes describen queilocistidios más grandes (24-45 × 7.5-13.5 µm) y de pared delgada. Vellinga (2001), por su parte, describe esporas espolonadas, de tamaño más pequeño, (5-)5.5-8.5(-10) × 2.5-3.5 µm, y una pileipellis de tipo himeniforme. En tanto Breitenbach y Kränzlin (1995) describen esporas truncadas en forma de bala, 5.9-9.3 × 2.7-3.7 µm y una pileipellis himeniforme con elementos claviformes a cilíndricos.

Hygrophoraceae

** Hygrocybe spadicea (Scop.) P. Karst. (como ‘Hydrocybe’), Bidr. Känn. Finl. Nat. Folk 32: 237. 1879. TIPO: Espécimen tipo no designado, ni se menciona en cual herbario se depositó.

≡ Agaricus spadiceus Scop., Flora carniolica 2: 443. 1772.

≡ Hygrophorus spadiceus (Scop.) Fr., Epicrisis Systematis Mycologici: 332. 1838.

≡ Hydrocybe spadicea P. Karst., Bidrag till Kännedom av Finlands Natur och Folk 32: 237. 1879.

≡ Godfrinia spadicea (Scop.) Herink, Sborník Severoceského Musea 1: 66. 1958.

Píleo 41-43 mm de diámetro, cónico, cúspide, muy conspicuo, subviscoso, margen ondulado, color café oscuro en el centro, el resto irregularmente con zonas más claras; láminas subadheridas, subjuntas, borde erodado, color amarillas con tonos mamey; estípite 60-90 × 1-3 mm, central, flexuoso hacia la base, superficie fibrilosa, subviscosa, hueco, color amarillo-verdoso a café muy claro; olor muy desagradable; esporas 10.4-12.4 × 6-7.6 µm, Q=1.5-1.8, elipsoides a elongadas, ápice obtuso y apículo evidente, pared delgada, hialinas; pileipellis un ixocutis, hifas 2.4-3.2 µm de diámetro, pared delgada, septadas, fíbulas y pigmento intracelular, color pardo-amarillento.

Material examinado: MÉXICO. Jalisco, municipio Venustiano Carranza, 3 km antes de La Cañada, carretera Sayula - Venustiano Carranza, 23.VII.1991, M. R. Sánchez-Jácome 107 (IBUG).

Hábitat: humícola, gregario; bosque de Pinus; 2000 m s.n.m.

Distribución: con distribución en Europa y Estados Unidos de América (Arnolds, 1990). Se amplía su distribución en México al citarse para Jalisco, ya que solo se conocía del Estado de México (Santillán y Valenzuela, 1986).

Notas taxonómicas: Hygrocybe spadicea se caracteriza por el color del píleo y el tamaño de sus esporas. El material examinado concuerda con lo mencionado por Santillán y Valenzuela (1986) y Arnolds (1990). Este último describe esporas más grandes, 8-12(-13.5) × 5-9 µm, que lo observado en el ejemplar estudiado, 10.4-12.4 × 6-7.6 µm. Por su parte, Santillán y Valenzuela (1986) mencionan esporas ligeramente más pequeñas, 8-11(-12) × (4.8-)5.6-7.2 µm. Estos últimos autores señalan además a Hygrocybe immutabilis (Peck) Murrill como una especie afín; sin embargo, su píleo es de color café amarillento a café verdoso.

Hymenogastraceae

** Gymnopilus sapineus (Fr.) Murrill, Mycología 4(5): 254. 1912. TIPO: Espécimen tipo no designado, ni se menciona en cual herbario se depositó.

≡ Agaricus hybridus Sowerby, Col. fig. Engl. Fung. Mushr. 2(18): tab. 221. 1799.

≡ Agaricus penetrans Fr., Observationes mycologicae 1: 23. 1815.

≡ Agaricus sapineus Fr., Systema Mycologicum 1: 239. 1821.

≡ Agaricus liquiritiae subsp. sapineus (Fr.) Pers., Mycologia Europaea 3: 184. 1828.

≡ Flammula sapinea (Fr.) P. Kumm., Der Führer in die Pilzkunde: 82. 1871.

≡ Gymnopilus penetrans (Fr.) Murrill, Mycologia 4(5): 254. 1912.

≡ Gymnopilus sapineus (Fr.) Maire, Fungi Catalaunici: Contributions à l'étude de la Flore Mycologique de la Catalogne: 96. 1933.

Píleo 3-5 cm de diámetro, plano-convexo, margen entero, superficie seca, escamoso, escamas aplanadas, color café; láminas adheridas, juntas, anchas, borde serrado a crenado, color amarillo ferruginoso; estípite 1-2 × 0.7-1.2 cm, central, uniforme, fibriloso, firme, sólido, micelio algodonoso basal, color blanco-amarillento; restos de velo presente; contexto suave, color amarillo, olor fúngico; KOH mancha el píleo de color café-rojizo obscuro a negruzco en seco; esporas 8-8.8 × 5.2-6 µm, Q=1.4-1.6, elipsoides, verrugosas, verrugas medianas, ápice subagudo a agudo, sin placa, dextrinoides, color anaranjado-amarillento; pleurocistidios no observados; queilocistidios 27.2-42.4 × 6.8-8.8 µm, langeniforme-subutriformes, ápice subcapitado-capitado, fíbula basal, hialinos o contenido amarillento; trama himenófora subparalela, hifas septadas, con fibulas, hialinas a amarillentas; hifas laticíferas presentes, tortuosas, color anaranjado-amarillentas; trama del píleo radial, compacta, hifas de pared delgada-subgruesa, color amarillentas; pileipellis un cutis, hifas con bandas conspicuas, septadas, fíbulas presentes, pigmento incrustado; caulocistidios 48-59.2 × 3.6-4.8 µm, cilíndricos, ápice capitado, con o sin contenido amarillento.

Material examinado: MÉXICO. Jalisco, municipio de Zapotlán el Grande, 100 m a 3.5 km después del crucero El Floripondio camino a Las Víboras, Las antenas R.M.O. faldas del Nevado de Colima, 13.XI.2012, C. Torres-Preciado 570 (IBUG).

Hábitat: lignícola, gregario; bosque de Pinus-Quercus con presencia de Abies Mill. 2200-2450 m s.n.m.

Distribución: Gymnopilus sapineus es una especie de amplia distribución de acuerdo con lo citado en la bibliografía, se conoce de Estados Unidos de América, Sudamérica, Europa, África, Asia y Australia; para México solo se conocía del estado de Oaxaca (Guzmán-Dávalos, 1996).

Notas taxonómicas: la especie aquí descrita se caracteriza por el color y ornamentación del píleo, y la trama radial de éste. El ejemplar se determinó según lo descrito por Hesler (1969) y Guzmán-Dávalos (1996), quienes la citan con presencia de caulocistidios capitados, velo presente, con píleo finamente escamoso e hifas de la pileipellis con pigmento en bandas, caracteres observados en el material revisado.

Inocybaceae

** Crepidotus applanatus (Pers.) P. Kumm., Der Führer in die Pilzkunde: 74. 1871. NEOTIPO: Loch Lomond, en tocón de madera, 27.VIII.1963, E. Kits van Waveren (L 986.062-019).

≡ Agaricus applanatus Pers., Observationes mycologicae 1: 8. 1796.

≡ Agaricus planus Pers., Synopsis methodica fungorum: 480. 1801.

≡ Crepidotus globiger (Berk.) Sacc., Syll. Fung. 5: 879. 1887.

≡ Crepidotus putrigenus (Berk. & M.A. Curtis) Sacc., Syll. Fung. 5: 883. 1887.

≡ Crepidotus applanatus var. subglobiger Singer, Beih. Nova Hedwigia 44: 478. 1973.

Píleo 1-4.5 cm de diámetro, conchado o petaloide, liso, margen estriado cuando joven, color blanco a marrón pálido; láminas en forma radiada, poco separadas, onduladas, color blanquecino a ocre; esporas 4.5-7.8(-9) × 4-7(-7.2) µm, Q=1-1.27(-1.28), en su mayoría globosas a subglobosas, algunas ampliamente elipsoides, equinuladas, gutuladas, apículo prominente, pared gruesa (0.79 µm), hialinas; pleurocistidios no observados; queilocistidios 14-29(-30.8) × 6-8(-10) µm, claviformes a cilíndricos, pocos lecitiformes, en su mayoría con ápice subcapitado a obtuso, hialinos, contenido refringente y fíbula basal.

Material examinado: MÉXICO. Jalisco, municipio Zapotlán el Grande, km 6.4 del camino que va hacia las Joyas, Parque Nacional Nevado de Colima, 17.VIII.2011, C. Torres-Preciado 218 (IBUG).

Hábitat: lignícola, solitario a gregario; bosque de Pinus-Quercus; 2334 m s.n.m.

Distribución: Crepidotus applanatus se tiene registrada de Europa, Estados Unidos de América y Asia (Breitenbach y Kränzlin, 2000). Se amplía su distribución al citarse de Jalisco, ya que solo se conocía de los estados de Chiapas y Oaxaca (Bandala y Montoya, 2008).

Notas taxonómicas: de acuerdo con lo mencionado por Bandala y Montoya (2008), una especie afín es Crepidotus cuneiformis Pat., de la cual se distingue por el tamaño más pequeño y forma de sus esporas, 5.5-7 × 5.5-6.5(-7) µm, Q=1.03, globosas a subglobosas equinuladas, pero se puede diferenciar por la ausencia de pleurocistidios y la presencia de queilocistidios lageniformes y capitados. Por otra parte, Breitenbach y Kränzlin (2000) mencionan que la especie es casi imposible de determinar macroscópicamente, debido a la diferente coloración que presenta durante su desarrollo. Se puede confundir macroscópicamente con Crepidotus mollis (Schaeff.) Staude, pero se diferencia de ésta por el tamaño y forma de las esporas, 6.5-9.2 × 4.8-6.4 µm y queilocistidios vs. 30-60 × 5-9 µm cilíndricos a legeniformes.

** Inocybe obsoleta (Quadr. & Lunghini) Valade, Index fungorum 165: 1. 2014. HOLOTIPO: FRANCIA. Dept. Seine-et-Oise: Yerves, Chateau de la Grange, 18.VIII.1942, Romagnesi 42.59, herb. Romagnesi (PC).

≡ Inocybe obsoleta Romagn., Flora Analytique des Champignons Supérieurs: 218. 1953.

= Inocybe rimosa var. obsoleta Quadr. & Lunghini, Quaderni dell'Accademia Nazionale dei Lincei 264: 109. 1990.

Píleo 4 cm de diámetro, cónico, umbo central, margen estriado-plicado, color café-crema; láminas subadheridas, juntas, angostas, borde entero, concoloro al píleo; estípite 7 × 1-2 cm central, uniforme, superficie estriado-flocoso, frágil, sólido, concolor al píleo; esporas 10.1-10.9 × 6-6.8 µm, Q=1.5-1.8, ampliamente elipsoides a elongadas, lisas, pared gruesa (≥0.4 µm), gutuladas, contenido refringente, coloración café-amarillento; basidios 35-40 × 10-11.8 µm, claviformes, tetraspóricos, hialinos, fíbula basal; pleurocistidios ausentes; queilocistidios 21-54(-55) × 8-19 µm, claviformes, cilíndricos a lageniformes, fíbula basal, hialinos.

Material estudiado: MÉXICO. Jalisco, municipio Zapotlán el Grande, 100 m después del crucero, El Floripondio, camino a las antenas R.M.O., Las Víboras, faldas del Nevado de Colima, 24.VIII.2011, C. Torres-Preciado 262 (IBUG).

Hábitat: terrícola, solitario a gregario; bosque de Pinus-Quercus; 2362 m s.n.m.

