Materiales y métodos
De una base de datos que comprende 1408 aislamientos de E. coli provenientes de materia fecal de humano (425) y porcino (983), se seleccionaron 88 cepas resistentes a ceftazidima [CAZ] y cefotaxima [CTX]. Los aislamienos de E. coli de porcinos (25/88) se obtuvieron de un muestreo realizado en una granja semitecnificada ubicada en Jiutepec, Morelos, México y los aislamientos de origen humano (63/88) provienen de tres centros de salud (CS) colindantes a la granja (CS Jiutepec, CS Huizachera, CS Calera Chica) y del Hospital General de Cuernavaca “José G. Parres” en Cuernavaca, Morelos, México. La resistencia a C3G se confirmó mediante concentración mínima inhibitoria (MIC) usando la técnica de microdilución en caldo (CLSI, 2023). La identificación de genes de resistencia a C3G (blaCTX-M, blaSHV, blaTEM) (Saleem et al., 2022) de factores de virulencia (eae, stx1, stx2, elt, est, ipaH, aat, daa) (Tamayo-Legorreta, 2020) y de filogrupos (A, B1, B2, C, D) (Clermont et al., 2000) se realizón por PCR punto final. Por electroforesis en campos pulsados (PFGE) se determinó la clonalidad de las cepas.
Resultados Se analizaron 88 cepas de E. coli multidrogo resistentes [MDR]. De estas, 63 cepas de origen humano (71,6%) mostraron al menos un marcador de patogenicidad, siendo los tipos más comunes DAEC (9,1%) y EIEC (4.55%). En cerdos, no se aislo ningún patotipo de E. coli. Los genes de virulencia más comunes en humanos fueron ipaH (4,55%) y daa (9,1%). En cerdos, todas las cepas fueron comensales, es decir, no tenían genes de virulencia. La resistencia a los antibióticos CAZ y CTX fue alta en ambos grupos:>70% en humanos y >25% en cerdos. El 78,4% (69/88) fueron identificadas como productoras de BLEE predominando el gen de resistencia blaCTX-M. Las cepas de E. coli se agruparon en 18 perfiles de resistencia antimicrobiana, 86 cepas (97,73%) fueron MDR, de las cuales 68 (77,27%) fueron resistentes a seis, siete y ocho familias de antibióticos. Por otra parte, las cepas de E. coli son geneticamente diferentes, lo que significa que hay una mayor diversidad de tipos de E. coli en los humanos comparado con los cerdos. En los aislamientos de humanos se observaron los filogrupos A (23,86%), B1 (7,95%), B2 (5,68%) y D (34,1%); y en los porcinos encontramos los grupos A (22,73%), B1 (1,14%) y D (4,55%). Los filogrupos A y B1 corresponden a cepas de E. coli comensales mientras que B2 y D son un indicador de contaminacion fecal humana y se asocian a E. coli patógena. El análisis de PFGE comprobó que existe una diversidad genética entre las cepas de cerdos y humanos mostrando que no están clonalmente relacionadas.
Todos los resultados se resumen en la Figura 1. Los Dendogramas de la Electroforésis en Campos Pulsados (PFGE) de cepas de E.coli aisladas de materia fecal de cerdos (A) y humanos (B) muestran la diversidad y los patrones de resistencia (Figura 1). Las características fenotípicas y genotípicas detallan la producción de BLEE (CTX-M) y su asociación con la multiresistencia antimicrobiana en clonas de E. coli en ambas especies, información crucial para decisiones clínicas y vigilancia epidemiológica.
Figura 1
Relación clonal por PFGE de 31 aislamientos representativos de E. coli aislada de heces de humano y 20 aislamientos representativos aislados de heces de cerdo. Los antibióticos analizados son: AMP= Ampicilina, CAZ= Ceftazidima, CTX= Cefotaxima, GEN= Gentamicina, CIP= Ciprofloxacino, NAL= Ácido nalidíxico, SXT= Sulfametoxazol/trimetoprim, TET= Tetraciclina. ND= No determinado. a 1-CS Jiutepec, 2-CS Huizachera, 3- CS Calera Chica, 4-Hospital General de Cuernavaca “Dr José G. Parres, Cuernavaca, Morelos, México.*
* Los paneles en rojo muestran la agrupación de 11cepas representativas de humanos en 4 clústeres y 5 cepas representativas de cerdos en dos clústeres. El porcentaje de similitud entre las cepas se representó en un dendograma de homología utilizando el algoritmo UPGMA.
Elsa Maria Tamayo Legorreta emtamayo@insp.mx
