IMÁGENES EN BIOMEDICINA
Insectos vectores de agentes infecciosos
Vector insects of infectious agents
Insectos vectores de agentes infecciosos
Biomédica, vol. 37, núm. 2, 2017
Instituto Nacional de Salud
Recepción: 14 Septiembre 2017
Aprobación: 05 Octubre 2017
El objetivo de este artículo es ilustrar con fotografías in vivo material de laboratorio útil para el estudio de la biología, la ecología y el comportamiento de diferentes grupos de insectos hematófagos. Se llama la atención sobre las características morfológicas de larvas, pupas y adultos utilizadas en la taxonomía de los ejemplares, los mecanismos de alimentación de las larvas y las técnicas de marcación de adultos, temas de interés para su estudio y control.
Aunque la mayoría de los ejemplares se obtuvo de las colonias del insectario del Laboratorio de Entomología del Instituto Nacional de Salud, algunos eran silvestres y fueron fotografiados en campo.
Hubo necesidad de construir escenarios especiales para obtener las fotografías de cada especie en el laboratorio. Se utilizó una cámara digital Nikon, modelo 7000D, con un lente macro de 105 mm, un lente gran angular de 20 mm en posición invertida y tubos de extensión en diferentes combinaciones.
Queremos expresar nuestros agradecimientos a Johanna Lizeth Morales y a Carlos Arturo Hernández por la selección final de las fotografías, la edición digital y optimización de las mismas, y el diseño y diagramación del artículo
Aedes aegypti
1
Cabezade larva, vista lateral
2
Últimos segmentos abdominales de la larva con sifón terminal. a) Tubo traqueal. b) Peine: el engrosamiento subapical de cada espina se debe a la presencia de espinas subapicales.
3
Pupa, obsérvese el tamaño corto de la trompeta respiratoria (flecha) usadas como carácter diagnóstico taxonómico para esta especie
4
Dimorfismo sexual: las antenas del macho (izquierda) están densamente pobladas por pelos ramificados, mientras que en la hembra (derecha) es menor la cantidad de pelos y estos son más cortos
5
Adulto hembra marcada con polvo fluorescente
6
Adulto hembra picando a través de tela tipo lino (0,4 mm de grosor); se ha descrito que la ropa protege de la picadura de insectos aunque depende de la densidad y el espesor del tejido
Aedes albopictus
7
Cabeza de la larva, vista frontal
8
Últimos segmentos abdominales de la larva con sifón terminal. a) Espinas simples del peine. El tamaño del sifón de las especies del género Aedes es más corto que en Culex quinquefasciatus
9
Pupa, vista lateral y vista dorsal en la que se aprecian las paletas natatorias
10
Hembra alimentándose sobre atrayente humano
Anopheles albimanus
11
Larva completa en posición de reposo. No presenta sifón, pero en el octavo segmento del abdomen posee una placa con dos espiráculos para tomar el oxígeno. Esta característica la obliga a adoptar una posición paralela a la superficie del agua. a) Silla. b) Pelos caudales. c) Branquias anales
12
Pupa, vista lateral; detalle de la formación del ojo compuesto; nótese la diferenciación de los omatidios
13
Dimorfismo sexual: a la izquierda, adulto macho, y a la derecha, el adulto hembra
14
Adulto hembra con el intestino lleno de solución azucarada al 30 % y colorante azul. Esta metodología se utiliza en estudios de dispersión y comportamiento
Culex quinquefasciatus
15
Cabeza de larva, vista frontal; se observa el cepillo bucal. Estas estructuras, formadas por largos filamentos, crean corrientes deagua dirigidas hacia el aparato bucal que filtran las partículas orgánicas que se encuentran suspendidas en el agua
16
El largo del sifón es cuatro veces su ancho. El sifón permite la toma de oxígeno de la superficie del agua. a) Válvula espiracular. b) Sifón. c) Silla. d) Cepillo ventral. e) Pelos caudales. f) Branquias anales
17
Pupa,vista lateral. a) Trompeta respiratoria. b) Cefalotórax. c) Abdomen. d) Paletas natatorias. Nótese que la mayoría de las estructuras del cuerpo del adulto ya están formadas
18
Adulto hembra con el intestino lleno de solución azucarada al 30 % y colorante amarillo
Lutzomyia spinicrassa
19
Larva, vista dorsal; nótense las setas en forma de cerilla distribuidas a lo largo de todo el cuerpo. Estas larvas viven en hábitats terrestres en suelos ricos en materia orgánica
20
Vista lateral de la cabeza de la larva
Lutzomyia longipalpis
21
Vista ventral de la larva de IV estadio; su aparato bucal masticador le permite triturar la materia orgánica. Se pueden observar los seudópodos centrales en los segmentos abdominales
22
La pupa se fija al sustrato mediante el pseudopodio terminal del noveno segmento abdominal; obsérvese la exuvia del cuarto estadio larval adherida a este segmento
23
Adulto macho, nótense los halterios o balancines que se usan para dirigir los movimientos del insecto durante el vuelo
24
El adulto macho presenta un par de manchas pálidas en el cuarto terguito donde se ubican las glándulas sexuales que producen las feromonas
25
Dimorfismo sexual en flebótomos: los últimos segmentos abdominales están modificados en órganos genitales; a la izquierda, adulto macho, y a la derecha, el adulto hembra
26
Adulto hembra, vista ventral
27
Adulto hembra, nótese el mínimo contacto de los tarsos con la tela del toldillo; no obstante, si están impregnados de insecticidas, es suficiente para obtener su efecto letal
28
Adulto hembra marcada con polvo fluorescente y abdomen lleno de sangre
29
Adulto macho marcado con polvo fluorescente
30
Hembra grávida, el desarrollo de los huevos ocurre después de que las hembras hacen una ingestión completa de sangre
31
Adulto macho con intestino lleno de solución azucarada al 30 % y colorante verde
32
Diuresis de la hembra durante la alimentación sanguínea. Los flebótomos excretan gotas muy pequeñas de solución salina que después de ser expulsadas rápidamente para perder peso, explotan antes de caer
Lutzomyia longiflocossa
33
Adulto hembra marcada con polvo fluorescente, alimentándose sobre atrayente humano. Imagen capturada en trabajo de campo en la región subandina de la vereda Venecia, municipio de Campoalegre, departamento del Huila
Rhodnius prolixus
34
Cabeza de adulto, variedad de ojos rojos criada en el laboratorio; nótese la diferenciación de omatidios (a) y la presencia de ocelos (b)
35
Alimentación artificial a través de membrana de intestino de cerdo
Notas de autor
Correspondencia: Raúl Pardo, Grupo de Entomología, Instituto Nacional de Salud, Avenida calle 26 N° 51-20, Bogotá, D.C., Colombia Teléfono: (571) 220 7700