Distribución: es una especie registrada de Europa y Estados Unidos de América (Kuyper, 1986; Larsson et al., 2009; Fernández-Sasia, 2013). De México se tiene citada del Estado de México (Zarco, 1986; Pérez-Silva et al., 2011) y de Sonora (Pérez-Silva et al., 2006).

Notas taxonómicas: Inocybe obsoleta se caracteriza macroscópicamente por la presencia de un velo blanco o blanquecino en basidiomas jóvenes y la ausencia de olor, y microscópicamente por el tamaño pequeño de las esporas. Es afín a Inocybe rimosa (Bull.) P. Kumm.; sin embargo, se diferencia por los tonos amarillo oliváceo de sus láminas, el olor espermático y la presencia de esporas más grandes, 9.6-14 × 5.4-7.5 µm (Breitenbach y Kranzlin, 2000). La especie aquí descrita ha sido considerada coespecifica o como simple forma o variedad de Inocybe rimosa. No obstante, de acuerdo con estudios moleculares realizado por Larsson et al. (2009), son dos especies distintas. El material estudiado concuerda con lo descrito por Kuyper (1986) y Fernández-Sasia (2013).

Pleurotaceae

** Hohenbuehelia spathulata (Pers.) Singer, Fieldiana Botany 21: 42. 1989. TIPO: Espécimen tipo no designado, ni se menciona en cual herbario se depositó.

≡ Agaricus spathulatus Pers., Synopsis methodica fungorum 2: 479. 1801.

≡ Agaricus petaloides var. spathulatus (Pers.) Fr., Systema Mycologicum 1: 183. 1821.

≡ Pleurotus petaloides var. spathulatus (Pers.) P. Karst., Meddn Soc. Fauna Flora fenn. 14: 85. 1887.

≡ Pleurotus spathulatus (Pers.) Peck, Annual Report on the New York State Museum of Natural History 39: 63. 1887.

= Agaricus petaloides Bull., Herbier de la France 5: tab. 226. 1785.

= Hohenbuehelia petalodes (Bull.) Schulzer, Verhandlungen der Zoologisch-Botanischen Gesellschaft Wien 16: 45. 1866.

Píleo 5-20 mm de diámetro, forma conchada o petaloide, superficie ligeramente tomentosa, margen estriado, arqueado, color café; láminas decurrentes juntas, angostas, borde entero, color café más claro hacia el borde; estípite 1-3 × 0.7 cm, lateral, superficie estriada longitudinalmente, consistencia flexible, color café; olor y sabor fúngico; esporas (4.1-)4.3-6.2(-6.5) × 3.5-3.7(-5.1) µm, Q=1.07-1.31(-1.38), globosas a subglobosas hasta ampliamente elipsoides, apículo prominente, contenido refringente, hialinas, inamiloides; basidios 23-26(-30) × 5-7 µm, tetraspóricos, claviformes, hialinos; cistidios 44-53(-56) × 9-16 µm, metuloides con presencia de cristales en el ápice, setiformes a fusiformes, pared gruesa (≥0.5 µm), ápice rostrado, abundantes, coloración verdosa.

Material examinado: MÉXICO. Jalisco, municipio Zapotlán el Grande, 4 km después del crucero, camino que va hacia los cultivos de aguacate, secundario al camino hacia las antenas, El Floripondio, faldas del Nevado de Colima, 11.VII. 2012, C. Torres-Preciado 511 (IBUG).

Hábitat: lignícola, solitario a gregario; bosque de Pinus-Quercus; 2500 m s.n.m.

Distribución: se amplía su distribución al citarse para Jalisco, ya que solo se conocía para el estado de Veracruz (Gándara-Zamorano y Ramírez-Cruz, 2005).

Notas taxonómicas: una especie similar es Hohenbuehelia petaloides (Bull.) Schulzer, pero se diferencia principalmente por presentar un píleo tomentoso, de color café-amarillento (Gándara-Zamorano y Ramírez-Cruz, 2005). Microscópicamente se observan esporas elipsoides a ampliamente elipsoides (5-)5.5-7.5(-8) × (3-)3.5-4.5(-5) µm, Q=1.2-1.66. Ambas especies presentan metuloides con cristales en el ápice.

Psathyrellaceae

• Psathyrella longistriata (Murrill) A.H. Sm., Mushrooms in their natural habitats: 552. 1949. TIPO: ESTADOS UNIDOS DE AMÉRICA. Washington: Seattle, sobre tierra y restos de madera, 20.X.1911, W. A. Murrill 233 (WTU). Fig. 3 (D, E y F).

≡ Stropharia longistriata Murrill, Mycologia 4(6): 301. 1912.

Píleo 20-40 mm de diámetro, convexo-aplanado, superficie glabra, margen estriado, color café a café-grisáceo; láminas adheridas, muy juntas, subanchas, borde entero, color café oscuro o café chocolate; estípite 60-90 × 1-3 mm, central, más o menos uniforme, superficie fibrilosa, hueco, blanquecino, con anillo apical, membranoso, estriado, color blanco con borde más oscuro; esporas 8-10.4 × 4-4.4 µm, Q=1.7-2, elongadas, lisas, poro germinal hialino, pared gruesa (≥0.5 µm), color verde-olivo, café-verdoso; pleurocistidios 37.6-50.4 × 9.6-14.4 µm, subutriformes a claviformes, algunos constricción central, ápice subcapitado a obtuso, fíbula basal, hialinos; pileipellis un epitelio, 20.8-36.8 × 16.8-32 µm, de células claviformes, subglobosas, color anaranjado-amarillento.

Material estudiado: MÉXICO. Jalisco, municipio Zapotlán el Grande, Puerto El Floripondio, 20 minutos al suroeste de Ciudad Guzmán, 7.VII.1984, G. Nieves 276 (IBUG).

Hábitat: lignícola, sobre madera en descomposición, gregario; bosque de Pinus-Quercus; sin datos de altitud. La especie en estudio ha sido citada de hábitat humícola o creciendo sobre restos de madera (Desjardin et al., 2015).

Distribución: se conoce su distribución en Estados Unidos de América y Australia (Smith, 1972, 1975; Desjardin et al., 2015). Esta especie se registra por primera vez para México.

Notas taxonómicas: Psathyrella longistriata se distingue por el píleo glabro con escasas fibrillas y margen estriado, con estípite de color blanquecino y la presencia de un anillo bien definido, estriado en la superficie. El material examinado concuerda con lo descrito por Smith (1972, 1975) y Desjardin et al. (2015). Una especie afín a Psathyrella longistriata es P. ellenae A.H. Sm.; sin embargo, esta última no presenta un anillo estriado. Otra especie parecida es P. barrowsii A.H. Sm. pero se diferencia al carecer de fibrillas en el píleo, estrías en el margen y en el anillo (Desjardin et al., 2015).

Strophariaceae

** Pholiota lubrica (Pers.) Singer, Lilloa 22: 516. 1951. TIPO: Espécimen tipo no designado, ni se menciona en cual herbario se depositó.

≡ Agaricus lubricus Pers., Synopsis methodica fungorum 2: 307. 1801.

≡ Flammula lubrica (Pers.) P. Kumm., Der Führer in die Pilzkunde: 81. 1871.

≡ Inocybe lubrica (Pers.) Roze, Bulletin de la Société Botanique de France 23: 113. 1876.

≡ Dryophila lubrica (Pers.) Quél., Enchiridion Fungorum in Europa media et praesertim in Gallia Vigentium: 70. 1886.

≡ Flammopsis lubrica (Pers.) Fayod, Annales des Sciences Naturelles Botanique ser. 7, 9: 356. 1889.

≡ Gymnopilus lubricus (Pers.) S. Imai, Journal of the Faculty of Agriculture of the Hokkaido Imperial University 43: 231. 1938.

≡ Pholiotina lubrica (Pers.) Singer, Lilloa 22: 516. 1951.

= Agaricus decussatus Fr., Epicrisis Systematis Mycologici: 185. 1874.

= Agaricus decussatus subsp. illustris Kalchbr., Icones selectae Hymenomycetum Hungariae 2: 26, t. 25: 1. 1874.

= Pholiota lenta var. medullata Wichanský, Mykologicky Sbornik: 144. 1967.

Píleo 1.5 cm de diámetro, convexo, recto, superficie viscosa-pruinosa, margen entero, color anaranjado amarillento con tonos anaranjado-rojizo más obscuro hacia el centro; láminas adheridas, subdistantes, angostas, borde crenado, color amarillo; estípite 5 × 1-2 cm, central, uniforme, rígido, color blanco con tonos café-amarillentos; esporas 6-8(-8.5) × 3.5-4.4(4.5) µm, Q=(1.5-)1.55-2(-2.12), elipsoides, en su mayoría elongadas a cilíndricas, apículo muy conspicuo, ápice truncado con poro germinal, pared gruesa (≥0.5 µm), contenido granuloso refringente, inamiloides, gutuladas, color café-amarillento; basidios (21-)21.8-25.01(-25.1) × (5.7-)6-7(-7.4) µm, claviformes, tetraspóricos, abundantes, contenido refringente, hialinos; pleurocistidios (50-)58-71(-74) × (11-)12-19(-20) µm, ventricosos, ápice capitado, pared gruesa (≥0.5 µm), fíbula basal, abundantes, hialinos; queilocistidios 50-65(-68) × 11-17 µm, ventricosos, ápice capitado, similares a los pleurocistidios, pared gruesa (≥1 µm), fíbula basal, abundantes, hialinos; pileipellis un ixocutis, hifas 5.1-12.5 µm, pigmento incrustado conspicuo, pared gruesa (≥0.5 µm), color café-amarillento.

Material estudiado: MÉXICO. Jalisco, municipio de Zapotlán el Grande, 8 km después del crucero, El Floripondio, camino a Las Víboras, antenas R.M.O., El Pajarito, faldas del Nevado de Colima, 26.IX.2011, C. Torres-Preciado 405 (IBUG).

Hábitat: terrícola, gregario; bosque de Pinus-Quercus con elementos de Abies; 2739 m s.n.m.

Distribución: Pholliota lubrica es citada de Europa y Estados Unidos de América (Breitenbach y Kränzlin, 1995; Noordeloos, 1999). Su distribución en México hasta ahora fue registrada del Estado de México (Guzmán, 1970; Valenzuela et al., 2004).

Notas taxonómicas: de acuerdo con Holec (2001), una característica de importancia taxonómica dentro del género Pholiota es la presencia de cistidios para dividirlo en subgéneros. Pholiota lubrica se caracteriza por la ausencia de crisocistidios según lo señalado por Breitenbach y Kranzlin (1995), quienes mencionan la presencia de hifas pigmentadas con incrustaciones muy conspicuas, así como los cistidios con ornamentaciones en su ápice, características que coinciden con lo observado en el material estudiado. Conforme con Noordeloos (1999), Pholliota lenta (Pers.: Fr.) Singer es parecida microscópicamente por la forma de esporas; sin embargo, la coloración de su basidioma es de tonos grisáceo-ocre a oscuros.

Auriculariales

Exidiaceae

• Ductifera exidioideaLowy, J. Elisha Mitchell Scient. Soc. 80: 65. 1964. TIPO: GUATEMALA. Finca San Mayor, km 33 al oeste de la ciudad de Guatemala, sobre ramas caídas de Quercus sp., 25.VI.1963, G195 (LSUM). (Fig. 3 A, B, C ).

Hongo gelatinoso de forma foliosa-petaloide, superficie pegajosa provista con numerosos gránulos negros, color blanquecino a marrón; esporas 18.7-21.7(-22.6) × 4.4-5.7 µm, Q=3.8-4.58(-4.6), alantoides, ápice truncado, gutuladas, contenido refringente, hialinas; basidios 15.1-20.5(-21) × 8.8-11.8 µm, tetraspóricos, con fragmobasidios de tipo ovoide, hialinos; gleocistidios 39.6-84 × 4-9.1 µm, claviformes, ápice obtuso, muy abundantes, hialinos a café amarillento.

Material examinado: MÉXICO. Jalisco, municipio Zapotlán el Grande, 1 km después del crucero, 2 km después del camino que va hacia las antenas, El Floripondio, faldas del Nevado de Colima, 27.VI.2011, C. Torres-Preciado 471 (IBUG).

Hábitat: lignícola, gregario sobre una rama de Quercus L. en bosque de Pinus-Quercus; 2400 m s.n.m.

Distribución: la especie solo se ha citado de Guatemala (Lowy, 1964; Flores-Arzú et al., 2012) e India (Mahamulkar et al., 2002).

Notas taxonómicas: Ductifera exidioidea se caracteriza por sus esporas alantoides y gleocistidios hialinos, con muy escaso o sin contenido granular. El material estudiado concuerda con lo descrito por Lowy (1964), excepto por el tamaño de las esporas las cuales son más pequeñas, 15-18 × 4.5-5.5 µm con respecto a nuestro ejemplar. Una especie afín es Ductifera sucina (Möller) K. Wells; sin embargo, esta se diferencia por la textura suave, cerosa-gelatinosa y color del basidioma café pálido, tamaño de esporas (9.6.-12.8 × 4-6.4 µm) y forma de basidios oblongo-claviformes (Lowy, 1964).

Boletales

Sclerodermataceae

** Scleroderma aff. pseudostipitatum Petch, Ann. R. bot. Gdns Peradeniya 7(1): 76. 1919. TIPO: SRI LANKA Hakgalla, IX.1908, T. Petch, sobre suelo (K).

≡ Veligaster pseudostipitatus (Petch) Guzmán & Tapia, Documents Mycologiques 25(98-100): 191. 1995.

Basidioma 150-250 × 120-220 mm, globoso, estipitado 10-30 x 5-10(-20) mm, bien formado y con cordones miceliares blanquecinos; peridio delgado, 1 mm de grosor, rubescente, escamas planas con apariencia de verrugas, color café a café-rojizo obscuro; gleba color café-grisáceo cuando maduro; esporas (8-)10.4-12.8 µm, no incluye ornamentación, Q=1, globosas, equinuladas, espinas cónicas 1.6-2.4 µm de altura, algunas curveadas, color verde-olivo, amarillentas.

Material estudiado: MÉXICO. Jalisco, municipio de Zapotlán el Grande, El Floripondio, Nevado de Colima, 9.IX.1998, G. Guzmán 32654 (IBUG, XAL).

Hábitat: terrícola, gregario; bosque de Pinus-Quercus; sin datos de altitud.

Distribución: la especie hasta ahora fue registrada de Sri Lanka y México, de este último citada del estado de Veracruz (Guzmán et al., 2013).

Notas taxonómicas: el material estudiado concuerda con lo observado por Guzmán et al. (2013), quien describe a Scleroderma spseudostipitatum con un basidioma estipitado con esporas (8.3-)10-14(-15) µm, equinuladas con espinas 1-2(-2.5) µm, tamaño más grande que lo observado en el ejemplar aquí registrado. Una especie afín es S. verrucosum (Bull.) Pers. con esporas de (8-)9-12(-14) µm, pero con estípite poco desarrollado y S. nitidum Berk. de (6-)7-11(-13) µm, ambas especies con espinas más pequeñas a lo observado. Por su parte, Rifai (2017) diferencia a S. spseudostipitatum de S. nitidum por el diámetro más pequeño de sus esporas (6.6-9 µm), espinas cónicas de hasta 1.8 µm y el peridio con escamas café-rojizas. De acuerdo con la literatura consultada, no es clara la delimitación de S. pseudostipitatum y sus especies similares, por lo que el material aquí revisado se identifica como afín a esta especie, en espera que futuros estudios moleculares puedan elucidar los complejos de especies de este género.

Discusión

El número de taxones determinados, como resultado del presente trabajo, se incrementó de 140 a 408, de las cuales 30% se consideran potencialmente de importancia económica y ecológica por su valor comestible y/o micorrizógeno.

Se detectó que algunas especies típicas de cierto tipo de bosque están también presentes en otro, como es el caso de Laccaria laccata registrada del BP y encontrándose al igual en el BPE y BMM; situación similar con lo observado por Fierros et al. (2000) y en el área de estudio. Esto puede deberse, según lo mencionado por Fierros et al. (2000), a que los lugares muestreados tienen características peculiares donde la comunidad florística es muy variable y en la que puede asociarse al BPE, donde algunos elementos de ambos llegan a traslaparse, ocasionando la existencia de especies compartidas, situación observada en este estudio. Lo anterior descrito, se observa en especies micorrizógenas como Amanita caesarea (Scop.) Pers., la cual puede asociarse a especies de pino o encino. Asimismo, especies como Lentinus crinitus y Stereum ostrea, por citar algunos ejemplos, se tienen reportadas tanto de bosques templados como de tropicales (Frutis-Molina y Pinzón-Picaño, 1997; Esqueda-Valle et al., 1999; Chanona-Gómez et al., 2007; Villarruel-Ordaz et al., 2015).

La cita de 183 registros nuevos para el CVC es el resultado del estudio, en su mayoría, de las colecciones obtenidas en los últimos diez años, así como de la revisión o corroboración del material depositado en la colección micológica, lo que nos muestra a su vez lo mucho que falta por trabajar.

El listado de los 408 taxones registrados puede considerarse representativo, dado que supera en mucho lo encontrado en catálogos previos, no solo para la zona del CVC, sino también de otras contribuciones micobióticas realizadas en Colima y Jalisco (López-Ramírez y Medel, 2016; Padilla-Velarde et al., 2016; Terríquez Villanueva et al., 2017; Rodríguez et al., 2018, 2019). Es importante mencionar que se observaron localidades o municipios poco o nada explorados como es el caso de Zapotiltic, del que no se contaba con ningún registro, y que ahora aporta 10 este trabajo. Sin embargo, se considera necesario continuar con las exploraciones micológicas que enriquezcan el catálogo de hongos del área de estudio.

Asimismo, un mayor conocimiento de la micobiota del Complejo Volcán Nevado de Colima podría permitir evaluar su diversidad fúngica, distribución actual, y establecer estrategias de un posible aprovechamiento, manejo y conservación en esta zona reconocida por su alto endemismo en flora y fauna (Segura-Trujillo y Navarro Pérez, 2010).

Con base en los resultados obtenidos de las especies fúngicas determinadas, se muestra la importancia de este recurso para su posible aprovechamiento como fuente alimenticia local, y su manejo forestal en esta región que comprende el CVC, ya que desafortunadamente no son consumidos o aprovechados por los lugareños de estas localidades. Por lo anterior, se considera necesario conocer sobre su micobiota, más aún en este tipo de zonas en la que convergen tanto bosques templados como tropicales, siendo estos últimos tan escasamente explorados.

Otro aspecto importante para mencionar es sobre endemismo en hongos, de la que pocos estudios se tienen, que nos permitan conocer con exactitud la distribución tan amplia que muchas de las especies presentan. De acuerdo con la Norma Oficial Mexicana NOM-059-SEMARNAT-2020, se enlistan 46 especies de hongos bajo alguna categoría de riesgo, de las cuales nueve se presentan dentro del CVC, en donde ocho especies están bajo la categoría de amenazada (A) y una citada como sujeta a protección (Pr) (Cuadro 3). Asimismo, dentro de las categorías y criterios de la lista roja de la UICN (International Union for Conservation of Nature), de la que incluye 280 especies de hongos, solo una de ellas se tiene registrada del Complejo Volcánico Colima, Boletinellus merulioides (Schwein.) Murrill, catalogada bajo el estatus de vulnerable (VU) (UICN, 2020).

Cuadro 3
Especies de hongos incluidas en la NOM-059-SEMARNAT-2020 (SEMARNAT, 2020) presentes en el Complejo Volcánico de Colima, México. A=Amenazada; Pr=Sujeta a protección especial

Especies	Categoría
Amanita muscaria (L.) Lam.	A
Cantharellus cibarius var. cibarius=C. cibarius Fr.	Pr
Gomphidius rutilus (Schaeff.) S. Lundell	A
Hygrophorus russula (Schaeff. ex Fr.) Kauffman	A
Morchella angusticeps Peck	A
Morchella conica=M. esculenta (L.) Pers.	A
Morchella costata Pers.	A
Morchella esculenta var. umbrina=M. esculenta (L.) Pers.	A
Psilocybe mexicana R. Heim	A
Psilocybe zapotecorum R. Heim	A

Agradecimientos

Los autores agradecen a Jacqueline Reynoso Dueñas por la revisión del manuscrito y sus valiosos comentarios. A Daniel Ulloa Olmos por la elaboración del mapa del área de estudio y el apoyo de Adrián Galván Corona, por el material fotográfico.

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Apéndices

Apéndice 1
Listado de hongos registrados para el complejo Nevado de Colima, Jalisco, México. Se listan todos los taxones de hongos hasta ahora registrados. Se incluyen los nombres abreviados de los colectores y, para cada ejemplar, su número de colecta. Las citas nuevas para el área de estudio son señaladas con * y un superíndice con letra indicando el municipio al que pertenecen: ^aSan Gabriel; ^bTonila; ^cTuxpan; ^dZapotiltic; ^eZapotitlán de Vadillo; ^fZapotlán el Grande; ^gComala. Los registros nuevos para Jalisco y Colima se señalan con ** y *** respectivamente y para México con •. Las especies previamente citadas en la literatura se señalan con un superíndice con número para identificar de donde fueron tomadas: ¹Guzmán-Dávalos, 2003; ²Montañez et al., 2016; ³Guzmán-Dávalos y Guzmán, 1995; ⁴Guzmán, 1998; ⁵Sánchez-García et al., 2013; ⁶García-Jimenéz, 1999; ⁷Raymundo et al., 2013a; ⁸Valenzuela et al., 1994; ⁹Sánchez-Jácome y Guzmán-Dávalos, 1997; ¹⁰Sánchez-Jácome y Guzmán-Dávalos, 2011; ¹¹Uitzil-Colli y Guzmán-Dávalos, 2019; ¹²Sánchez-Jácome y Guzmán-Dávalos, 2005. Las abreviaturas utilizadas para tipo de sustrato, importancia ecológica y/o económica y tipo de vegetación son las siguientes: F=fimícola; Fi=fitopatógeno; Fu=fungícola; Hu=humícola; I=entomopatógeno; L=lignícola; Pp=parásito de plantas; T=terrícola; A=alucinógeno; C=comestible; D=destructor de madera; M=micorrizógeno; Me=medicinal; V=venenoso; S/D=sin datos; s.l.=sensu lato; s.n.=sin número; BMM=bosque mesófilo de montaña; BP=bosque de Pinus; BPA=bosque de Pinus-Abies; BPE=bosque de Pinus-Quercus; BTC=bosque tropical caducifolio; BTSC=bosque tropical subcaducifolio y CM=cultivo de maíz. Las abreviaciones de los nombres de los colectores se encuentran en el Apéndice 2. Los datos completos de las localidades aquí enumeradas, se incluyen en el Cuadro 1. Todos los ejemplares se encuentran depositados en la Colección Micológica del Herbario IBUG

	Sustrato	Importancia	Colector	Tipo de vegetación	Localidad
ASCOMYCOTA
LEOTIOMYCETES
HELOTIALES
CHLOROCIBORIACEAE
*f,***gChlorociboria aeruginascens (Nyl.) Kanouse ex C.S. Ramamurthi, Korf & L.R. Batra	L		CT 960, CTP 199	BMM, BPE	1, 38
LACHNACEAE
Erioscyphella abnormis (Mont.) Baral, Šandová & B. Perić	L		AL 17	BPE	1
LEOTIALES
BULGARIACEAE
**fBulgaria inquinans (Pers.) Fr.	L		LAF 5	BPE	1
LEOTIACEAE
*fLeotia lubrica (Scop.) Pers.	T	M, Me	JPDN 6, SGCO 13	BPE	1
PEZIZOMYCETES
PEZIZALES
DISCINACEAE
Discina melaleuca Bres.	T		AT s.n.	BP	7
*fGyromitra infula (Schaeff.) Quél.	T	M, V	CTP 403, YA 85	BP, BPE	1, 4
HELVELLACEAE
10Helvella acetabulum (L.) Quél.	T	C, M	CDL s.n., MRSJ 948	BPE, SD	1, 20
*a,eHelvella crispa (Scop.) Fr.	T	C, M, Me	AT s.n., CTP 359, FJT 584, MH 766, OR 1991	BP, BPA, BPE	1, 6, 7, 9, 19, 28
Helvella elastica Bull.	T	C, M	MH 489	BPE	1
*a,10Helvella lacunosa Afzel.	T	C, M, Me	FL 3401, MH 722, OR 1992	BPA, BPE, SD	1, 6, 9, 20, 27, 28
*e,10Helvella macropus (Pers.) P. Karst.	T	C, M	MH 697, RMA s.n., RZV 317	BMM, BPA, BPE, SD	1, 6, 14, 27
Helvella subglabra N.S. Weber	T	C, M	FJT 589	BPE	1
MORCHELLACEAE
11Morchella complejo angusticeps Peck	T	C, M	TPF 8	BPE	1
11Morchella complejo costata Pers.	T	C, M	FL 3402	BPE	1
Morchella complejo esculenta (L.) Pers.	T	C, M, Me	BCD 24	BPE	1
11Morchella guatemalensis Guzmán, M.F. Torres & Logem.	T	C, M	LGD 7547	BPE	1
PEZIZACEAE
1Peziza atrovinosa Cooke & W.R. Gerard	T		LGD 4212	BPE	1
Peziza badia Pers.	Hu	C	MRSJ 947	BPE	1, 9
1Peziza howsei Roze & Boud.	Hu		LGD 2164	BPE	1
12Peziza praetervisa Bres.	T		LGD 3570	BPE	9
PYRONEMATACEAE
*fAleuria aurantia (Pers.) Fuckel	L	C	OR 698	BPE	1
1Geopyxis carbonaria (Alb. & Schwein.) Sacc.	T		IA 1115	BPE	1
*fHumaria hemisphaerica (F.H. Wigg.) Fuckel	T		AT s.n., CTP 445	BP, BPE	1, 7
10Otidea alutacea (Pers.) Massee	Hu		ECE 18	BPE, SD	1, 20
Otidea alutacea var. microspora Kanouse	Hu		DGS 448, MRSJ 943	BMM, BPE	1, 15
10Otidea onotica (Pers.) Fuckel	Hu	C	AT s.n.	BPE, SD	7, 20, 27
*eScutellinia scutellata (L.) Lambotte	Hu		CTP 394, MH 1617	BMM, BPE	1, 14
Sowerbyella rhenana (Fuckel) J. Moravec	Hu, L		APA 17	BPE	1
T
Tarzetta catinus (Holmsk.) Korf & J.K. Rogers			AL 188-D	BPE	1
1Trichophaea woolhopeia (Cooke & W. Phillips) Boud.	T		AT s.n.	BPE	1
RHIZINACEAE
**eRhizina undulata Fr.	Hu		AH 27	BPE	16
SARCOSCYPHACEAE
Microstoma floccosum (Sacc.) Raitv.	L		HEFL s.n., KE 39	BPE	1, 2
*f,***gSarcoscypha coccinea (Gray) Boud.	L		DGBA 3, CTP 163	BMM, BPE	1, 37
SORDARIOMYCETES
HYPOCREALES
CORDYCIPITACEAE
*fCordyceps militaris (L.) Fr.	I	Me	CA 25	BPE	1
HYPOCREACEAE
*a,10Hypomyces chrysospermus Tul. & C. Tul.	Fu		AT s.n., CTP 99, MH 725, OR 1990	BPA, BP, BPE, SD	1, 6, 7, 9, 20, 27, 28
*fHypomyces hyalinus (Schwein.) Tul. & C. Tul.	Fu		AF 1, GG 24615	BPE	1, 23
10Hypomyces lactifluorum (Schwein.) Tul. & C. Tul.	Fu	C, Me	CTP 583, IA 809, MH 721	BPA, BPE, SD	1, 3, 6, 20, 27
**e,fTrichoderma alutaceum Jaklitsch	L		CTP 336, 376	BP, BPE	4, 19
Trichoderma viride Pers.	Fu		MRSJ 108	BP	34
OPHIOCORDYCIPITACEAE
Tolypocladium capitatum (Holmsk.) C.A. Quandt, Kepler & Spatafora	Fu		GG 32590	BPE	1
XYLARIALES
HYPOXYLACEAE
Annulohypoxylon thouarsianum (Lév.) Y.M. Ju, J.D. Rogers & H.M. Hsieh	L		MH 492, OR 735	BPE	1, 3
*aDaldinia cf. childiae J.D. Rogers &Y.M. Ju	L	C, Me	CTP 212, OR 1589, 4000	BMM, BPE	1, 5, 14, 28
10Daldinia macrospora F. San Martín, Y.M. Ju & J.D. Rogers	L		SD	SD	12
***gDaldinia vernicosa Ces. & De Not.	L	C	OR 3100, 4168, RZV 505	BMM, BPE	1, 37
XYLARIACEAE
*fXylaria grammica (Mont.) Mont.	L		MH 759, OV 43	BPA, BPE	1, 6
*gXylaria hypoxylon (L.) Grev.	L		CTP 197, 478-A, OV 148	BMM, BP, BPE	1, 2, 34, 38
*fXylaria multiplex (Kunze) Fr.	L		GA 34	BPE	1
*fXylaria polymorpha (Pers.) Grev.	L		AC 5, MAG 8	BPE	1
BASIDIOMYCOTA
AGARICOMYCETES
AGARICALES
AGARICACEAE
*aAgaricus arvensis Schaeff.	T	C	GG 22003	BPE	1, 32
*fAgaricus campestris L.	T	C, Me	CT 964	BPE	1
*a,10Agaricus placomyces Peck	T	V	OR 801	BPE, SD	12, 31
Agaricus sylvaticus Schaeff.	T	C	AL 165, MRSJ 176	BPE	1
*e,fAgaricus xanthodermus Genev.	T	Me, V	VMLQ 7, OR 4015	BMM, BPE	1, 14
Bovista brunnea Berk.	T		JNR 8082, 8086, 8088	BPE	1
Bovista fusca Lév.	T	Me	GP 5, OV 548, VC 3	BPE	1
10Bovista leucoderma Kreisel	T		SD	SD	20
Bovista pusilla (Batsch) Pers.	T	Me	MF 14	BPE	1
*f,gChlorophyllum molybdites (G. Mey.) Massee	T	V	CTP 190, GG 24644	BMM, BPE	1, 38
Chlorophyllum rhacodes (Vittad.) Vellinga	T	C	GGa s.n.	BPE	1
*a,f,10Coprinus comatus (O.F. Müll.) Pers.	T	C	OHV 25, OR 4114	BP, BPE, SD	1, 27, 34
*fCyathus olla (Batsch) Pers.	F		FLP 40, MA 33	BPE	1
*fCystoderma amianthinum (Scop.) Fayod	T		SYR 117	BPE	1
*fEchinoderma asperum (Pers.) Bon	Hu	V	CTP 112, EL 11	BPE	1
10Floccularia luteovirens (Alb. & Schwein.) Pouzar	T	C	SD	SD	12
*aLepiota alopochroa (Berk. & Broome) Sacc.	T		OR 1977, OV 540	BPE	1, 28
*aLepiota clypeolaria (Bull.) P. Kumm.	T		MLF 838, OR 1591	BPE	1, 3, 28
**fLepiota cristata (Bolton) P. Kumm.	Hu, T	V	CTP 207	BPE	5
***gLeucoagaricus meleagris (Gray) Singer	T		CTP 188	BMM	38
*aLeucoagaricus rubrotinctus (Peck) Singer	T	V	OR 800	BPE	31
10Leucocoprinus cepistipes (Sowerby) Pat.	L		SD	SD	27
*aLycoperdon candidum Pers.	T	C, Me	CTP 71, IA 819	BPE	1, 29
*a,fLycoperdon molle Pers.	T		AL 175, IA 822	BPE	1, 29
Lycoperdon perlatum Pers.	T	C, M, Me	AT s.n., CTP 337, HRRR 28	BPA, BPE	1, 6, 9, 19
*a,10Lycoperdon pyriforme Schaeff.	L	C, Me	CTP 389, DGS 404, RL s.n.	BMM, BPE, SD	1, 15, 27, 32
Lycoperdon umbrinum Pers.	T	C, Me	AT s.n., CTP 486	BP, BPE	1, 7
*fMacrolepiota procera (Scop.) Singer	T	C, Me	MLF 836	BPE	1
Micropsalliota heinemaniana Guzm.-Dáv.	Hu		OV 439	BPE	1
Micropsalliota subalpina Guzm.-Dáv. & Heinem.	Hu		JS 79	BPE	1
*dMontagnea arenaria (DC.) Zeller	T		OR 4403	BTC	21
*fPhaeolepiota aurea (Matt.) Maire	L	A, V	CFMM 7	BPE	1
AMANITACEAE
*fAmanita alexandri Guzmán	T	M, V	SGCO 9	BPE	1
Amanita cokeri E.-J. Gilbert & Kühner ex E.-J. Gilbert	T	M, V	GG 11942	BPE	11
10Amanita complejo caesarea (Scop.) Pers.	T	C, M, Me	OR 733	BPE, SD	1, 3, 27
10Amanita flavoconia G.F. Atk.	T	M	YAGA 14	BPE, SD	1, 27
*aAmanita fulva Fr.	T	C, M	MRSJ 113, RGC 12	BP, BPE	1, 34
***gAmanita gemmata (Fr.) Bertill.	T	M, V	CTP 124, 182, 362	BMM, BPE	1, 2, 37
*fAmanita gemmata f. gemmata (Fr.) Bertill.	T	M, V	MG 33	BPE	1
*fAmanita magnivelaris Peck	T	M, V	LSV 402, MH 495	BPE	1
10Amanita muscaria (L.) Lam.	T	M, Me, V	CTP 502, JA s.n., MCSG 5	BPE, SD	1, 2, 27
*fAmanita muscaria var. flavivolvata (Singer) D.T. Jenkins	T	M, Me	GN 263, MLF 835	BPE	1
10Amanita pantherina (DC.) Krombh.	T	M, V	EF 561, MRSJ 615	BPA, BPE, SD	1, 6, 27
*fAmanita cf. ponderosa Malençon & R. Heim	T	C, M	LSV 650	BPE	1
*e,f,10Amanita rubescens Pers.	T	C, M, Me	MAHR 31, OR 4071	BMM, BPE, SD	1, 14, 27
*aAmanita solitaria (Bull.) Fr.	T	M	OR 1595	BPE	28
*fAmanita tuza Guzmán	T	C, M	IA 1109	BPE	1
*a,10Amanita vaginata (Bull.) Lam.	T	C, M, Me	CTP 439, DFG 9, MRSJ 249	BPE, SD	1, 27, 30
Amanita valens (E.-J. Gilbert) Bertault	T	C, M	GG 11959	BPE	11
Amanita verna (Bull.) Lam.	T	M, Me, V	MG 37	BPE	1
*fAmanita virosa Bertill.	T	M, Me, V	MH 1486, RGC 6	BPE	1
BOLBITIACEAE
*fBolbitius titubans (Bull.) Fr.	T		GT 32	BPE	1
CORTINARIACEAE
*fCortinarius sanguineus (Wulfen) Gray	T	M, V	NGRO 9	BPE	1
*fCortinarius semisanguineus (Fr.) Gillet	T	M, V	AA 12	BPE	1
*a,10Cortinarius splendens Rob. Henry	T	M, V	OR 745	BPE, SD	12, 29
CYPHELLACEAE
*eChondrostereum purpureum (Pers.) Pouzar	L		MH 1653, RZV 311	BMM	14
Gloeostereum incarnatum S. Ito & S. Imai	L	C	MH 695	BPE	1
ENTOLOMATACEAE
Entoloma cf. carolinianum Hesler	T		CM 16, DM 222, OR 1590	BPE	1
2Entoloma chytrophilum Wölfel, Noordel. & Dähncke	L		OV 443	BPE	1
*fEntoloma clypeatum (L.) P. Kumm.	T	C, M	CTP 527, LERG 32	BPE	1
2Entoloma griseorhodopolium Montañez, Noordel. & Guzm.-
Dáv.	T		OV 528	BPE	1
2Entoloma minutisporum (Vila & Llimona) J. Carbó, Vila,
Català & F. Caball.	Hu		LGD 5432	BPE	1
Entoloma sericeum Quél.	T	V	DM 214	BPE	1
2Entoloma spodopus Montañez, Noordel. & Guzm.-Dáv.	T		YA 96	BPE	1
*d,2Entoloma cf. subcoelestinum (Largent) Blanco-Dios	T		AGJ 28, CTP 259	BPE, BTC	1, 21
FISTULINACEAE
*f,***gPorodisculus pendulus (Fr.) Murrill	L		CTP 13, OR 3107	BMM, BPE	1, 37
*fPseudofistulina radicata (Schwein.) Burds.	L, Pp		CTP 268	BPE	1
HYDNANGIACEAE
Laccaria amethystina Cooke	T	C, M	AT s.n., CTP 350, DFG 7, OR 4378, 3964	BMM, BP, BPE	1, 2, 7, 8, 9, 14, 19
*e,10Laccaria laccata (Scop.) Cooke	T	C, M	AT s.n., FB 153, JMRA 32, OR 4166, 3965	BMM, BP, BPE, SD	1, 2, 7, 14, 27
*fLaccaria ochropurpurea (Berk.) Peck	T	C, M	CTP 541, 567	BPE	1
HYGROPHORACEAE
*fAmpulloclitocybe clavipes (Pers.) Redhead, Lutzoni, Moncalvo & Vilgalys	T	C, M	OV 535	BPE	1
*e,fHygrocybe conica (Schaeff.) P. Kumm.	T		CTP 74, 366, RZV 290	BMM, BPE	1, 2, 14
**aHygrocybe spadicea (Scop.) P. Karst.	Hu		MRSJ 107	BP	34
*aHygrophorus russula (Schaeff. ex Fr.) Kauffman	T	C, M	DAJR s.n., OR 742	BPE	1, 29
HYMENOGASTRACEAE
***gGalerina subochracea A.H. Sm.	L	V	CTP 159	BMM	37
3Gymnopilus capitatus Guzm.-Dáv. & Guzmán	L		LGD 5296	BP	34
3Gymnopilus nevadensis Guzm.-Dáv. & Guzmán	L		LGD 3469	BPE	1
*fGymnopilus penetrans (Fr.) Murril	L	V	CTP 143, 525, DFG 5, MRSJ 570	BPE	1
**fGymnopilus sapineus (Fr.) Murrill	L		CTP 570	BPE	1
3Gymnopilus subpurpuratus Guzm.-Dáv. & Guzmán	L		LGD 4250	BPE	1
***gGymnopilus tuxtlensis Guzm.-Dáv.	L		CTP 156, 157	BMM	37
10Hypholoma fasciculare (Huds.) P. Kumm.	L	Me, V	GN 270, MH 762, RRD 2835	BPA, BPE, SD	1, 6, 9, 27
*aPsilocybe cubensis (Earle) Singer	F	A, Me	JPL s.n., OR 1986	BPE	1, 28
10Psilocybe mexicana R. Heim	F	A, Me	SD	SD	27
10Psilocybe subcubensis Guzmán	F	A, Me	SD	SD	27
4,10Psilocybe zapotecorum R. Heim	F	A, Me	LGD 2144	BPE, SD	1, 27
INOCYBACEAE
**fCrepidotus applanatus (Pers.) P. Kumm.	L		CTP 218	BPE	5
Crepidotus calolepis (Fr.) P. Karst.	L		CTP 17, 92, 115	BPE	1
*aCrepidotus cinnabarinus Peck	L		MRSJ 181, OR 741	BPE	1, 29
*a,fCrepidotus mollis (Schaeff.) Staude	L		MRSJ 272, OR 695	BPE	1, 30
Crepidotus uber (Berk. & M.A. Curtis) Sacc.	L		GL 5	BPE	1
*fInocybe ayeri Furrer-Ziogas.	T		CTP 375	BP	4
*fInocybe geophylla (Bull.) P. Kumm.	T	M, V	AT s.n., MH 476	BP, BPE	1, 7
*fInocybe geophylla var. alba Gillet	T	M, V	SYR 127	BPE	1
*f,10Inocybe geophylla var. lilacina (Peck) Gillet	T	M, V	CTP 553, DFG 11, DM 224	BPE, SD	1, 27
**fInocybe obsoleta (Quadr. & Lunghini) Valade	T		CTP 262	BPE	1
*a,fInocybe rimosa (Bull.) P. Kumm.	T	M	GN 307, OV 430	BPE	1, 30
LYOPHYLLACEAE
Lyophyllum decastes (Fr.) Singer	T	C, Me	OR 4118-B	BPE	1
MARASMIACEAE
10Baeospora myosura (Fr.) Singer	L		SYR 198	BPA, SD	6, 27
10Marasmius guzmanianus Singer	Hu		BAAO 571, CTP 102, RRD 2840	BP, BPE, SD	1, 4, 9, 27
*fMarasmius plicatulus Peck	Hu		CT 943	BPE	1
10Marasmius rotula (Scop.) Fr.	Hu		CTP 125, 225	BPE, SD	1, 5, 27
MYCENACEAE
*fMycena epipterygia (Scop.) Gray	Hu		SF 9	BPE	1
*aMycena leaiana (Berk.) Sacc.	L		CTP 20, OR 1982	BPE	1, 28
10Mycena pura (Pers.) P. Kumm.	Hu	C	MRSJ 955, OR 3315	BPE, SD	1, 20
*f,***gPanellus pusillus (Pers. ex Lév.) Burds. & O.K. Mill.	L	Me	OR 3102, 4173	BMM, BPE	1, 37
Panellus stipticus (Bull.) P. Karst.	L		AL 209, DRDL 9	BPE	1
*fXeromphalina campanella (Batsch) Kühner & Maire	L		CTP 77, MH 719	BPA, BPE	1, 6
*f,***gXeromphalina tenuipes (Schwein.) A.H. Sm.	L		BAAO 432, CTP 63, OR 3101	BMM, BP, BPE	1, 4, 37
OMPHALOTACEAE
*fConnopus acervatus (Fr.) K.W. Hughes, Mather & R.H. Petersen	Hu, L	C	JS 92	BP, BPE	1, 34
*fGymnopus alkalivirens (Singer) Halling	Hu	V	GA 41	BPE	1
*a,eGymnopus dryophilus (Bull.) Murrill	Hu	C	GN 251, MRSJ 231, OR 4014	BMM, BPE	1, 14, 29
*fGymnopus fusipes (Bull.) Gray	L		MLF 786	BPE	1
*a,eGymnopus polyphyllus (Peck) Halling	Hu	C	CTP 341, MH 1627, MRSJ 248, LJOV22	BMM, BPE	1, 14, 19, 31
*fLentinula boryana (Berk. & Mont.) Pegler	L	C	HR 6, IA 524, OV 47	BPE	1
*fOmphalotus mexicanus Guzmán & V. Mora	T		CTP 368, DFG 13-A	BPE	1, 2
10Rhodocollybia butyracea (Bull.) Lennox	Hu	C	SD	SD	27
Rhodocollybia maculata (Alb. & Schwein.) Singer	Hu		DFG 12, MRSJ 574	BPE	1, 9
PHYSALACRIACEAE
*a,fArmillaria obscura (Schaeff.) Herink	Pp	C	CTP 18, GG 22001	BPE	1, 32
*fCyptotrama asprata (Berk.) Redhead & Ginns	L		CTP 14, OV 527, SG 4	BPE	1
a,fOudemansiella canarii (Jungh.) Höhn.	L	C	CTP 84, MH 727, OR 1993	BPA, BPE	1, 6, 28
PLEUROTACEAE
Hohenbuehelia angustata (Berk.) Singer	L		CTP 25, MRSJ 621	BPE	1
*fHohenbuehelia grisea (Peck) Singer	L		CTP 24, 492	BPE	1, 2
*fHohenbuehelia nigra (Schwein.) Singer	L		CTP 518	BPE	2
10Hohenbuehelia petaloides (Bull.) Schulzer	T	C	SD	SD	27
**fHohenbuehelia spathulata (Pers.) Singer	L		CTP 511	BPE	2
*f,gPleurotus djamor (Rumph. ex Fr.) Boedijn	L	C, Me	LARR 5, SMM 18	BMM, BPE	1, 37
*fPleurotus dryinus (Pers.) P. Kumm.	L	C	IA 1919	BPE	1
PLUTEACEAE
Pluteus atromarginatus (Konrad) Kühner	L		GG 30554, OR 1971	BPE	1
Pluteus aurantiorugosus (Trog) Sacc.	L		OV 525	BPE	1
*a,ePluteus cervinus (Schaeff.) P. Kumm.	L	C	CTP 247, OR 1581, 2020, 4010	BMM, BPE	1, 5, 14, 28
Pluteus chrysophlebius (Berk. & M.A. Curtis) Sacc.	L		OR 4119, OV 530	BMM, BPE	1, 37
Pluteus harrisii Murrill	L	C	LSV 764, 773	BPE	1
Pluteus horakianus Rodr.-Alcánt.	L		OR 4011	BMM	14
Pluteus nevadensis Rodr.-Alcánt.	L		OV 525	BPE	1
*fVolvopluteus gloiocephalus (DC.) Vizzini, Contu & Justo	L	C	CTP 147, OV 196	BPE	1
PSATHYRELLACEAE
Lacrymaria hypertropicalis (Guzmán, Bandala & Montoya) Cortez	L		GG 29585-A	BPE	1
*fPanaeolina foenisecii (Pers.) Maire	T	A, V	SG 31	BPE	1
*fPanaeolus antillarum (Fr.) Dennis	F		RB 28	BPE	1
*fPanaeolus cyanescens Sacc.	F	Me	RISC 9	BPE	1
10Panaeolus papilionaceus (Bull.) Quél.	F		CVG 18	BPE, SD	1, 27
Panaeolus semiovatus (Sowerby) S. Lundell & Nannf.	F		GGa s.n.	BPE	1
*a,10Psathyrella candolleana (Fr.) Maire	L		CTP 69, 510, MRSJ 251, OR 1592	BP, BPE, SD	1, 2, 20, 28, 30, 34
*e,fPsathyrella delineata (Peck) A.H. Sm.	L		CT 949	BPE	1, 29
f .H. Sm.	L		GN 276	BPE	1
SCHIZOPHYLLACEAE
*c,d,e,gSchizophyllum commune Fr.	L	C, Me	AF 7, CTP 183, MH 718, OR 3115, 4387, OV 143, RIAB 31, RZV 312	BPA, BMM, BPE, BTC, BTSC	1, 2, 6, 14, 21, 23, 37, 41
*gSchizophyllum fasciatum Pat.	L	C	OR 2955	BMM	37
*fSchizophyllum umbrinum Berk.	L		CTP 283	BPE	5
STROPHARIACEAE
*fAgrocybe pediades (Fr.) Fayod	T		CA 16, KM 7	BPE	1
*a,fDeconica coprophila (Bull.) P. Karst.	F		CT 962-A, IA 757	BP, BPE	1, 34
*fPholiota carbonaria A.H. Sm.	L		MH 481	BPE	1
**fPholiota lubrica (Pers.) Singer	L		CTP 405	BP	4
*aPholiota spumosa (Fr.) Singer	L		AL 181, GG 24617	BPE	1, 30
sch) Redhead, Moncalvo & Vilgalys	F		IA 813, MH 765, 768	BPA, BPE, SD	1, 3, 6, 20, 27
*fStropharia aurantiaca (Cooke) M. Imai	Hu		FIGN 34	BPE	1
*aStropharia coronilla (Bull.) W. Saunders & W.G. Sm.	T	C	MG 35, OR 804	BPE	1, 31
TRICHOLOMATACEAE
*eClitocybe gibba (Pers.) P. Kumm.	T	C, M, Me	CTP 349, DFG 8, RRD 2834	BPE	1, 3, 9, 19
10Lepista amara (Alb. & Schwein.) Maire	Hu		AL 178, GN 252, MRSJ 957	BPE, SD	1, 27
*a,fLepista nuda (Bull.) Cooke	Hu	C, Me	CTP 67, 363, IA 755, OR 1594-A, 4027	BMM, BP, BPE	1, 2, 14, 28, 34
*fLepista sordida (Schumach.) Singer	Hu	C	OV 542, PMM 20	BPE	1
5Melanoleuca cf. cinereifolia (Bon) Bon	T		CA 20, PC 42, SG 24	BPE	1
*ePhyllotopsis nidulans (Pers.) Singer	L		OR 4176-A	BPE	18
Tricholoma equestre (L.) P. Kumm.	T	C, M	CTP 273, SYR 115	BPE	1
*a,10Tricholomopsis rutilans (Schaeff.) Singer	T	M	CTP 76, OR 1585	BPE, SD	1, 27, 28
AURICULARIALES
AURICULARIACEAE
*e,f,***gAuricularia delicata (Mont. ex Fr.) Henn.	L	C, Me	SMM 15, OR 4066, 4125, CTP 160, 343	BMM, BPE	1, 14, 17, 19, 37
*e,g,10Auricularia mesenterica (Dicks.) Pers.	L	C, Me	CTP 345, OR 3303	BMM, BPE, SD	19, 27, 37
*c,e,f,g,10Auricularia nigricans (Sw.) Birkebak,bak, Looney & Sánchez-García	L	C	AF 6, FS 14, MH 488, 1625, OR 3017, 3075, 4126	BMM, BPE, BTC, BTSC, SD	1, 14, 17, 23, 24, 27, 37, 39
EXIDIACEAE
•fDuctifera exidioidea Lowy.	L		CTP 471	BPE	1
*c,f,10Pseudohydnum gelatinosum (Scop.) P. Karst.	L	C	CTP 122, MGTT 654, SYR 120	BPA, BPE,SD	1, 6, 22, 27
BOLETALES
BOLETACEAE
*fAureoboletus russellii (Frost) G. Wu & Zhu L. Yang	T	C, M	DRC 16	BPE	1
6Boletus subvelutipes Peck	T	C, M	LGD 5905	BPE	1
6Boletus variipes Peck	T	C, M, Me	MRSJ 258	SD	36
10Boletus variipes var. fagicola A.H. Sm. & Thiers	T	M	OR 752	BPE, SD	12, 29
Buchwaldoboletus hemichrysus (Berk. & M.A. Curtis) Pi	T	M	MG 382	BPE	1
Butyriboletus frostii (J.L. Russell) G. Wu, Kuan Zhao & Zhu L. Yang	T	C, M	OR 744, s.n.	BPE	1, 29
Caloboletus cf. calopus (Pers.) Vizzini	T	M, V	JG 5902	BPE	1
Caloboletus inedulis (Murrill) Vizzini	T	M	SYR 116	BPE	1
6Cyanoboletus pulverulentus (Opat.) Gelardi, Vizzini &
Simonini	T	M, Me	LGD 5349	BPE	1
Leccinum rugosiceps (Peck) Singer	T	C, M, Me	MG 31	BPE	1
*a,fNeoboletus cf. erythropus (Pers.) C. Hahn	T	C, M, Me	OR 1599	BPE	1, 28
*fPhylloporus rhodoxanthus (Schwein.) Bres.	T	M	OR 736	BPE	3
*a,fStrobilomyces confusus Singer	T	C, M	MLF 792, OR 1598	BPE	1, 28
*aStrobilomyces cf. strobilaceus (Scop.) Berk.	T	C, M	MH 482, OR 1597	BPE	1, 28
*aSutorius eximius (Peck) Halling, Nuhn & Osmundson	T	C, M	CTP 9-A, OR 746	BPE	1, 29
*aTylopilus cf. felleus (Bull.) P. Karst.	T	C, M	JFN 1	BPE	28
Tylopilus ferrugineus (Kuntze) Singer	T	C, M	CT 969	BPE	1
*fTylopilus cf. gomezii Singer	T	M	VMLQ 3	BPE	1
*fTylopilus plumbeoviolaceus (Snell & E.A. Dick) Snell & E.A. Dick	T	M	GS 13, VMLQ 1	BPE	1
Xerocomellus chrysenteron (Bull.) Šutara	T	C, M	RC 16	BPE	1
Xerocomellus truncatus (Singer, Snell & E.A. Dick) Klofac	T	C, M	OR 1156, OV 460	BPE	1
BOLETINELLACEAE
***gBoletinellus merulioides (Schwein.) Murrill	T	C, M	FJT 592, OR 3105	BMM, BPE	1, 37
DIPLOCYSTIDIACEAE
*a,fAstraeus hygrometricus (Pers.) Morgan	T	C, M, Me	IA 756, MH 724, MRSJ 245	BPA, BP, BPE	6, 31, 34
GOMPHIDIACEAE
Chroogomphus rutilus (Schaeff.) O.K. Mill.	T	C, M	CTP 573, MH 728	BPA, BPE	1, 6
GYROPORACEAE
Gyroporus castaneus (Bull.) Quél.	T	C, M, Me	ASL 10, MRSJ 560	BPE	1
HYGROPHOROPSIDACEAE
*a,10Hygrophoropsis aurantiaca (Wulfen) Maire	T	C, M, Me	CTP 73, 512, DGS 353, OR 797	BMM, BP, BPE, SD	1, 2, 15, 27, 31, 34
SCLERODERMATACEAE
*f,10Pisolithus arhizus (Scop.) Rauschert	T	M, Me	RAPC 19	BPE, SD	1, 36
*fScleroderma albidum Pat. & Trab.	T	M, V	MIFL 4	BPE	1
*aScleroderma areolatum Ehrenb.	T	M, Me, V	CTP 279, MH 751, RGC 22	BPA, BPE	1, 6, 28
10Scleroderma cepa Pers.	T	M, V	SD	SD	12, 20
Scleroderma michiganense (Guzmán) Guzmán	T	M	EAO s.n.	BPE	1
*eScleroderma nitidum Berk.	T	M	OR 3968	BMM	14
10Scleroderma polyrhizum (J.F. Gmel.) Pers.	T	M	GG 30562	BPE, SD	1, 27
**fScleroderma aff. pseudostipitatum Petch	T	M	GG 32654	BPE	1
10Scleroderma texense Berk.	T	M, V	LSV 415, MLF 783	BPE, SD	1, 36
*fScleroderma verrucosum (Bull.) Pers.	T	M, Me, V	FJT 583, MLF 794	BPE	1
SUILLACEAE
Suillus americanus (Peck) Snell	T	C, M	MACT 15	BPE	1
*aSuillus brevipes (Peck) Kuntze	T	C, M, Me	RAPC 17	BP	34
10Suillus granulatus (L.) Rousel	T	C, M, Me	CTP 32, SYR 122	BPE, SD	1, 27
Suillus tomentosus Singer	T	C, M	ALSC 1, CTP 64, OR 738	BPE	1, 3
Suillus tomentosus var. discolor A.H. Sm., Thiers & O.K. Mill.	T	C, M	CTP 31, 406	BP, BPE	1, 4
TAPINELLACEAE
*a,f,10Tapinella atrotomentosa (Batsch) Šutara	L		CTP 548, JR s.n., OR 1586, OV s.n.	BPE, SD	1, 9, 27, 28
*e,10Tapinella panuoides (Fr.) E.-J. Gilbert	L		CTP 335, MH 743, OR 2191	BPA, BPE, SD	1, 6, 18, 27
CANTHARELLALES
CANTHARELLACEAE
*aCantharellus cibarius Fr.	T	C, M, Me	OR 1596, 2176	BPE	1, 28
*fCantharellus cinnabarinus (Schwein.) Schwein.	T	C, M	VMM 15	BPE	1
Craterellus cornucopioides (L.) Pers.	T	C, M	EL 13, GG 30563	BPE	1
*eCraterellus tubaeformis (Fr.) Quél.	T	C	RZV 291	BMM	14
Pseudocraterellus undulatus (Pers.) Rauschert	T	C	CTP 388, MH 706	BPE	1
CLAVULINACEAE
*fClavulina cinerea (Bull.) J. Schröt.	T	C, M, Me	SCHR 14	BPE	1
*fClavulina rugosa (Bull.) J. Schröt.	T	C, M	EJAB 8	BPE	1
HYDNACEAE
Hydnum repandum L.	T	C, M, Me	BAAO 561, CTP 454, GL 7	BPA, BP, BPE	1, 4, 6
GEASTRALES
GEASTRACEAE
*fGeastrum coronatum Pers.	T	M	BEMM 10	BPE	1
*fGeastrum fimbriatum Fr.	T	M, Me	AL 147, CTP 561, MRSJ 934	BPE	1
10Geastrum pectinatum Pers.	T		GN 280, MRSJ 933	BPE, SD	1, 27
10Geastrum saccatum Fr.	T	M, Me	AT s.n., OV 434	BP, BPE, SD	1, 7, 27
Geastrum triplex Jungh.	T	Me	AT s.n., DGS 509, OV 422, RZV 305	BMM, BP, BPE	1, 7, 9, 15
*fGeastrum velutinum Morgan.	T		CTP 442, MRSJ 579, OR 1978-B	BPE	1
GLOEOPHYLLALES
GLOEOPHYLLACEAE
*e,fGloeophyllum abietinum (Bull.) P. Karst.	L		CTP 346, 461	BPE	1, 19
*aGloeophyllum sepiarium (Wulfen) P. Karst.	L		AT s.n., IA 816, MH 736, OR 802, 4165	BPA, BP, BPE	1, 3, 6, 7, 9, 31, 34
*c,fGloeophyllum striatum (Fr.) Murrill	L		FS 11, OV 152	BPE, BTSC	1, 24
GOMPHALES
CLAVARIADELPHACEAE
*a,10Clavariadelphus truncatus Donk	T	C, M, Me	OR 1984	BPE, SD	12, 20, 28
GOMPHACEAE
*fRamaria botrytis s.l. (Pers.) Bourdot	T	C, M	JCNA 6	BPE	1
Ramaria flava s.l. (Schaeff.) Quél.	T	C, M	MH 485	BPE	1
*fRamaria formosa s.l. (Pers.) Quél.	T	M, V	VMLQ 11	BPE	1
10Ramaria stricta (Pers.) Quél.	T	C, M	MH 494, VMLQ 14	BPE, SD	1, 27
*fTurbinellus floccosus (Schwein.) Earle ex Giachini & Castellano	T	C, M, Me	AT s.n., OR 4118, SYR 119	BPA, BP, BPE	1, 6, 7
HYMENOCHAETALES
HYMENOCHAETACEAE
*fColtricia cinnamomea (Jacq.) Murrill	T	Me	MH 478, 794	BPE	1
*e,fColtricia focicola (Berk. & M.A. Curtis) Murrill	T		CTP 391, DGS 391, MH 744	BMM, BPA, BPE	1, 6, 15
*fColtricia montagnei (Fr.) Murrill	T		MAG 14	BTC	10
*aColtricia perennis (L.) Murrill	T	M, Me	MH 1500, OR 1601, RIAB 22, SYR 121	BPA, BPE	1, 2, 6, 28
7Fuscoporia callimorpha (Lév.) Groposo, Log.-Leite & Góes-
Neto	L		GR 1404, RV 1053	BTC	42
Fuscoporia gilva (Schwein.) T. Wagner & M. Fisch.	L, Pp	D	MH 685, MJR 8	BPE	1
*eHymenochaete rheicolor (Mont.) Lév.	L		MH 1639, RZV 310	BMM	14
*fHymenochaete rubiginosa (Dicks.) Lév.	L		DM 236, MRSJ 571	BPE	1
*fInonotus cuticularis (Bull.) P. Karst.	L		SVC 20	BPE	1
*fInonotus fulvomelleus Murrill	L		CTP 530, MH 746	BPA, BPE	1, 6
*fPhellinus badius (Cooke) G. Cunn.	L, Pp	D	CTP 106, DM 207	BPE	1
*a,fPhellinus sarcites (Fr.) Ryvarden	L, Pp	D	CTP 462, OR 1610	BPE	1, 28
RICKENELLACEAE
Cotylidia diaphana (Cooke) Lentz	T		CT 955, MRSJ 926	BPE	1
HYMENOCHAETALES género incertae sedis
*aTrichaptum abietinum (Pers.) Ryvarden	L		BAAO 550, CTP 29, IA 255, MGTT426, OR 799	BPA, BP, BPE	1, 4, 6, 9, 31
Trichaptum biforme (Fr.) Ryvarden	L		CTP 246, 522, MH 739, OR 3068	BPA, BPE	1, 2, 5, 6
*fTrichaptum sector (Ehrenb.) Kreisel	L		MH 742, TJRH 8	BPA, BPE	1, 6
PHALLALES
PHALLACEAE
*f,10Phallus hadriani Vent.	T		FJT 631	BPE, SD	1, 27
POLYPORALES
DACRYOBOLACEAE
*fPostia caesia (Schrad.) P. Karst.	L		CTP 256, 404, SYR 196	BPA, BP, BPE	1, 4, 6
*fPostia fragilis (Fr.) Jülich	L		MH 735, OV 440	BPA, BPE	1, 6
*a,fSpongiporus floriformis (Quél.) Zmitr.	L		MRSJ 180, OR 1605	BPE	1, 28
FOMITOPSIDACEAE
*a,fClimacocystis borealis (Fr.) Kotl. & Pouzar	L	C	OR 1594	BPE	1, 28
*fDaedalea quercina (L.) Pers.	L		MEVS 10	BPE	1
*eFomitopsis pinicola (Sw.) P. Karst.	L, Pp	D, Me	APA 24, MGTT 589, 600	BMM, BPA, BPE	1, 6, 13
*eRhodofomes roseus (Alb. & Schwein.) Vlasák	L		CTP 334	BPE	18
*f,gRhodofomitopsis feei (Fr.) B.K. Cui, M.L. Han & Y.C. Dai	L		CTP 181, MH 741	BMM, BPA	6, 37
GANODERMATACEAE
*fGanoderma applanatum (Pers.) Pat.	L, Pp	D, Me	MRSJ 562, OR 4110	BPE	1
Ganoderma australe (Fr.) Pat.	L, Pp	D	HEFL s.n., JAGV 7	BPE	1, 2
*a,fGanoderma curtisii (Berk.) Murrill	L, Pp	D	OR 1603, OV 42	BPE	1, 28
Ganoderma lobatum (Cooke) G.F. Atk.	L, Pp	D, Me	AL 222, MG 30	BPE	1
GELATOPORIACEAE
*e,***gGelatoporia dichroa (Fr.) Ginns	L		CTP 172, JC 4, LSV 780	BMM, BPE	1, 14, 37
LAETIPORACEAE
*fLaetiporus sulphureus (Bull.) Murrill	L	C	OV 31-B	BPE	1
*a,f,10Phaeolus schweinitzii (Fr.) Pat.	L		MRSJ 241, OV 37	BPE, SD	1, 27, 30
MERIPILACEAE
*aHydnopolyporus palmatus (Hook.) O. Fidalgo	T, Pp	C	GN 306, IA 808, MH 477	BPE	1, 3, 30
*fRigidoporus lineatus (Pers.) Ryvarden	L		MH 750	BPA	6
*fRigidoporus microporus (Sw.) Overeem	L		MH 752	BPA	6
MERULIACEAE
*fBjerkandera adusta (Willd.) P. Karst.	L		LSV 644, MH 764, OR 740	BPA, BPE	1, 3, 6
Cymatoderma caperatum (Berk. & Mont.) D.A. Reid	L		OV 40	BPE	1
*f,10Irpex lacteus (Fr.) Fr.	L		OV 156, 160	BPE, SD	1, 27
*e,fPhlebia tremellosa (Schrad.) Nakasone & Burds.	L	Me	BAAO 57, CTP 356, 460, DGS 405, MH 760, 1635	BMM, BP,BPA, BPE	1, 4, 6, 14, 19, 26
PHANEROCHAETACEAE
*fAntrodiella semisupina (Berk. & M.A. Curtis) Ryvarden	L		BAAO 485, CTP 528, MH 1499	BPE	1
*a,fByssomerulius incarnatus (Schwein.) Gilb.	L		CTP 380, MACT 11, OR 1606	BP, BPE	1, 4, 28, 35
Phlebiopsis crassa (Lév.) Floudas & Hibbett	L		MRSJ 586	BPE	1
POLYPORACEAE
*fCerioporus leptocephalus (Jacq.) Zmitr.	L		MH 730	BPA	6
*f,***gCerioporus varius (Pers.) Zmitr. & Kovalenko	L	Me	EL 14, OR 2979	BPE	1, 40
*fCoriolopsis byrsina (Mont.) Ryvarden	L		GEDR 24	BTC	10
*a,fEchinochaete brachypora (Mont.) Ryvarden	L		CTP 7, OR 743	BPE	1, 29
*a,e,f,gFavolus tenuiculus P. Beauv.	L	C	AGL 8, CTP 170, 185, 479, GN 312, OR 3020, 4122	BMM, BPE, BTC	1, 2, 17, 30, 37, 38, 39
*fFomes fasciatus (Sw.) Cooke	L		NB s.n.	BPE	1
*dFunalia caperata (Berk.) Zmitr. & Malysheva	L		OR 4395	BTC	21
*d,fFunalia floccosa (Jungh.) Zmitr. & Malysheva	L		OR 4397	BPE, BTC	8, 21
*fHapalopilus rutilans (Pers.) Murrill	L		SMM 24	BPE	1
*fHexagonia cucullata (Mont.) Murrill	L		CM 10	BPE	1, 3
*f,***gLentinus arcularius (Batsch) Zmitr.	L		CTP 38, 478, JT 7, OR 3077	BMM, BPE	1, 2, 5, 37
*aLentinus badius (Berk.) Berk.	L		OR 1976	BPE	28
*c,f,10,***gLentinus crinitus (L.) Fr.	L	C, Me	CTP 153, FS 19, IF 28, MGG 12, OR3112	BMM, BPE, BTC, BTSC, SD	1, 10, 23, 27, 37, 41
*fLentinus levis (Berk. & M.A. Curtis) Murrill	L	C	OR 2187	BPE	1
*c,d,e,gLentinus tricholoma (Mont.) Zmitr.	L		BAAO 431, CTP 162-A, 244, 353, 569, MGM 18, MH 1623, OR 4390	BMM, BP, BPE, BTC	1, 4, 5, 14, 19, 21, 23, 37
10Lenzites betulinus (L.) Fr.	L	Me	MH 759	BPA, BPE, SD	1, 6, 9, 20
*fMicroporellus obovatus (Jungh.) Ryvarden	L		MH 693	BPE	1
*e,fNeofavolus alveolaris (DC.) Sotome & T. Hatt.	L	C	ELo 46, OR 4023	BMM, BPE	1, 14
Panus conchatus (Bull.) Fr.	L		LSR 26, LSV 414	BPE	1
***gPicipes melanopus (Pers.) Zmitr. & Kovalenko	L		CTP 180	BMM	37
Polyporus tuberaster (Jacq. ex Pers.) Fr.	L		LSV 778, MAPC 16	BPE	1
*a,10Pycnoporus sanguineus (L.) Murrill	L	Me	GV 5, MH 757, OR 1602, RIAB 29	BPA, BPE, SD	1, 2, 6, 27, 28
*d,e,10,***gTrametes elegans (Spreng.) Fr.	L		MH 1645, MRSJ 585, OR 3306, 4388	BMM, BPE, BTC, SD	1, 14, 21, 27, 37
*fTrametes hirsuta (Wulfen) Lloyd	L		CTP 27, 90, 585	BPE	1
*b,eTrametes hirta (P. Beauv.) Zmitr., Wasser & Ezhov	L		AH 23, MRSJ 946, DGS 402	BPE	1, 16, 26
*fTrametes hydnoides (Sw.) Fr.	L	Me	LCNC 14, MH 733, OR 1604	BPA, BPE	1, 6, 28
*fTrametes marianna (Pers.) Ryvarden	L		MH 758	BPA	6
*e,fTrametes pavonia (Hook.) Ryvarden	L		BPRS 9, CLAO 10	BPE	1, 18
Trametes polyzona (Pers.) Justo	L	Me	LASM 17, MH 1619	BMM, BPE	1, 14
*c,f,gTrametes tenuis (Fr.) Corner	L		AF 4, OR 3018, RISC 2	BPE, BTC	1, 23, 39
*d,gTrametes variegata (Berk.) Zmitr., Wasser & Ezhov	L		CTP 184, OR 4394	BMM, BTC	21, 37
Trametes versicolor (L.) Lloyd	L	Me	AR s.n., BAAO 581, CTP 26, MH 716, 1643	BMM, BP, BPA, BPE	1, 4, 5, 6, 14, 30
*c,d,10Trametes villosa (Sw.) Kreisel	L	Me	CGD 41, DGS 407-A, FS 13, MGTT 705, MH 1628, OR 3096, 4399, RIAB s.n.	BMM, BPE, BTC, BTSC, SD	1, 2, 14, 15, 21, 24, 27, 37, 39
*f,***gTrametopsis cervina (Schwein.) Tomšovský	L		CTP 109, 193	BMM, BPE	1, 38
SPARASSIDACEAE
Sparassis crispa (Wulfen) Fr.	L	C	GN 303	BP	34
RUSSULALES
ALBATRELLACEAE
Albatrellus confluens (Alb. & Schwein.) Kotl. & Pouzar	T	C, M, Me	GG 24609, 30560	BPE	1
8Laeticutis cristata (Schaeff.) Audet	T		OR 809	BPE	35
*a,fPolyporoletus sublividus Snell	T	M	PCR 269	BPE	1, 33
AURISCALPIACEAE
Artomyces pyxidatus (Pers.) Jülich	T	C, Me	LAF 4, LSV 651	BPE	1
10Auriscalpium vulgare Gray	L		CTP 21, 483, EPS s.n., IA 812	BPE, SD	1, 2, 3, 9, 27
BONDARZEWIACEAE
*fBondarzewia berkeleyi (Fr.) Bondartsev & Singer	L	C	OMCR 9	BPE	1
*c,fHeterobasidion annosum (Fr.) Bref.	T, Pp		MGTT 581, MH 770, SYR 133	BPA, BPE	1, 6, 9, 22
HERICIACEAE
Hericium erinaceus (Bull.) Pers.	L	C, Me	LM s.n., OV 421	BPA, BPE	1, 6
PENIOPHORACEAE
*fPeniophora albobadia (Schwein.) Boidin	L		OR 700	BPE	1
RUSSULACEAE
*f,10Lactarius chrysorrheus Fr.	T	M, V	GN 272	BPE, SD	1, 27
*a,10Lactarius deliciosus s.l. (L.) Gray	T	C, M, Me	CTP 137, DFG 6, OR 747, RIAB 24	BPE, SD	1, 2, 27, 29
*gLactarius indigo (Schwein.) Fr.	T	C, M, Me	CTP 579, MH 720, OR 2977	BPA, BPE	1, 6, 40
Lactarius piperatus (L.) Pers.	T	C, M	GN 304	BPE	30
*a,10Lactarius torminosus (Schaeff.) Gray	T	M, V	DRDL 11, OR 734, 744-A	BPE, SD	1, 3, 27, 29
*fRussula adusta (Pers.) Fr.	T	C, M	CTP 358	BPE	1
*a,fRussula brevipes Peck	T	C, M, Me	CM 2, OR 737	BPE	1, 3, 29
10Russula cyanoxantha (Schaeff.) Fr.	T	C, M	GN 267, OR 1155	BPE, SD	1, 27
*fRussula emetica (Schaeff.) Pers.	T	M, V	MH 473, MHo 13	BPE	1
*a,eRussula foetens Pers.	T	M, V	IA 753, MG 32, OR 803, 3962	BMM, BP, BPE	1, 14, 31, 34
*fRussula mexicana Burl.	T	C, M	OR 739	BPE	3
*a,fRussula rosea Pers.	T	C, M	MRSJ 112, SYR 200	BPA, BP	6, 34
STEREACEAE
*f,10Stereum complicatum (Fr.) Fr.	L		CTP 93, GN 325-A, VMLQ 10	BPE, SD	1, 27, 28, 30
10Stereum gausapatum (Fr.) Fr.	L		MGTT 706, MH 754	BPA, BPE, SD	1, 6, 27, 36
*fStereum hirsutum (Willd.) Pers.	L	Me	LSV 772, OR 4161	BPE	1
*eStereum ochraceoflavum (Schwein.) Sacc.	L		CTP 591, MH 1640	BMM, BPE	1, 14
*d,10Stereum ostrea (Blume & T. Nees) Fr.	L	Me	CTP 214, 355, GN 315, IA 810, 823, MRSJ 115, OR 2181, 3993, 4392	BMM, BP, BPE, BTC, SD	1, 3, 5, 14, 19, 21, 27, 29, 30, 34
*fStereum sanguinolentum (Alb. & Schwein.) Fr.	L		IF 26	BPE	1
*fXylobolus frustulatus (Pers.) P. Karst.	L		MH 732, OR 3066	BPA, BPE	1, 6
***gXylobolus subpileatus (Berk. & M.A. Curtis) Boidin	L		CTP 191, MH 755	BMM, BPA	6, 38
SEBACINALES
SEBACINACEAE
*eHelvellosebacina concrescens (Schwein.) Oberw., Garnica & K. Riess	Fu		DCGT 19, RZV 298	BMM, BPE	1, 14
*fSebacina macrospora (Ellis & Everh.) Burt	Hu, T		MLF 840	BPE	1
*fSebacina pululahuana (Pat.) D.P. Rogers	L		CTP 72, 107, 495	BPE	1
THELEPHORALES
BANKERACEAE
*fHydnellum aurantiacum (Batsch) P. Karst.	T	M	JEVN 13	BPE	1
*fPhellodon niger (Fr.) P. Karst.	T		CC 2	BPE	1
Sarcodon imbricatus (L.) P. Karst.	T	C, M	AH 26, OR 2186	BPE	1, 16
THELEPHORACEAE
Thelephora caryophyllea (Schaeff.) Pers.	T		AT s.n., MRSJ 581, RRD 2836	BP, BPE	1, 7, 9
9Thelephora terrestris Ehrh.	T	M	LGD 3571	BPE	9
DACRYMYCETES
DACRYMYCETALES
DACRYMYCETACEAE
Calocera cornea (Batsch) Fr.	L	C	CTP 9	BPE	1
*fCalocera viscosa (Pers.) Fr.	L		LSR 16, SG 9	BPE	1
*fDacrymyces chrysospermus Berk. & M.A. Curtis	L	C	MH 486	BPE	1
*e,fDacrymyces dictyosporus G.W. Martin	L		CTP 30, 352, MGTT 422	BPA, BPE	1, 6, 19
*a,e,10Dacryopinax spathularia (Schwein.) G.W. Martin	L	Me	CTP 477, GN 305, MH 1620, OR 798	BMM, BP, BPE, SD	1, 14, 27, 30, 31, 34
PUCCINIOMYCETES
PUCCINIALES
CRONARTIACEAE
Cronartium conigenum Hedgc. & N.R. Hunt	Fi		CLAO 8	BPE	18
PUCCINIACEAE
10Aecidium ghesquierei Hendr.	Fi		SD	SD	20
10Puccinia heterospora Berk. & M.A. Curtis	Fi		SD	SD	12
TREMELLOMYCETES
TREMELLALES
TREMELLACEAE
Tremella fuciformis Berk.	L		GN 256, JMRA 36	BPE	1, 2
*a,e,fTremella mesenterica Retz.	Fu	Me	CTP 223, 538, MH 1642, OR 1600	BMM, BPE	1, 5, 14, 28, 30
USTILAGINOMYCETES
USTILAGINALES
USTILAGINACEAE
*cUstilago maydis (DC.) Corda	Fi	C, Me	MB s.n.	CM	25

Apéndice 2

Lista de colectores y su abreviatura

Abreviatura	Nombre del colector	Abreviatura	Nombre del colector
AA	A. Aquino	FIGN	F.I. García-Niño
AC	A. Castañeda	FJT	F.J. Trujillo
AF	A. Figueroa	FL	F. Landeros
AGJ	A. Gómez-Jiménez	FLP	F. López-Pérez
AGL	A. Guerrero de León	FS	F. Sánchez
AH	A. Hermosillo	GA	G. Arias
AL	A. Loeza	GEDR	G.E. Durán-Rodríguez
ALSC	A.L. Sánchez-Casillas	GG	G. Guzmán
APA	A. Palafox Arámbula	GGa	G. Galindo
AR	A. Rocha	GL	G. Leñero
ASL	A. Sánchez Lira	GN	G. Nieves
AT	A. Tamayo	GP	G. Peralta
BAAO	B.A. Arceo-Orozco	GR	G. Rodríguez
BCD	B.C. Durand	GS	G. Santillán
BEMM	B.E. M. Montes	GT	G. Tinoco
BPRS	B.P. Ramírez Santana	GV	G. Velázquez
CA	C. Aguilar	HEFL	H.E. Fierros-López
CC	C. Cervantes	HR	H. Rangel
CDL	C. Díaz-Luna	HRRR	H.R. Rueda Rodríguez
CFMM	C.F. Méndez Martínez	IA	I. Álvarez
CGD	C. Guerrero Díaz	IF	I. Fortes
CLAO	C.L. Amézola Orozco	JA	J. Aguayo
CM	C. Motolina	JAGV	J.A. García Valle
CT	C. Téllez	JC	J. Carranza
CTP	C. Torres-Preciado	JCNA	J.C. Navarro-Alcalá
CVG	C. Valdivia-García	JEVN	J.E. Vázquez Navarrete
DAJR	D.A. Jaimes Rodríguez	JFN	J. Fernández Novoa
DCGT	D.C. Gentry Torfer	JG	J. García
DFG	D. Figueroa-García	JMRA	J.M. Ramírez Amezcua
DGBA	D.G. Brambila Avelar	JNR	J.N. Rose
DGS	D. García-Saucedo	JPDN	J.P. Dávila Núñez
DM	D. Montañez	JPL	J.P. López
DRC	D. Rumayor Carrillo	JR	J. Ruíz
DRDL	D.R. Domínguez López	JS	J. Schöndube
EAO	E. Ambríz-Orozco	JT	J. Toscano
ECE	E. Castro Espíndola	KE	K. Esqueda
EF	E. Fanti	KM	K. Montes
EJAB	E.J. Andrade-Bálsamo	LAF	L. Arvizu-Franklin
EL	E. López	LARR	L.A. Rodríguez Ruvalcaba
ELo	E. Loza	LASM	L.A. Sánchez Monroy
EPS	E. Pérez-Silva	LCNC	L.C. Núñez Carrillo
FB	F. Brizuela	LERG	L.E. Ruiz-González
LGD	L. Guzmán-Dávalos	OV	O. Vargas
LJOV	L.J. Ortega Valadez	PC	P. Corona
LM	L. Montoya	PMM	P. Munguía-Matute
LSR	L. Sánchez-Rivera	RAPC	R.A. Pérez Casanova
LSV	L.S. Vázquez	RB	R. Beas
MA	M. Álvarez	RC	R. Cibrián
MACT	M.A. Cortés Tovar	RGC	R. Gutiérrez Cerda
MAG	M.A. Guerrero	RIAB	R.I. Alcalá-Briseño
MAHR	M.A. Hernández Romo	RISC	R.I. Sandoval Cortés
MAPC	M.A. Plasencia Duran	RL	R. López
MB	M. Bustos	RMA	R. Murguía Araiza
MCSG	M.C. Sandoval Gutiérrez	RRD	R. Ramírez-Delgadillo
MEVS	M.E. Velasco-Sánchez	RV	R. Valenzuela
MF	Montoya Fuentes	RZV	R. Zamora-Valdez
MG	M. Garza	SCHR	S.C. Hernández Rodríguez
MGG	M.G. Guerrero	SF	S. Franco
MGM	M.G. Medina	SG	S. Gallo
MGTT	M.G. Torres-Torres	SGCO	S.G. Canchola Orozco
MH	M. Herrera	SMM	S. Márquez-Marcial
MHo	M. Homero	SVC	S. Vargas-Castellanos
MIFL	M.I. Flores Luna	SYR	S.Y. Rubio
MJR	M.J. Raygoza	TJRH	T.J. Reyes-Hernández
MLF	M.L. Fierros	TPF	T. Pérez Fiol
MRSJ	M.R. Sánchez-Jácome	VC	V. Chaparro
NB	N. Blanco	VMLQ	V.M. Lomelí Quintero
NGRO	N.G. Rojas Osuna	VMM	V. Mendoza-Martínez
OHV	O. Hernández Vargas	YA	Y. Alquiciras
OMCR	O.M. Carrillo Rodríguez	YAGA	Y.A. Guerrero Ahumada
OR	O. Rodríguez

Notas

Notas de autor

^*Autor para la correspondencia: olivia.rodriguez@academicos.udg.mx